Summary

Mesure de la signalisation des récepteurs couplés à la protéine G via liaison GTP radiomarquée

Published: June 09, 2017
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Summary

La liaison à la guanosine triphosphate (GTP) est l'un des premiers événements dans l'activation du récepteur couplé aux protéines G (GPCR). Ce protocole décrit comment caractériser pharmacologiquement des interactions spécifiques de GPCR-ligand en surveillant la liaison de l'analogue GTP radio-marqué, [ 35 S] guanosine-5'-O- (3-thio) triphosphate ([ 35 S] GTPγS), en Réponse à un ligand d'intérêt.

Abstract

Les récepteurs couplés à la protéine G (GPCR) sont une grande famille de récepteurs transmembranaires qui jouent un rôle critique dans la physiologie cellulaire normale et constituent une cible pharmacologique majeure pour de multiples indications, y compris l'analgésie, la régulation de la pression artérielle et le traitement des maladies psychiatriques. Lors de la liaison au ligand, les GPCR catalysent l'activation des protéines G intracellulaires en stimulant l'incorporation du guanosine triphosphate (GTP). Les protéines G activées stimulent alors les voies de signalisation qui provoquent des réponses cellulaires. La signalisation GPCR peut être surveillée en mesurant l'incorporation d'une forme radiomarquée et non hydrolysable de GTP, [ 35 S] guanosine-5'-O- (3-thio) triphosphate ([ 35 S] GTPγS), en protéines G. Contrairement à d'autres méthodes qui évaluent plus de processus de signalisation en aval, [ 35 S] GTPγS binding mesure un événement proximal dans la signalisation GPCR et, surtout, peut distinguer l'agonisTs, antagonistes et agonistes inverse. Le présent protocole décrit une méthode sensible et spécifique pour l'étude de la signalisation GPCR en utilisant des préparations à membrane brute d'un GPCR archétypal, le récepteur μ-opioïde (MOR1). Bien qu'il existe des approches alternatives pour le fractionnement des cellules et des tissus, beaucoup sont coûteuses, fastidieuses et / ou nécessitent des équipements de laboratoire non standard. La présente méthode fournit une procédure simple qui enrichit les membranes brutes fonctionnelles. Après avoir isolé MOR1, diverses propriétés pharmacologiques de son agoniste, [D-Ala, N-MePhe, Gly-ol] -enkephalin (DAMGO) et antagoniste, naloxone, ont été déterminées.

Introduction

Les récepteurs couplés aux protéines G (GPCR) sont une grande famille de récepteurs de surface cellulaire responsables d'une gamme remarquable de processus physiologiques, y compris l'analgésie, l'olfaction et le comportement 1 . Les GPCR agissent en détectant des signaux externes spécifiques et en stimulant ensuite la signalisation intracellulaire. Ils marquent donc une jonction clé entre les environnements externe et interne d'une cellule. En raison du rôle critique que jouent les GPCR dans la biologie, ils sont devenus des cibles majeures pour la recherche fondamentale et la découverte de médicaments 2 , 3 .

Contrairement à d'autres familles de récepteurs qui se lient à des ligands discrets, les GPCR peuvent lier des molécules très différentes. Alors qu'un GPCR peut interagir avec des peptides, un autre peut détecter les photons, les petites molécules ou les ions 1 , 4 . Bien que leurs ligands soient diversifiés, les GPCR sont unifiés dans leur architecte généralUre et fonction. Les GPCR individuels sont constitués de sept protéines transmembranaires α-hélicoïdales avec des terminaux amino extracellulaires et des terminaux carboxyle intracellulaires 5 , 6 . Les GPCR sont couplés aux protéines G intracellulaires – complexes de protéines hétérotrimères composés de sous-unités α, β et γ – qui opèrent sur différentes voies de signalisation 7 . La sous-unité G α est une protéine de liaison aux nucléotides de guanine qui est inactif lorsqu'elle est liée au diphosphate de guanosine (PIB) et active lorsqu'elle est liée au guanosine triphosphate (GTP) 8 , 9 . Lorsque les GPCR lient leurs ligands, ils subissent un changement conformationnel qui permet à G α de se dissocier de G βγ , permettant ainsi à G α d'échanger le PIB pour GTP 7 . Le récepteur lui-même est phosphorylé à son extrémité carboxyle par divers serine / threonIne kinases 10 , 11 et internalisées pour atténuer la signalisation du récepteur 12 , 13 , 14 . Pendant ce temps, le monomère G α activé et le dimère G βγ procèdent à l'activation de voies de signalisation distinctes 7 . Il existe plusieurs isoformes de chaque sous-unité de protéine G, et chaque isoforme cible des voies en aval et des systèmes de messagerie secondaire particuliers. Les principales isoformes de G α comprennent G s , G q , G i / o et G 12-13 . Généralement, les GPCR individuels s'associaient à une isoforme G α particulière, reliant ainsi un stimulus externe à une réponse cellulaire spécifique 1 .

La caractérisation d'une interaction GPCR-ligand est essentielle pour comprendre la biologie du récepteur. Comme l'échange de PIB / GTP est l'une des premières veilleNts qui suit la liaison du ligand, la surveillance de la liaison GTP peut mesurer l'activation ou l'inhibition du GPCR. L'analyse de plus d'événements en aval dans la signalisation GPCR n'est souvent pas aussi quantitatif ni stoechiométrique, peut ne pas distinguer les agonistes complets de ceux partiels et peut nécessiter des réactifs coûteux. En outre, l'augmentation de la liaison GTP aux protéines G α est un événement presque universel suite à l'activation du GPCR, ce qui signifie que la mesure de la liaison GTP est un dosage largement applicable pour le suivi de l'activité de la plupart des GPCR. La mesure de la liaison GTP est une approche simple et rapide pour surveiller la signalisation GPCR dans les cellules surexprimant le récepteur d'intérêt ou dans le tissu indigène. Le présent protocole détaille un dosage fonctionnel de liaison GTP en utilisant un GPCR archétypal, le récepteur μ-opioïde (MOR1), pour déterminer quantitativement l'activité d'un agoniste et d'un antagoniste sur la signalisation GPCR.

Ce protocole décrit d'abord comment isoler les membranes brutes des cellules qui surexpriment MOR1. Notez queCe protocole ne se limite pas aux systèmes de surexpression et peut être appliqué à de nombreuses sources de membrane, y compris des tissus indigènes ou des préparations exprimant des récepteurs multiples et des protéines G 15 . Le protocole détaille ensuite comment mesurer la liaison d'un analogue GTP radioactif à ces membranes en réponse à des concentrations variables de [D-Ala, N-MePhe, Gly-ol] -enkephalin (DAMGO) ou de naloxone, un agoniste et antagoniste MOR1, respectivement. L'analogue GTP, [ 35 S] guanosine-5'-O- (3-thio) triphosphate ([ 35 S] GTPγS) n'est pas hydrolysable. Cette propriété est critique parce que les sous-unités G α présentent une activité GTPase intrinsèque 7 et élimineraient le phosphate gamma marqué sur un radiochimique GTP hydrolysable. Les membranes sont ensuite piégées sur des filtres à fibres de verre et lavées, après quoi le GTP radiomarqué est quantifié par comptage par scintillation liquide. Des paramètres pharmacologiques multiples peuvent être dérivés pour caractériserE l'interaction récepteur-ligand, y compris la réponse demi-maximale (EC 50 ) et le coefficient Hill (n H ) pour les agonistes et la concentration inhibitrice demi-maximale (IC 50 ) et la constante de dissociation à l'équilibre (K b ) pour les antagonistes 16 , 17 , 18 .

Protocol

1. Expression de HA-MOR1 recombinant dans des cellules cultivées REMARQUE: Suivez tous les protocoles de culture cellulaire dans une hotte à flux laminaire stérile. Stériliser le capot de flux laminaire de culture cellulaire avec 70% d'éthanol et maintenir une technique stérile tout au long de la culture cellulaire. Préparer le milieu de culture cellulaire des cellules de rein embryonnaires humaines 293 (HEK293), compléter le milieu Eagle Eagle (DMEM) modifi?…

Representative Results

Le fractionnement cellulaire peut être utilisé pour isoler et enrichir les protéines associées à la membrane à partir de protéines cytosoliques et nucléaires. La figure 1 est une Western blot démontrant le contenu des trois fractions primaires qui peuvent être collectées pendant le processus de fractionnement sous-cellulaire. Plus précisément, la figure 1 montre que le fractionnement sépare de manière propre les p…

Discussion

Le présent protocole décrit deux méthodes distinctes mais complémentaires: une approche simple pour fractionner les cellules et les tissus dans des compartiments larges mais distincts et un moyen d'étudier la signalisation GPCR en mesurant la liaison [ 35 S] GTPγS.

Le fractionnement cellulaire efficace a une large gamme d'applications, allant de l'extraction et l'enrichissement des protéines, à l'évaluation de la localisation subcellulaire des protéin…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par la subvention DA-000266 des instituts nationaux de la santé et la subvention T32 du programme de formation des scientifiques scientifiques (CV, NWZ et PCS). Les auteurs souhaiteraient également reconnaître somersault18: 24 (somersault1824.com) pour la Bibliothèque des Sciences et des Illustrations médicales.

Materials

DMEM, high glucose, pyruvate, no glutamine Thermo Fisher Scientific 10313021 Warm in 37°C water bath before use
L-glutamine Thermo Fisher Scientific 25030081 Warm in 37°C water bath before use
Penicillin-Streptomycin Thermo Fisher Scientific 15140122 Warm in 37°C water bath before use
Opti-MEM I Reduced Serum Medium Thermo Fisher Scientific 31985070 Warm in 37°C water bath before use
Fetal Bovine Serum Thermo Fisher Scientific 16000044 Warm in 37°C water bath before use
Cell culture 10-cm plate Sigma-Aldrich CLS430167
Lipofectamine 3000 reagent Thermo Fisher Scientific L3000-008
1.6 mL microcentrifuge tubes USA Scientific 1615-5500
4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic acid (HEPES) Sigma-Aldrich H3375
Tris(hydroxymethyl)aminomethane (Trizma base) Thermo Fisher Scientific BP152-1
ethylene glycol-bis(β-aminoethyl ether)-N,N,N',N'-tetraacetic acid (EGTA) Sigma-Aldrich E3889
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Sigma-Aldrich E9884
Sucrose Sigma-Aldrich S5016
cOmplete ULTRA Tablets, Mini, EASYpack Protease Inhibitor Cocktail Sigma-Aldrich 2900
DL-Dithiothreitol (DTT) Sigma-Aldrich DO632
Sodium chloride (NaCl) Thermo Fisher Scientific BP358-1
Magnesium chloride (MgCl2) Sigma-Aldrich M1028-1
Pellet pestles motor Sigma-Aldrich Z359971
Pestles Bel Art F19923-0001
Bovine serum albumin (BSA) Affymetrix 10857
[35S]guanosine-5’-O-(3-thio)triphosphate ([35S]GTPγS)  Perkin Elmer NEG030H
non-radiolabeled guanosine-5’-O-(3-thio)triphosphate (GTPγS)  Sigma-Aldrich 89378
guanosine diphosphate (GDP) Sigma-Aldrich 51060
Bradford reagent Bio-Rad 5000006
UV/VIS spectrophotometer Beckman Coulter DU640
spectrophotometer cuvettes USA Scientific 9090-0460
orbital shaker Thermo Fisher Scientific 2314
thermomixer Eppendorf 535027903
glass fiber filters  GE Healthcare Life Sciences 1821-021
vacuum filtration apparatus Millipore Corporation XX2702550
desktop microcentrifuge Eppendorf 65717
Scintillation counter Beckman Coulter LS6500
scintillation fluid  Ecoscint A LS-273
scintillation counter vials Beckman Coulter 592690
scintillation vial lids Beckman Coulter 592928
Prism 6 GraphPad Software PRISM 6
ATP1A1 antibody Developmental Studies Hybridoma a6F 1:1000 in 3% BSA
GAPDH antibody EMD Millipore CB1001 1:5000 in 3% BSA
H2B antibody Cell Signaling 2934S 1:2500 in 3% BSA
PDI antibody Cell Signaling 3501S 1:1000 in 3% BSA
HA antibody Roche 11867423001 1:2000 in 3% BSA

References

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Vasavda, C., Zaccor, N. W., Scherer, P. C., Sumner, C. J., Snyder, S. H. Measuring G-protein-coupled Receptor Signaling via Radio-labeled GTP Binding. J. Vis. Exp. (124), e55561, doi:10.3791/55561 (2017).

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