Summary

監視環境でのプラズモニックトラッピングとナノ粒子の放出

Published: April 04, 2017
doi:

Summary

プラズモニックピンセットを組み込んだマイクロチップの製造プロセスは、ここで提示されます。マイクロチップは、最大トラッピング力を測定するためにトラップされた粒子の画像化を可能にします。

Abstract

プラズモニックピンセットは、分極性ナノスケール物体を閉じ込めるために、表面プラズモンポラリトンを使用します。プラズモニックピンセットの様々なデザインの中に、わずか数は、固定化粒子を観察することができます。また、研究の限られた数は、実験的に粒子にexertable力を測定しました。設計は、突出ナノディスク型又は抑制ナノホールのタイプに分類することができます。後者のために、顕微鏡観察は非常に困難です。この論文では、新たなプラズモンピンセットシステムは、プラズモニックナノホール構造体の対称軸に平行及び垂直方向の両方において、粒子を監視するために導入されます。この機能は、ナノホールの縁の近くに、各粒子の動きを観察することを可能にします。さらに、我々は定量的に新しい流体チャネルを使用して最大トラッピング力を推定することができます。

Introduction

マイクロスケールのオブジェクトを操作する能力は、多くのマイクロ/ナノ実験のために不可欠な機能です。直接接触操作は、操作対象物に損傷を与えることができます。以前に開催されたオブジェクトを解放するためにもスティクション問題の挑戦です。これらの問題を克服するために、流体1、電気2、磁気3、又はフォトニック力4、5、6、7使用して、いくつかの間接的な方法は、8提案されています。フォトニック力を使用プラズモンピンセットは、入射強度9より大きい臨時フィールド強化数桁の物理学に基づいています。この非常に強い電場増強が非常に小さいナノ粒子の捕獲を可能にします。例えば、ナノスケールを固定化して操作することが示されていますポリスチレン粒子7、10、11、12、13、14、ポリマー鎖15、タンパク質16、量子ドット17、及びDNA分子8、18などのオブジェクト、。彼らは、彼らが効果的に検討される前に素早く消えたりするので、彼らはレーザーの高強度のために破損しているため、プラズモニックピンセットがなければ、それはトラップナノ粒子することは困難です。

多くのプラズモンの研究では、様々なナノスケールの金の構造を使用していました。我々は、ナノディスクタイプ12、13、14、15、19突出として金構造を分類することができ<s>アップ、20、21又は抑制ナノホールタイプ7、8、10、11、22、23。後者のために、金基板は観察視野を妨げることができるので、撮像利便性の観点から、ナノディスクタイプがナノホールタイプよりも適しています。また、プラズモントラッピングは、プラズモニック構造の近くに発生し、観察がさらに困難となります。我々の知る限り、ナノホールタイプのプラズモニックトラッピングは間接的な散乱信号を使用して検証しました。しかし、そのような顕微鏡画像など何の成功の直接観察は、報告されていません。いくつかの研究では、捕捉された粒子の位置を記載しています。そのような結果は、Wang によって発表されました彼らは、金基板上の金柱を作成し、Pを観察しました蛍光顕微鏡24を用いて文書運動。しかしながら、これは、ビーム軸に平行な方向にない横方向の動きを監視するためにのみ有効です。

本稿では、新しい流体マイクロチップの設計および製造手順をご紹介します。このチップを使用して、我々は、プラズモンナノ構造に平行と直交する方向の両方において、plasmonically捕捉された粒子のモニタリングを示します。さらに、我々はマイクロチップで転換速度を見つけるために、流体の速度を増加させることにより、固定化された粒子の最大の力を測定します。プラズモニックピンセットで最も研究が定量的に彼らの実験装置で使用される最大トラッピング力を示すことができないので、この研究では、ユニークです。

Protocol

注意:使用前にすべての関連材料の安全規制を参照してください。マイクロチップ製造に用いられる化学物質のいくつかは、急性毒性と発癌性です。工学的制御(ドラフト、ホットプレート、およびアライナー)と個人用保護具(安全眼鏡、手袋、実験室コート、全長パンツ、及び閉鎖の使用を含む、フォトリソグラフィ及びエッチング工程を行う場合、すべての適切な安全対策を使用して?…

Representative Results

PDMSマイクロチャネルとナノホール金板の製造プロセスは、 図1及び図 2に示されています。二つの部分を結合する方法と実際のマイクロチップは、 図3に示されています。 PDMSマイクロチップの側からチャネルの内部を明らかにするために切断しました。しかし、理由は切断面の表面粗さの流路内を流れる粒子を観察?…

Discussion

図6aの矩形ドットに示すようにSMFケーブルは、マイクロチップ上のSMFケーブル穴に挿入しました。 SMFケーブル穴は、ケーブル径よりも大きいので、エポキシ接着剤は、流動粒子溶液の漏れを阻止するためにギャップをシールするために使用しました。エポキシ接着剤の適用前に、金ブロックとケーブル端が同軸顕微鏡を用いて手で整列されるべきです。それが挿入されたケーブ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作業は、MSIP / IITP(コンテンツ構成管理システムおよびスマート材料を使用して3Dプリント用シミュレータのR0190-15-2040、開発)のICT R&Dプログラムによってサポートされていました。

Materials

Negative photoresist  MicroChem SU-8 2075
Developer MicroChem SU-8 Developer
Positive photoresist  Merck Ltd. AZ GXR-601
AZ Photoresist Developers Merck Ltd. AZ 300 MIF
HMDS Merck Ltd. AZ Adhesion Promoter
Aligner Midas System MDA 400M
Atmospheric plasma machine  Atmospheric Process
Plasma Co.
IDP-1000
Polydimethylsiloxane (PDMS) Dow Corning Sylgard 184 A/B
Gold coated test slides EMF Co. TA124(Ti/Au)
Au etchant  Transene Inc. TFA
Ti etchant  Transene Inc. TFT
40X objective lens  Edmund Optics 40X DIN
60X water immersion
objective lens 
Olympus LUMPLFLN 60XW
Optical fiber incident laser  IPG Photonic YLR 10
SMF coupler Thorlabs MBT612D/M
Syringe micropump Harvard PC2 70-4501
Fluorescent microscope  Olympus IX-51
Plasma system Femto Science Inc CUTE-MPR

References

  1. Crane, N. B., Onen, O., Carballo, J., Ni, Q., Guldiken, R. Fluidic assembly at the microscale: progress and prospects. Microfluid. Nanofluid. 14 (3), 383-419 (2013).
  2. Yao, B., Luo, G. A., Feng, X., Wang, W., Chen, L. X., Wang, Y. M. A microfluidic device based on gravity and electric force driving for flow cytometry and fluorescence activated cell sorting. Lab Chip. 4 (6), 603-607 (2004).
  3. Zhang, K., et al. On-chip manipulation of continuous picoliter-volume superparamagnetic droplets using a magnetic force. Lab Chip. 9 (20), 2992-2999 (2009).
  4. Park, I. Y., Sung, S. Y., Lee, J. H., Lee, Y. G. Manufacturing micro-scale structures by an optical tweezers system controlled by five finger tips. J. Micromech. Microeng. 17, N82-N89 (2007).
  5. Kim, J. D., Hwang, S. U., Lee, Y. G. Traceable assembly of microparts using optical tweezers. J. Micromech. Microeng. 22, 105003 (2012).
  6. Kim, J. D., Lee, Y. G. Construction and actuation of a microscopic gear assembly formed using optical tweezers. J. Micromech. Microeng. 23, 065010 (2013).
  7. Kim, J. D., Choi, J. H., Lee, Y. G. A measurement of the maximal forces in plasmonic tweezers. Nanotechnology. 26 (42), 425203 (2015).
  8. Kim, J. D., Lee, Y. G. Trapping of a single DNA molecule using nanoplasmonic structures for biosensor applications. Biomed. Opt. Express. 5 (8), 2471-2480 (2014).
  9. Quidant, R. Plasmonic tweezers – the strength of surface plasmons. MRS Bull. 37 (8), 739-744 (2012).
  10. Juan, M. L., Gordon, R., Pang, Y., Eftekhari, F., Quidant, R. Self-induced back-action optical trapping of dielectric nanoparticles. Nat. Phys. 5, 915-919 (2009).
  11. Pang, Y., Gordon, R. Optical trapping of 12 nm dielectric spheres using double-nanoholes in a gold film. Nano Lett. 11 (9), 3763-3767 (2011).
  12. Tanaka, Y., Kaneda, S., Sasaki, K. Nanostructured potential of optical trapping using a plasmonic nanoblock pair. Nano Lett. 13 (5), 2146-2150 (2013).
  13. Kang, J. H., et al. Low-power nano-optical vortex trapping via plasmonic diabolo nanoantennas. Nat. Commun. 2, 582 (2011).
  14. Roxworthy, B. J., et al. Application of plasmonic bowtie nanoantenna arrays for optical trapping, stacking, and sorting. Nano Lett. 12 (2), 796-801 (2012).
  15. Shoji, T., Tsuboi, Y. Plasmonic optical tweezers toward molecular manipulation: tailoring plasmonic nanostructure, light source, and resonant trapping. J. Phys. Chem. Lett. 5 (17), 2957-2967 (2014).
  16. Pang, Y., Gordon, R. Optical trapping of a single protein. Nano Lett. 12 (1), 402-406 (2012).
  17. Tsuboi, Y., et al. Optical trapping of quantum dots based on gap-mode-excitation of localized surface plasmon. J. Phys. Chem. Lett. 1, 2327-2333 (2010).
  18. Shoji, T., et al. Permanent fixing or reversible trapping and release of DNA micropatterns on a gold nanostructure using continuous-wave or femtosecond-pulsed near-infrared laser light. J. Am. Chem. Soc. 135 (17), 6643-6648 (2013).
  19. Grigrenko, A. N., Roberts, N. W., Dickson, M. R., Zhang, Y. Nanometric optical tweezers based on nanostructured substrates. Nat. Photonics. 2, 365-370 (2008).
  20. Righini, M., et al. Nano-optical trapping of rayleigh particles and escherichia coli bacteria with resonant optical antennas. Nano Lett. 9 (10), 3387-3391 (2009).
  21. Chen, K. Y., Lee, A. T., Hung, C. C., Huang, J. S., Yang, Y. T. Transport and trapping in two-dimensional nanoscale plasmonic optical lattice. Nano Lett. 13 (9), 4118-4122 (2013).
  22. Berthelot, J., et al. Three-dimensional manipulation with scanning near-field optical nanotweezers. Nat. Nanotechnol. 9 (4), 295-299 (2014).
  23. Chen, C., et al. Enhanced optical trapping and arrangement of nano-objects in a plasmonic nanocavity. Nano Lett. 12 (1), 125-132 (2011).
  24. Wang, K., Schonbrun, E., Steinvurzel, P., Crozier, K. B. Trapping and rotating nanoparticles using a plasmonic nano-tweezer with an integrated heat sink. Nat. Commun. 2, 469 (2011).
  25. Byun, D., Cho, S. J., Kim, S. Fabrication of a flexible penetrating microelectrode array for use on curved surfaces of neural tissues. J. Micromech. Microeng. 23, 125010 (2013).
check_url/55258?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Kim, J., Lee, Y. Plasmonic Trapping and Release of Nanoparticles in a Monitoring Environment. J. Vis. Exp. (122), e55258, doi:10.3791/55258 (2017).

View Video