Denne protokollen beskriver konfokal mikroskopi påvisning av G-protein-koblet reseptor (GPCR) internalisering i pattedyrceller. Den inneholder den grunnleggende cellekultur, transfeksjon, og konfokal mikroskopi og fremgangsmåte tilveiebringer en effektiv og lett tolkbar metode for å påvise subcellulære lokalisering og internalisering av fusjons uttrykt GPCR.
Confocal laser scanning microscopy (CLSM) is an optical imaging technique for high-contrast imaging. It is a powerful approach to visualize fluorescent fusion proteins, such as green fluorescent protein (GFP), to determine their expression, localization, and function. The subcellular localization of target proteins is important for identification, characterization, and functional analyses. Internalization is one of the predominant mechanisms controlling G protein-coupled receptor (GPCR) signaling to ensure the appropriate cellular responses to stimuli. Here, we describe an experimental method to detect the subcellular localization and internalization of GPCR in HEK293 cells with confocal microscopy. In addition, this experiment provides some details about cell culture and transfection. This protocol is compatible with a variety of widely available fluorescent markers and is applicable to the visualization of the subcellular localization of a majority of proteins, as well as of the internalization of GPCR. This technique should enable researchers to efficiently manipulate GPCR gene expression in mammalian cell lines and should facilitate studies on GPCR subcellular localization and internalization.
Celler som har last trafikkmaskiner for transport av ekstracellulære materialer, for eksempel ligander, mikroorganismer, næringsstoffer og transmembranproteiner-inn i cellen for å få informasjon, energi, og andre formål 1, 2. Det er viktig for cellulær homeostase, vev funksjon, og total celleoverlevelse. Den cellebaserte ekspresjon av fluorescerende fusjonsproteiner er en effektiv måte å studere lokalisering og internalisering av transmembranreseptorer, slik som G-protein-koblede reseptorer (GPCR), i signaliseringsveier 3.
Ekspresjon av fusjonsproteinene kodet med grønt fluorescerende protein (GFP) fra maneter Aequorea Victoria, kombinert med direkte fluorescens-deteksjonsteknikker, har fått bred aksept i protein-målsøkende forskning 4, 5, 6. GFP-baserte detectividere har den fordel at den tillater sanntids avbildning av levende celler mens man unngår fikseringsartifakter 7. En rekke allsidige kloningsvektorer er konstruert for å lette ekspresjonen av proteinfusjoner til GFP i forskjellige celler 8, 9. Den pEGFP-N1-vektoren er en utbredt og kommersialisert plasmid-vektor som koder for en forbedret grønt fluorescerende protein (EGFP), som har blitt optimalisert fra villtype-GFP for lysere fluorescens og høyere ekspresjon i pattedyrceller. For å observere det fluorescente signalet av EGFP uttrykt i pattedyrceller, bør den fluorescens mikroskopi utføres med eksitasjon ved 488 nm og emisjon ved 507 nm, fortrinnsvis med konfokal mikroskopi.
Overvåking av subcellulære lokalisering og ligand-mediert internalisering av reseptorene er en vanlig teknikk for å undersøke signaloverføring og funksjon av GPCR 10 </sopp>, 11. I de fleste tilfeller fører til internalisering desensibilisering av GPCR (dempningen av stimulus respons på tross av nærvær av agonister) 12, 13. De internalisert reseptorene kan bli innlemmet i lysosomet og brytes ned, eller de kan resirkuleres tilbake til celleoverflaten, avhengig av naturen av reseptorene og cellelinjene anvendt i eksperimentene.
De gonadotropinfrigjørende hormon-reseptorer (GnRHRs) tilhører den GPCR familien og har en typisk GPCR proteinstruktur, med et ekstracellulært aminoterminal, en intracellulær -COOH terminal, og syv transmembran (TM) domener 14. Den transfeksjon av rekombinant plasmid Sj GnRHR-EGFP (med GnRHR genet fra Sepiella japonica) og den konfokal mikroskopi påvisning av EGFP-merket Sj GnRHR (uttrykt i HEK293 celler) ble rapportert previouslu, og GFP fluorescens ble etablert som en reporter for transmembranprotein lokaliserings analyser 15. Nå, internalisering av Sj GnRHR, aktivert av S. japonica gonadotropin-frigjørende hormon (GnRH Sj), ble demonstrert i tids- og doseavhengig oppførsel ved hjelp av konfokal mikroskopi.
Protokollen som presenteres her tilveiebringer en effektiv og lett tolkbar metode for å påvise subcellulære lokalisering og internalisering av uttrykt GPCR fusjonsprotein i HEK293-celler. Teknikken kan lett tilpasses til mange forskjellige gener og celletyper, slik som for cellulær lokalisering og internalisering av den corazonin reseptoren fra Bombyx mori i HEK293 og BMN celler 16.
Vellykket bruk av dette kraftige analysen bygger på noen viktige faktore…
The authors have nothing to disclose.
The authors of this paper would like to thank Prof. Jiayan Xie for technical assistance and equipment usage. This work was financially supported by the National Natural Science Foundation of China (41406137).
HEK293 cell line | |||
DMEM/High glucose | Hyclone | SH30022.01 | High glucose 4.0 mM L-glutamine |
Foetal Bovine Serum (FBS) | PuFei | 1101-100 | |
Phosphate Buffered Saline (PBS) | Genom | GNM10010 | |
Penicillin-Streptomycin | Genom | GNM15140 | |
0.25% Trypsin & 0.02% EDTA | Genom | GNM25200 | |
Opti-MEM (1X) | GIBCO, by Life Technologies | 31985-062 | reduced serum media |
Lipofectamine 2000 Transfection Reagent | Invitrogen | 11668027 | Reagent 1 |
X-tremeGENE HP DNA Transfection Reagent | Roche | 6366236001 | Reagent 2 |
DAPI Staining Solution | Beyotime | C1006 | |
DiI | Beyotime | C1036 | |
Antifade Mounting Medium | Beyotime | P0126 | |
Paraformaldehyde | Sinopharm Chemical Reagent Co.(SCRC) | 80096618 | |
100 mm cell culture | CORNING | 430167 | |
6-well plate | ExCell Bio | CS016-0092 | |
12-well plate | ExCell Bio | CS016-0093 | |
Cover Glass | NEST | 801007 | |
Microscope Slides | Citoglas | 10127105P-G | |
Thermo Scientific Forma CO2 Incubator | Thermo | 3111 | |
TCS SP5II laser scanning confocal microscope | Leica | 5100001311 |