Summary

حديثي الولادة القلب السقالات: مصفوفات رواية للدراسات التجدد

Published: November 05, 2016
doi:

Summary

في هذه الدراسات، ونحن نقدم منهجية للرواية، حديثي الولادة، السقالات القلب الفئران للاستخدام في الدراسات التجدد.

Abstract

The only definitive therapy for end stage heart failure is orthotopic heart transplantation. Each year, it is estimated that more than 100,000 donor hearts are needed for cardiac transplantation procedures in the United States1-2. Due to the limited numbers of donors, only approximately 2,400 transplants are performed each year in the U.S.2. Numerous approaches, from cell therapy studies to implantation of mechanical assist devices, have been undertaken, either alone or in combination, in an attempt to coax the heart to repair itself or to rest the failing heart3. In spite of these efforts, ventricular assist devices are still largely used for the purpose of bridging to transplantation and the utility of cell therapies, while they hold some curative promise, is still limited to clinical trials. Additionally, direct xenotransplantation has been attempted but success has been limited due to immune rejection. Clearly, another strategy is required to produce additional organs for transplantation and, ideally, these organs would be autologous so as to avoid the complications associated with rejection and lifetime immunosuppression. Decellularization is a process of removing resident cells from tissues to expose the native extracellular matrix (ECM) or scaffold. Perfusion decellularization offers complete preservation of the three dimensional structure of the tissue, while leaving the bulk of the mechanical properties of the tissue intact4. These scaffolds can be utilized for repopulation with healthy cells to generate research models and, possibly, much needed organs for transplantation. We have exposed the scaffolds from neonatal mice (P3), known to retain remarkable cardiac regenerative capabilities,5-8 to detergent mediated decellularization and we repopulated these scaffolds with murine cardiac cells. These studies support the feasibility of engineering a neonatal heart construct. They further allow for the investigation as to whether the ECM of early postnatal hearts may harbor cues that will result in improved recellularization strategies.

Introduction

فشل القلب هو شائع وقاتل. وهو مرض التدريجي الذي يؤدي إلى انقباض انخفضت من القلب، الذي يعوق تدفق الدم إلى الأعضاء ويترك مطالب التمثيل الغذائي في الجسم تتم تلبيتها. ويقدر أن 5.7 مليون أميركي يعانون قصور القلب وهذا هو السبب الرئيسي في المستشفى في الولايات المتحدة 9. تكلفة الجماعية لعلاج المرضى في فشل القلب في الولايات المتحدة يتجاوز 300 مليار $ دولار سنويا 9-10. العلاج النهائي الوحيد للفشل نهاية المرحلة القلب هو مثلي زرع القلب. في كل عام، وتشير التقديرات إلى أن هناك حاجة إلى أكثر من 100،000 قلوب المانحة لعمليات زرع القلب في الولايات المتحدة الأمريكية 1-2. ويرجع ذلك إلى عدد محدود من الجهات المانحة، يتم تنفيذ سوى ما يقرب من 2400 عملية زراعة سنويا في الولايات المتحدة (2). بوضوح، يحتاج هذا النقص الجهاز لمعالجتها كما هو مطلوب استراتيجيات أخرى لإنتاج أجهزة إضافية لtransplantaنشوئها، ومن الناحية المثالية، هذه الأجهزة سيكون ذاتي وذلك لتجنب المضاعفات المرتبطة الرفض وكبت المناعة مدى الحياة.

العضلية الكبار الثدييات يبرهن على وجود قدرة على التجدد محدودة على الاصابة لكن تشير أدلة حديثة أن قلوب الأطفال حديثي الولادة الثدييات الحفاظ على القدرة على التجدد ملحوظة بعد الاصابة 5-8. على وجه التحديد، وبعد استئصال الجراحي الجزئي، وقد تم اكتشاف نافذة التجديدي بين الولادة وبعد الولادة يوم 7. وتتميز هذه الفترة التجدد بسبب عدم وجود ندبة متليفة، وتشكيل اتساع الأوعية الدموية، وإطلاق سراح من العوامل عائية من النخاب، وcardiomyocyte انتشار 5-8 11. يوفر هذا الإطار التجدد الوقت إمكانية استخدام قلب الأطفال حديثي الولادة كمصدر جديدة من مواد لتطوير قلب bioartificial.

ومن المعروف أن المصفوفة خارج الخلية لتقديم العظة هامة لتعزيز cardiomyocytالبريد انتشار والنمو. وقد استكشفت اختلافات واضحة في توافر الجزيئات في المصفوفات حديثي الولادة والبالغين 12 و قدرتها على تشجيع تجديد 13. وقد استخدمت المصفوفات الكبار Decellularized في العديد من الدراسات لتوفير سقالة ECM لإعادة تعمير الخلوي وتوليد قلب bioartificial. في حين أن هذه الدراسات والاكتشافات الجديدة في مجال تكنولوجيا الخلايا الجذعية، تحقق تقدما سريعا، لها عدة عقبات لم تتحقق بعد. على سبيل المثال، القيود في الحفاظ على بنية الأصلي للمصفوفة، والتكامل الخلوي في الجدار مصفوفة، والقدرة على دعم انتشار ونمو كل حد في نجاح هذا النهج. في حين نسبت سمات التجدد متفوقة على قلب الأطفال حديثي الولادة، والجوانب العملية لاستخدام هذه الأنسجة محدودة التنقيب.

وبناء على القدرة التجديدية أثبت للقلب الأطفال حديثي الولادة، وقد وضعنا مصفوفات جديدة من خلال تطويرتقنية decellularization للقلب P3 الماوس. وقد تم اختيار قلب P3 لهذه الدراسات كما هو ضمن إطار التجديد القلب كما سبق تحديدها 6 ولكن القلب هو كبير بما يكفي لموسم الحصاد، decellularize وrecellularize. الهدف من هذه الدراسة هو إظهار جدوى إنشاء مصفوفة من قلب فأر حديثي الولادة. توفر دراستنا دليلا على جدوى decellularizing دقيقة واحدة، قلب الأطفال حديثي الولادة مع الحفاظ على السلامة الهيكلية والبروتينية إدارة المحتوى في المؤسسة. علينا أن نبرهن أيضا القدرة على recellularize هذا ECM القلب مع mCherry العضلية التعبير ولقد درست هذه العضلية للتعبير عن مختلف علامات القلب التالية recellularization. ستسمح هذه التقنية لللاختبار تفوق مصفوفة حديثي الولادة لتطوير قلب bioartificial.

Protocol

تم إجراء جميع التجارب الماوس وفقا لقانون رعاية الحيوان الولايات المتحدة وتمت الموافقة من قبل لجنة رعاية واستخدام الحيوان المؤسسي في جامعة مينيسوتا. 1. طريقة للماوس القلب العزلة الموت ببطء ا?…

Representative Results

Decellularization في المتوسط، والوقت لdecellularization من قلب P3 باستخدام هذا البروتوكول ما يقرب من 14 ساعة. يعطى متوسط ​​وزن القلب من 23 ملغ لحديثي الولادة P3. Acellularity يوضح الشكل…

Discussion

اعتماد هذه التقنية على تروية دموية متكررة من القلب يجعل تلافي حدوث الانسداد عنصر حاسم في تحقيق نتائج ناجحة. من القسطرة الأولية للقلب في خطوات 2،2-2،6، إلى التغييرات من حل بين خطوات 2،8-2،14، هناك التلاعب التي يمكن أن تسمح مقدمة من فقاعات الهواء التي حل وسط تدفق سائل الإرو?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors gratefully acknowledge Ms. Cynthia DeKay for the preparation of the figures.

Materials

1. Materials For Mouse Heart Isolation
P1 mouse pups (as shown; B6;D2-Tg(Myh6*-mCherry)2Mik/J) Jackson Laboratories 21577 or equivalent
60 mm Culture dish BD Falcon 353004 or equivalent
Phosphate buffered saline pH 7.4 (sterile) Hyclone SH30256.01 or equivalent
Single Use Blade Stanley 28-510 or equivalent
Standard Scissors Moria Bonn (Fine Science Tools) 14381-43 or equivalent
Spring Scissors 10 cm Fine Science Tools 15024-10 or equivalent
Vannas Spring Scissors – 3mm Cutting Edge Fine Science Tools 15000-00 or equivalent
#5 Forceps Dumnot (Fine Science Tools) 11295-00 or equivalent
2. Materials For Decellularization
Inlet adaptor Chemglass CG-1013 autoclavable
Septum Chemglass CG-3022-99 autoclavable
1/8 in. ID x 3/8 OD C-Flex tubing Cole-Parmer  EW-06422-10 autoclavable
Male luer to 1/8" hose barb adaptor McMaster-Carr 51525K33 autoclavable
Female luer to 1/8" hose barb adaptor McMaster-Carr 51525K26 autoclavable
Prolene 7-0 surgical suture  Ethicon 8648G or equivalent
Ring stand Fisher Scientific S47807 or equivalent
Clamp Fisher Scientific 05-769-6Q or equivalent
Clamp regular holder Fisher Scientific 05-754Q or equivalent
60 cc syringe barrel  Coviden 1186000777T or equivalent
Beaker Kimble 14000250 or equivalent
22g x 1 Syringe Needle  BD 305155 or equivalent
12 cc syringe  Coviden 8881512878 or equivalent
3-way stop cock   Smith Medical  MX5311L or equivalent
22 x 1 g needle  BD 305155 or equivalent
PE50 tubing  BD Clay Adams Intramedic 427411 Must be formable by heat. Polyethylene recommended
1% SDS  Invitrogen 15525-017 Ultrapure grade recommended. Make up fresh solution and filter sterilize before use. 
1% Triton X-100  Sigma-Aldrich T8787 Make up fresh solution from a 10% stock and filter sterilize before use. 
Sterile dH2O Hyclone SH30538.02 Or MilliQ system purified water.
1X Pen/Strep  Corning CellGro 30-001-Cl or equivalent
3. Materials For DNA Quantitation
Proteinase K  Fisher BP1700 >30U/mg activity
KCl Sigma-Aldrich P9333 or equivalent
MgCl*6H2O Mallinckrodt 5958-04 or equivalent
Tween 20  Sigma-Aldrich P1379 or equivalent
Tris base/hydrochloride Sigma-Aldrich T1503/T5941 or equivalent
Pico-Green dsDNA assay kit Life Technologies  P7589 requires fluorimeter to read
4. Method for fixation and sectioning of tissue. 
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148 or equivalent
Gelatin Type A from porcine skin Sigma-Aldrich G2500 must be 300 bloom or greater
5. Method for tissue histology
Cryomolds 10 x 10 x 5mm Tissue-Tek 4565 or equivalent
Cryostat Hacker/Bright Model OTF or equivalent
Microscope Slides  25 x 75 x 1 mm Fisher Scientific 12-550-19 or equivalent
Hematoxylin 560  Surgipath/Leica Selectech  3801570 or equivalent
Ethanol Decon Laboratories 2701 or equivalent
Define Surgipath/Leica Selectech  3803590 or equivalent
Blue buffer  Surgipath/Leica Selectech  3802915 or equivalent
Alcoholic Eosin Y 515  Surgipath/Leica Selectech  3801615 or equivalent
Formula 83 Xylene substitute  CBG Biotech  CH0104B or equivalent
Permount Mounting Medium  Fisher Chemical  SP15-500 or equivalent
Collagen IV Antibody Rockland 600-401-106.1 or equivalent
α-Actinin Antibody Abcam AB9465 or equivalent
mCherry Antibody Abcam AB205402 or equivalent
NKX2.5 Antibody Santa Cruz Biotechnology SC-8697 or equivalent
Donkey anti-mouse AF488 Antibody Life Technology  A21202  or equivalent
Donkey anti-chicken AF594 Antibody Jackson Immunoresearch  703-585-155  or equivalent
Donkey anti-goat CY5 Antibody Jackson Immunoresearch  705-175-147 or equivalent
Fab Fragment Goat Anti-Rabbit IgG (H+L) AF594 Jackson Immunoresearch  111-587-003  or equivalent
Prolong Gold Antifade Mountant with DAPI ThermoFisher P36930 or equivalent
6. Isolation of neonatal ventricular cardiomyocytes using pre-plating.
HBSS (Ca, Mg Free) Hyclone SH30031.02 or equivalent
HEPES (1M) Corning CellGro 25-060-Cl or equivalent
Cell Strainer BD Falcon 352340 or equivalent
50 mL tube BD Falcon 352070 or equivalent
Primeria 100 mm plates Corning 353803 Primeria surface enhances fibroblast attachment promoting a higher myocyte purity
Trypsin Difco 215240 or equivalent
DNase II Sigma-Aldrich D8764 or equivalent
DMEM (Delbecco's Minimal Essential Media) Hyclone SH30022.01 or equivalent
Vitamin B12  Sigma-Aldrich V6629 or equivalent
Fibronectin coated plates  BD Bioscience 354501 or equivalent
Fetal bovine serum  Hyclone SH30910.03 or equivalent
Heart bioreactor glassware Radnoti Glass Technology 120101BEZ Must be sterilizable by autoclaving or gas.

References

  1. Yusen, R. D., et al. Registry of the International Society for Heart and Lung Transplantation: Thirty-second official adult lung and heart-lung transplantation report–2015. J Heart Lung Transplant. 34 (10), 1264-1277 (2015).
  2. Go, A. S., et al. Heart disease and stroke statistics–2014 update: A report from the american heart association. Circulation. 129 (3), e28-e292 (2014).
  3. Kapelios, C. J., Nanas, J. N., Malliaras, K. Allogeneic cardiosphere-derived cells for myocardial regeneration: current progress and recent results. Future Cardiol. 12 (1), 87-100 (2016).
  4. Ott, H. C., et al. Perfusion decellularized matrix: Using nature’s platform to engineer a bioartificial heart. Nat Med. 14 (2), 213-221 (2008).
  5. Porrello, E. R., Olson, E. O. A neonatal blueprint for cardiac regeneration. Stem Cell Research. 13 (3 Pt B), 556-570 (2014).
  6. Porrello, E. R., et al. Transient regenerative potential of the neonatal mouse heart. Science. 331 (6020), 1078-1080 (2011).
  7. Polizzotti, B. D., et al. Neuregulin stimulation of cardiomyocyte regeneration in mice and human myocardium reveals a therapeutic window. Sci Transl Med. 7 (281), 281ra45 (2015).
  8. Jesty, S. A., et al. c-kit+ precursors support postinfarction myogenesis in the neonatal, but not adult, heart. Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (33), 13380-13385 (2012).
  9. Ambrosy, A. P., et al. The Global Health and Economic Burden of Hospitalizations for Heart Failure: Lessons Learned From Hospitalized Heart Failure Registries. J Am Coll Cardiol. 63 (12), 1123-1133 (2014).
  10. Roger, V. L., et al. Executive Summary: Heart Disease and Stroke Statistics-2012 Update A Report From the American Heart Association. Circulation. 125 (22), 188-197 (2012).
  11. Kennedy-Lydon, T., Rosenthal, N. Cardiac regeneration: epicardial mediated repair. Proc R Soc B. 282 (1821), 2147-2172 (2015).
  12. Williams, C., Sullivan, K., Black, L. D. Partially Digested Adult Cardiac Extracellular Matrix Promotes Cardiomyocyte Proliferation In Vitro. Adv Healthcare Mat. 4 (10), 1545-1554 (2015).
  13. Borg, T. K., et al. Recognition of extracellular matrix components by neonatal and adult cardiac myocytes. Dev Biol. 104 (1), 86-96 (1984).
  14. Strober, W. Trypan blue exclusion test of cell viability. Curr Protoc Immnol. 111, A3-B1-3 (2015).
  15. Gilbert, T. W., Freund, J. M., Badylak, S. F. Quantification of DNA in biologic scaffold materials. J Surg Res. 152 (1), 135-139 (2009).
  16. Akhyari, P., et al. The quest for an optimized protocol for whole-heart decellularization: a comparison of three popular and a novel decellularization technique and their diverse effects on crucial extracellular matrix qualities. Tissue Eng Part C Methods. 17 (9), 915-926 (2011).
  17. Lu, T. Y., et al. Repopulation of decellularized mouse heart with human induced pluripotent stem cell-derived cardiovascular progenitor cells. Nat Commun. 4 (2307), 1-11 (2013).
check_url/54459?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Garry, M. G., Kren, S. M., Garry, D. J. Neonatal Cardiac Scaffolds: Novel Matrices for Regenerative Studies. J. Vis. Exp. (117), e54459, doi:10.3791/54459 (2016).

View Video