Summary

En strategi at validere rolle Callose-medieret Plasmodesmal gating i Tropic svar

Published: April 17, 2016
doi:

Summary

Denne artikel beskriver metoderne til screening af gener, der kontrollerer plasmodesmal permeabilitet og dermed auxin gradient under tropiske respons. Dette omfatter måling af graden af ​​tropiske respons i hypokotyle af Arabidopsis thaliana og kontrol plasmodesmal permeabilitet med 8-hydroxypyren-1,3,6-trisulfonsyre (HPTS) lastning og vurdering endelig callose niveau.

Abstract

Anlægget hormon auxin spiller en vigtig rolle i mange vækst- og udviklingsprocesser, herunder tropiske reaktioner på lys og tyngdekraft. Etableringen af ​​en auxin gradient er en central begivenhed, der medfører fototropisme og gravitropism. Tidligere blev polar auxin transport (PAT) vist at etablere en auxin gradient i forskellige cellulære domæner af planter. Men Han et al. Nylig vist, at for korrekt auxin gradient dannelse, plasmodesmal callose-medieret symplasmic konnektivitet mellem de tilstødende celler er også en kritisk faktor. I dette manuskript, til den strategi, belyse den rolle, bestemte gener, som kan påvirke fototropisme og gravitropism ved at ændre symplasmic tilslutning via modulerende plasmodesmal callose syntese, diskuteres. Det første skridt er at screene afvigende tropiske svar fra 3 dage gamle etiolerede frøplanter af mutanter eller over-udtryk linjer af et gen sammen med den vilde type. Denne indledende screeningkan føre til identifikation af en række gener fungerer i PAT eller kontrollerende symplasmic tilslutningsmuligheder. Den anden screening indebærer sortering af kandidater, der viser ændrede tropiske svar ved at påvirke symplasmic tilslutningsmuligheder. For at imødegå sådanne kandidater, blev bevægelsen af ​​en symplasmic sporstof og aflejring af plasmodesmal callose undersøgt. Denne strategi vil være nyttigt at udforske nye kandidatgener, der kan regulere symplasmic konnektivitet direkte eller indirekte under tropic svar og andre udviklingsprocesser.

Introduction

Planter, som sessile levende organismer, har udviklet en meget avanceret netværk af celle-til-cellesignalering at løse forskellige miljømæssige stimuli. Tropic responser er en af ​​de fænomener, som planter reagerer på miljømæssige stimuli. Planter viser to vigtigste tropiske svar, fototropisme og gravitropism. Fotosyntetiske planter bøje mod lyskilden ved fototropisme at høste maksimal energi. Tilsvarende gravitropism gør planterne at vokse mod tyngdepunkt. Den grundlæggende mekanisme, der fører til sådanne tropiske reaktioner involverer asymmetrisk gradient dannelse af phytohormonet auxin en. Det handler om lokale auxin gradient dannelse er godt karakteriseret; de gener, der er involveret i denne mekanisme giver en køreplan for hormon handling 2-8. Den specifikke placering af auxin efflux bærere, såsom PIN-formed (PIN) og p-glycoproteiner, udfører bevægelsen af auxin fra cytoplasmaet til cellevæggen af donorceller 9,10. Furthermore, ved den aktive H + / IAA symport aktivitet af auxin tilstrømning bærere, såsom AUX1 / LAX familie proteiner, auxin er endelig leveret til de tilstødende modtager celler 2,11,12. Denne retningsbestemt bevægelse af auxin er kendt som polar auxin transport (PAT). PAT fører til en differentiel auxin fordeling under forskellige udviklingsstadier og som reaktion på forskellige miljømæssige stimuli 13,14. Desuden afbrydelse i lokalisering eller ekspression af nogen af ​​disse auxin indstrømning eller efflux bærere fører til alvorlig ændring i PAT, som forårsager en afbrydelse af den auxin-gradient, hvilket fører til udviklingsmæssige defekter. For nylig, Han et al. rapporterede, at plasmodesmal forordning er også nødvendig for at opretholde auxin gradient 15. Til dato har mere end 30 plasmodesmal proteiner blevet identificeret 16. Blandt disse proteiner har AtGSL8 blevet rapporteret som et centralt enzym til callose syntese ved plasmodesmata (PD), og derfor spiller en afgørende rolle i maintaining grænse PD udelukkelse størrelse (SEL). Undertrykt AtGSL8 udtryk resulterede i en forvrænget auxin gradient mønster fører til ingen tropiske respons i modsætning til vildtype kimplanter 15.

I dette manuskript, metoder udforske nye kandidatgener, der er involveret i PD regulering leveres. AtGSL8 blev anvendt som en model protein for at teste disse metoder, da det er et vigtigt enzym bidrager til PD callose biosyntese. På grund af den kimplante-letalitet gsl8 knock-out mutanter 17, blev dexamethason (dex) inducerbare RNAi linjer anvendes i overensstemmelse med en tidligere offentliggjort rapport 15. Oplysningerne her strategi kan tilpasses til at screene gener, der er impliceret i hypokotyle tropic respons kontrolleret af PD SEL.

Protocol

1. Screening af mutanter med ændret fototropisk og Gravitropic Responses Forbered 1x Murashige og Skoog (MS) Medium, pH 5,7, med 0,8% Agar en dag før forsøget. Tilsættes 800 ml dobbelt destilleret vand til en 2 L konisk kolbe og omrøres med en magnetisk stang. Tilføj 4,4 g MS salt til den koniske kolbe. Tilsæt 0,5 g 2- (N-morpholino) ethansulfonsyre (MES) og omrør indtil alle saltene er fuldstændig opløst. Justere mediets pH til 5,7 med 1 M KOH. Overf…

Representative Results

I den nuværende setup, dexamethason (dex) inducerbare RNAi linjer af AtGSL8 [herefter dsGSL8 (+ k s / -dex)] blev anvendt, som homozygot gsl8 T-DNA indsættelse mutanter er sætteplante dødbringende 18. Tre dage gamle etiolerede frøplanter af dsGSL8 og vild type frøplanter med ± dex blev udsat for fototropisk og gravitropic stimuli. Vi fandt, at dsGSL8 (+ dex) kimplanter var defekte i fototropisme og gravitropism 15….

Discussion

I dette manuskript, til en strategi screene mutant / over-udtryk linjer, der er defekte fototropisk og gravitropic reaktioner som følge af ændret PD callose og dermed er PD SEL beskrevet i detaljer. PD callose syntese og nedbrydning hovedsageligt opnås ved callose syntaser og β-1,3-glucanaser, men reguleringen af ​​disse enzymer er kontrolleret af mange opstrøms faktorer. For at søge efter sådanne opstrøms faktorer eller kandidater, der er direkte involveret i PD regulering, har vi oprettet denne metode til …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskning blev støttet af Grundforskningsfonden Korea (NRF-2015R1A2A1A10053576), og af en bevilling fra den næste generation af Biogreen 21 Program (SSAC yde PJ01137901), Udvikling af Landdistrikterne Administration, Republikken Korea. RK, WS, ABB og DK blev støttet af Brain Sydkorea 21 Plus-programmet (BK21 +).

Materials

HPTS (8-Hydroxypyrene -1,3,6-trisulfonic acid trisodium salt) Sigma H1529-1G Fluorescent dye as symplasmic tracer
LE Agarose Dongin-Genomic GEL001-500G Used for HPTS agarose block
Microwave oven LG-Goldstar Machine for boiling agarose gel
100 mL glass conical flask Dong Kwang A0205 Used to boil HPTS agarose gel
Petri Dish (35×10 mm) SPL life sciences SPL10035 Used to make HPTS agarose blocks and wash plant samples 
Microscope cover slides and glass slides (24 x 50 mm) Marienfeld Laboratory Glassware 101222 Used for HPTS agarose blocks and microscopic sample preparation
MS medium plates 125 x 125 x 20 mm SPL life sciences SPL11125 Plates to make MS agar medium
Scissors Germany Stainless HSB 942-11 Used to excise hook region of plant samples
Murashige and Skoog (MS) basal salt mixture Duchefa P10453.01 MS medium including vitamins.
(N-morpholino) ethanesulfonic acid (MES) monohydrate Bioshop 3G30212 To make MS media.
Plant agar Duchefa P1001.1000 To solidify MS media.
Autoclave ALP CL-40L
Shaker Wise Mix SHO-1D To wash off the aniline blue staining buffer and HPTS dye in a placid way.
1 ml Blue tips Sorenson 10040
1 ml pipette BioPette L-1101-2
Surgical tape MIcropore 1530-0 To seal the MS plate
Aniline blue (Methyl blue) Sigma M5528-25G Used to prepare aniline blue staining buffer.
Glycine Bioshop GLN001 Used to prepare aniline blue staining buffer.
DDG Sigma D8375-1G Used for the inhibition of callose synthases.
Confocal microscope Olympus FV1000MPE SIM To check aniline blue staining and HPTS dye loading result.
Stirrer  I lab  K400 To mix media solution.
Aluminium foil SW cooking foil To wrap plates in a dark condition.
Sodium hypochlorite Samjin Industry To surface-sterilized seeds

References

  1. Went, F. W., Thimann, K. V., Bard, P. Phytohormones. Experimental biology monographs. , 204 (1937).
  2. Bennett, M. J., et al. Arabidopsis AUX1 gene: a permease-like regulator of root gravitropism. Science. 273 (5277), 948-950 (1996).
  3. Christensen, S. K., Dagenais, N., Chory, J., Weigel, D. Regulation of auxin response by the protein kinase PINOID. Cell. 100 (4), 469-478 (2000).
  4. Jurgens, G., Geldner, N. The high road and the low road: trafficking choices in plants. Cell. 130 (6), 977-979 (2007).
  5. Michniewicz, M., et al. Antagonistic regulation of PIN phosphorylation by PP2A and PINOID directs auxin flux. Cell. 130 (6), 1044-1056 (2007).
  6. Noh, B., Bandyopadhyay, A., Peer, W. A., Spalding, E. P., Murphy, A. S. Enhanced gravi- and phototropism in plant mdr mutants mislocalizing the auxin efflux protein PIN1. Nature. 423 (6943), 999-1002 (2003).
  7. Weijers, D., Friml, J. Snap Shot: auxin signaling and transport. Cell. 136 (6), 1172-1172 (2009).
  8. Wisniewska, J., et al. Polar PIN localization directs auxin flow in plants. Science. 312 (5775), 883 (2006).
  9. Murphy, A. S., Hoogner, K. R., Peer, W. A., Taiz, L. Identification, purification, and molecular cloning of N-1-naphthylphthalmic acid-binding plasma membrane-associated aminopeptidases from Arabidopsis. Plant Physiol. 128 (3), 935-950 (2002).
  10. Kleine-Vehn, J., Friml, J. Polar targeting and endocytic recycling in auxin-dependent plant development. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 24, 447-473 (2008).
  11. Yang, Y., Hammes, U. Z., Taylor, C. G., Schachtman, D. P., Nielsen, E. High-affinity auxin transport by the AUX1 influx carrier protein. Curr. Biol. 16 (11), 1123-1127 (2006).
  12. Geisler, M., Murphy, A. S. The ABC of auxin transport: the role of p-glycoproteins in plant development. FEBS Lett. 580 (4), 1094-1102 (2006).
  13. Band, L. R., et al. Root gravitropism is regulated by a transient lateral auxin gradient controlled by a tipping point mechanism. Proc. Natl. Acad. Sci.USA. 109 (12), 4668-4673 (2012).
  14. Vanneste, S., Friml, J. Auxin: a trigger for change in plant development. Cell. 136 (6), 1005-1016 (2009).
  15. Han, X., et al. Auxin-callose-mediated plasmodesmal gating is essential for tropic auxin gradient formation and signaling. Dev. Cell. 28 (2), 132-146 (2014).
  16. Kumar, R., Kumar, D., Hyun, T. K., Kim, J. Y. Players at plasmodesmal nano-channels. J. Plant Biol. 58, 75-86 (2015).
  17. Chen, X. Y., et al. The Arabidopsis callose synthase gene GSL8 is required for cytokinesis and cell patterning. Plant Physiol. 150, 105-113 (2009).
check_url/53513?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Kumar, R., Wu, S. W., Iswanto, A. B. B., Kumar, D., Han, X., Kim, J. A Strategy to Validate the Role of Callose-mediated Plasmodesmal Gating in the Tropic Response. J. Vis. Exp. (110), e53513, doi:10.3791/53513 (2016).

View Video