Summary

توليف الذهب الجسيمات النانوية الليبوزومات المتكاملة صور متجاوبة وقياس تلك Microbubble التجويف على نبض الليزر الإثارة

Published: February 24, 2016
doi:

Summary

يصف هذا البروتوكول طريقة تحضير بسيط للجسيمات متناهية الصغر من الذهب متكاملة الجسيمات الشحمية-صور متجاوبة مع المواد المتاحة تجاريا. كما يبين كيفية قياس عملية التجويف microbubble من الجسيمات الشحمية توليفها على علاج ليزر نابض.

Abstract

Photo-responsive nanoparticles (NPs) have received considerable attention because of their potential in providing spatial, temporal, and dosage control over the drug release. However, most of the relevant technologies are still in the development process and are unprocurable by clinics. Here, we describe a facile fabrication of these photo-responsive NPs with commercially available gold NPs and thermo-responsive liposomes. Calcein is used as a model drug to evaluate the encapsulation efficiency and the release kinetic profile upon heat/light stimulation. Finally, we show that this photo-triggered release is due to the membrane disruption caused by microbubble cavitation, which can be measured with hydrophone.

Introduction

إمكانية لتحريك الافراج عن المخدرات باستخدام مؤثرات الخارجية هو وسيلة جذابة لتقديم الأدوية في الموضات spatial-، temporal- والتي تسيطر عليها الجرعة مع خصوصية مكبر والآثار السلبية الحد الأدنى. من بين مجموعة واسعة من أنظمة خارجية-المحفزات التي تستجيب (ضوء، المجال المغناطيسي والموجات فوق الصوتية، أشعة الميكروويف)، منصات أثار ضوئية جذابة، بسبب من غير الغازية، والبساطة والقدرة على التكيف في العيادات. 1 بحوث مستفيضة في العقد الماضي قدمت مجموعة متنوعة من التقنيات منصة، مثل الذهب مسؤولة بالقرب من الأشعة تحت الحمراء، الضوء (الاتحاد الافريقي) قفص نانوي المغلفة مع البوليمرات الذكية، 2-صورة عطوب، النانوية البوليمرية (NPS) مترافق مع الأدوية و 3 و nanovesicles porphysome الذاتي تجميعها. 4 ولكن ، هذه التقنيات لا تزال في مراحل ما قبل السريرية للتنمية، وتتطلب فهم واضح والتحسين من المعلمات المشاركين في عملية بدء وتابعالمتداول الافراج عن المخدرات.

واحد من أبسط ويمكن الوصول إليها بسهولة طرق لإعداد مثل هذا النظام هو دمج الاتحاد الافريقي مصادر القدرة النووية مع الجسيمات الشحمية حراريا الحساسة 5،6، متاحة على نطاق واسع في السوق وكلاهما وتم التحقيق فيها على نطاق واسع في التجارب قبل السريرية والسريرية حتى. وعلى الرغم من القيود المفروضة على تنشيط الأنسجة العميق من الاتحاد الافريقي مصادر القدرة النووية في الطول الموجي من plasmonic، بالمقارنة مع النانو الاتحاد الافريقي الأشعة تحت الحمراء القريبة تنشيط (على سبيل المثال، قفص نانوي)، وهذا النظام لا يزال يحمل وعودا كبيرة عند استخدامها في الحيوانات الصغيرة أو للتسليم الموضعي في البشر. 7 هناك بعض الجهود المبكرة في الجمع بين الاتحاد الافريقي مصادر القدرة النووية مع الجسيمات الشحمية لإطلاق أثار خفيفة 8-11 في حين أن معظمهم من التركيز على الجدة من المواد، وتحتاج إلى معالجة المسائل المتعلقة بإمكانية الوصول وتطويره. وعلاوة على ذلك، تقارير عن آليات الإفراج استخدام هذه nanocarriers لا تزال محدودة.

هنا، وتلفيق الصور تستجيبوقد وصفت الجسيمات الشحمية، تحميل في وقت واحد مع المخدرات ومصادر القدرة النووية الاتحاد الافريقي ماء. يستخدم Calcein كمركب نموذج لتقييم كفاءة التغليف والتعريف الافراج عن النظام. وبالإضافة إلى ذلك، في هذا النظام، وعلى ضوء استيعابها من قبل الاتحاد الافريقي مصادر القدرة النووية تبدد إلى المكروية المحيطة بها في شكل حرارة، مما أدى إلى زيادة في درجة الحرارة المحلية. يتم إنشاء microbubbles الهواء أثناء التسخين ليزر ويسبب اضطراب الميكانيكية من الجسيمات الشحمية (الشكل 1). وأكد آلية التجويف microbubble بواسطة القياسات مائي.

Protocol

1. إعداد نظيفة 100 مل جولة قوارير السفلية باستخدام الماء الملكي (1 جزء من حمض النتريك (HNO 3) و 3 أجزاء من حامض الهيدروكلوريك المركز (حمض الهيدروكلوريك)) وغسل القوارير بالماء DI. الأوتوكلاف قوارير وتجفيفها في فرن الهواء …

Representative Results

تم إعداد الجسيمات الشحمية باستخدام تقنية رقيقة فيلم الترطيب التقليدية مع DPPC، MPPC وDSPE-PEG2000 في نسبة المولي من 86: 10: 4 أو 7.95: 0.65: 1.39 ملغ / مل 12 حجم الاتحاد الافريقي مصادر القدرة النووية أمر بالغ الأهمية لتحديد الضوء للحرارة كفاءة التحويل خلال التجربة …

Discussion

رقيقة ترطيب الفيلم هو الأسلوب التقليدي لإعداد الجسيمات الشحمية. استخدمت المذيبات العضوية (كلوروفورم في هذه الحالة) أولا بحل الدهون ومن ثم إزالتها في المبخر الدوار عند 37 درجة مئوية لتوليد طبقة رقيقة الدهون في القارورة. كان رطب هذا الفيلم الدهون مع محلول مائي يحتوي عل?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد هذا العمل جزئيا من قبل صناديق بحوث العلمية الشق 1 من سنغافورة وزارة التربية والتعليم (RG 64/12 إلى CX) ومعهد جامعة تايوان الوطنية-نورث وسترن من النانوي.

Materials

1,2-Dipalmitoyl-sn-glycero-3-phosphocholine (DPPC) Avanti Polar Lipids (Alabama, US) 850355P Powder, Store at -20 °C
1-palmitoyl-2-hydroxy-sn-glycero-3-phosphocholine (MPPC) Avanti Polar Lipids (Alabama, US) 855675P Powder, Store at -20 °C
1, 2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoethanol-amine-N-[methoxy(polyethylene glycol)-2000] (ammonium salt) (DSPE-PEG2000)  Avanti Polar Lipids (Alabama, US) 880120P Powder, Store at -20 °C
Gold Nanoparticles Sigma Aldrich 752568-100mL 5nm particles, stabilized at 0.1mM PBS
Calcein Sigma Aldrich C0875-10g 60mM, pH 7.4 – adjusted using NaOH
phosphate buffered saline (PBS) Sigma Aldrich P5493 0.1 mM, pH 7.4
Double distilled water Millipore Milli-DI water purification system
Triton X100   Sigma, Life Sciences X-100 To disrupt the liposomes to calculate total encapsulation
Rotavapor   Buchi (Switzerland) R 210 Used for Lipososme preparation
Heating bath Buchi (Switzerland) B 491 Used for Lipososme preparation
Vacuum Controller   Buchi (Switzerland) V-850 Used for Lipososme preparation
Vacuum Pump Buchi (Switzerland) V-700 Used for Lipososme preparation
Recirculation bath with temperature controller Polyscience Used for Lipososme preparation
 Mini-extruder assembly with heating block  Avanti Polar Lipids (Alabama, US) 610000 Used for extrusion of liposomes
Syringes, 1000 uL Avanti Polar Lipids (Alabama, US) 610017 Used for extrusion of liposomes
Polycarbonate filter membrane, 200nm   Whatmann 800281 Used for extrusion of liposomes
Filter Support Avanti Polar Lipids (Alabama, US) 610014 Used for extrusion of liposomes
PD 10 Desalting coulumns, Sephadex G-25 medium GE Healthcare, Life sciences 17-0851-01 Used to purify the liposomes
Centrifuge   Sigma Laboratory Centrifuges 3K30 Used to concentrate the liposomal solution 
Rotor Sigma 19777-H Used to concentrate the liposomal solution 
Zetasizer   Nano ZS Malvern Used for the determination of liposome size and zetapotential
UV- Visible Spectrophotometer Shimadzu UV-2450 Used to measure the absorbance of the samples
Fluorescent Spectrofluorometer   Molecular Devices SpectraMax M5 Used to measure the fluorescence emission of the samples
Nd:YAG Laser NewWave Research 532 nm; Maximum power: 17mJ; Width: 406 ns; Used for sample irradiation
HNR Hydrophone ONDA HNR-1000 1000 mm diameter and 450 nV/Pa sensitivity, Proper working frequency range: 0.25-10 MHz; Calibration: 50 mV/Bar; Used to measure the acoustic signals
Digital Osciloscope LECORY – Wave Runner 64Xi-A Frequency: 600 MHz; Max sample rate : 10 Gs/s (at two channel); Used to record the measured acoustic signals

References

  1. McCoy, C. P., et al. Triggered drug delivery from biomaterials. Expert Opin. Drug Deliv. 7 (5), 605-616 (2010).
  2. Yavuz, M. S., et al. Gold nanocages covered by smart polymers for controlled release with near-infrared light. Nat. Mater. 8 (12), 935-939 (2009).
  3. Gohy, J. F., Zhao, Y. Photo-responsive block copolymer micelles: design and behavior. Chem. Soc. Rev. 42 (17), 7117-7129 (2013).
  4. Lovell, J. F., et al. Porphysome nanovesicles generated by porphyrin bilayers for use as multimodal biophotonic contrast agents. Nat. Mater. 10 (4), 324-332 (2011).
  5. Needham, D., Dewhirst, M. W. The development and testing of a new temperature-sensitive drug delivery system for the treatment of solid tumors. Adv. Drug Deliv. Rev. 53 (3), 285-305 (2001).
  6. Landon, C. D., Park, J. Y., Needham, D., Dewhirst, M. W. Nanoscale drug delivery and hyperthermia: the materials design and preclinical and clinical testing of low temperature-sensitive liposomes used in combination with mild hyperthermia in the treatment of local cancer. Open Nanomed. J. 3, 38-64 (2011).
  7. Sykes, E. A., Dai, Q., Tsoi, K. M., Hwang, D. M., Chan, W. C. Nanoparticle exposure in animals can be visualized in the skin and analysed via skin biopsy. Nat. Commun. 5, 3796 (2014).
  8. Paasonen, L., et al. Gold nanoparticles enable selective light-induced contents release from liposomes. J. Control. Release. 122 (1), 86-93 (2007).
  9. Wu, G., et al. Remotely Triggered Liposome Release by Near-Infrared Light Absorption via Hollow Gold Nanoshells. J. Am. Chem. Soc. 130 (26), 8175-8177 (2008).
  10. Leung, S. J., Kachur, X. M., Bobnick, M. C., Romanowski, M. Wavelength-Selective Light-Induced Release from Plasmon Resonant Liposomes. Adv. Funct. Mater. 21 (6), 1113-1121 (2011).
  11. Volodkin, D. V., Skirtach, A. G., Möhwald, H. Near-IR Remote Release from Assemblies of Liposomes and Nanoparticles. Angew. Chem. Int. Ed. 48 (10), 1807-1809 (2009).
  12. Mills, J. K., Needham, D. Lysolipid incorporation in dipalmitoylphosphatidylcholine bilayer membranes enhances the ion permeability and drug release rates at the membrane phase transition. Biochim. Biophys. Acta. 1716 (2), 77-96 (2005).
  13. Jiang, K., Smith, D. A., Pinchuk, A. O. Size-dependent Photothermal Conversion Efficiencies of Plasmonically Heated Gold Nanoparticles. J. Phys. Chem. C. 117 (51), 27073-27080 (2013).
  14. Chongsiriwatana, N., Barron, A., Giuliani, A., Rinaldi, A. C. Comparing bacterial membrane interaction of antimicrobial peptides and their mimics. Antimicrobial Peptides. 618, 171-182 (2010).
  15. Egerev, S., et al. Acoustic signals generated by laser-irradiated metal nanoparticles. Appl. Opt. 48 (7), C38-C45 (2009).
  16. González, M. G., Liu, X., Niessner, R., Haisch, C. Strong size-dependent photoacoustic effect on gold nanoparticles by laser-induced nanobubbles. Appl. Phys. Lett. 96, 174104 (2010).
check_url/53619?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Mathiyazhakan, M., Chan, W., Ohl, C., Xu, C. Synthesis of Gold Nanoparticle Integrated Photo-responsive Liposomes and Measurement of Their Microbubble Cavitation upon Pulse Laser Excitation. J. Vis. Exp. (108), e53619, doi:10.3791/53619 (2016).

View Video