Summary

Analyse av retinsyre-indusert Neural Differensiering av mus embryonale stamceller i to og tre-dimensjonale embryoidlegemer

Published: April 22, 2017
doi:

Summary

Vi beskriver en teknikk for anvendelse av muse embryonale stamceller for generering av to eller tredimensjonale embryoidlegemene. Vi forklarer hvordan å indusere differensiering av nevrale embryoid kroppscellene hos retinsyre, og hvordan å analysere deres tilstand av differensiering av stamceller markør immunfluorescens og immunblotting.

Abstract

Muse embryonale stamceller (ESCS) er isolert fra den indre massen av blastocysten (typisk dag E3.5), kan bli anvendt som in vitro modellsystem for å studere tidlige embryoutvikling. I fravær av leukemi-inhiberende faktor (LIF), ESCs differensiere som standard i neurale forløperceller. De kan bli samlet inn i en tre-dimensjonal (3D) sfærisk aggregat betegnet embryoid legeme (EB) på grunn av dets likhet til tidlig stadium embryo. EBS kan podes på fibronectin-belagte dekkglass, hvor de utvider seg ved økende todimensjonale (2D) utvidelser eller implantert i 3D kollagenmatrikser hvor de fortsetter å vokse som sfæroider, og skille ut de tre kimlag: endodermal, mesodermal, og ectodermal. 3D-kollagen kulturen etterligner in vivo miljøet tettere enn 2D EBS. 2D EB kultur muliggjør analyse av immunfluorescens og immunblotting for å spore differensiering. Vi har utviklet en to-trinns nevrale differentiasjon protokoll. I det første trinn blir EBS generert av den hengende dråpe-teknikk, og, samtidig, blir indusert til å differensiere ved hjelp av eksponering for retinsyre (RA). I det andre trinnet, neural differensiering forløper i et 2D eller 3D-format i fravær av RA.

Introduction

ESCs stammer fra blastocyst indre cellemasse. Disse cellene er pluripotent, dvs. de har kapasitet til å differensiere i en celle type organisme opprinnelsesland. ESC in vitro differensiering er av bred interesse som et eksperimentelt system for å undersøke utviklingsveier og mekanismer. Det har en kraftig og fleksibel modellsystem for å teste nye terapeutiske tilnærminger for korrigering av celle og vev dysfunksjon. EBS rekapitulere mange aspekter av celledifferensiering i tidlig embryogenese. Spesielt kan EBS brukes når embryoniske letalitet gjør det vanskelig å bestemme den cellulære basis av de embryoniske defekter 1, 2. EBS kan dannes enten ved den hengende dråpe eller flytende suspensjonsteknikker 3. Fordelen med det tidligere er evnen til å generere EBS med jevn størrelse og tetthet og letter således eksperimentelle reproduserbarhet.

<p class = "jove_content"> Interaksjon med ekstracellulære matriks (ECM) adhesjonsproteiner kan påvirke motilitet og overlevelse av adherente celler. I det 2D-kultursystemet, er fibronektin ofte brukt for å øke celle adhesjon til substratet. Fibronektin er et basal lamina komponent som gjenkjennes av 10 typer av celleoverflate-integrin-heterodimerer 4.

RA er en liten lipofilt metabolitt av vitamin A som induserer differensiering neural 5, 6. Høye konsentrasjoner av RA fremme nerve genekspresjon og undertrykker mesodermal genekspresjon i løpet av EB formasjon 7, 8. RA er produsert av vitamin A-oksydasjon til retinaldehyde ved enten alkohol eller retinol-dehydrogenase, etterfulgt av retinaldehyde oksydasjon til det endelige produkt ved retinaldehyde dehydrogenase 9. Neural differensiering krever transport av RA fra cytoplasma til kjernen ved cellulære RA-bindende protein 2 (CRABP2). I kjernen, RA bindes til sin tilhørende reseptor-komplekset som består av en RAR-RXR heterodimer 10. Dette resulterer i rekruttering av transkripsjonelle ko-aktivatorer, og initiering av transkripsjon 9, 11. Videre fremmer RA nedbrytningen av fosforylert (aktiv) Smad 1, således antagonisering BMP og SMAD signale 12. I tillegg til disse aktiviteter øker RA Pax6 uttrykk, en transkripsjonsfaktor som støtter nevrale differensiering 13. RA signale moduleres av Sirtuin-1 (SIRT1), en kjernefysisk nikotinamid-adenin-dinukleotid (NAD +) – avhengig enzym som deacetylates CRABP2, interferere med dens translokasjon til kjernen, og følgelig med RA-binding til RAR-RXR heterodimer 14, 15, 16.

e_content "> Vårt mål i utformingen av RA-behandlede EB protokollen som er beskrevet her er for å optimalisere neural differensiering for å lette in vitro-analyse av de signalveier som regulerer ESC differensiering til neuronale forløperceller. En av fordelene ved denne protokollen er tilrettelegging av analyse av cellefunksjon ved immunfluorescens. 3D EBS ikke er godt gjennomtrengt av antistoffer og er vanskelige å bilde. EB dissosiering i et 2D-monolaget på bestemte tidspunkter i løpet av neural differensiering letter immunmerking og avbildning av cellene ved hjelp av konfokal mikroskopi.

Protocol

1. Culture of Mouse embryonale fibroblaster (MEFs) Forbered MEF medium, Dulbeccos modifiserte Eagles medium (DMEM, høy glukose), supplert med 15% føtalt bovint serum (FBS). Coat 100 mm cellekulturskåler med 0,5% gelatinoppløsning i 30 minutter ved romtemperatur (RT). Telle MEFs ved hjelp av en cytometer. Fjern gelatinoppløsningen og før den helles MEF medium forvarmet til 37 ° C. Hurtig tines hetteglass med mitomycin-C-behandlede MEFs i et 37 ° C vannbad i 2 minutter, deretter frø…

Representative Results

Oct4, Nanog, og SOX2 er kjernen transkripsjonsfaktorer som utviser ESC selvfornyelse og pluripotency. Vi anvendte den ovennevnte protokoll for å sammenligne det neurale differensiering av ESCs fra villtypen og fra en stamme av genetisk modifiserte mus hvor Syx, et gen som koder for den RhoA spesifikke utveksling faktor Syx, blir forstyrret. Vi hadde innblandet Syx i angiogenese 18. Vi la merke til forskjeller i atferd av EBS aggregeres fra Syx +…

Discussion

I denne protokollen presenterer vi en forholdsvis enkel og tilgjengelig metode for å studere nevrale differensiering av murine ESCs. I tidligere protokoller, ble RA tilsatt til mediet på dag 2 og dag 4 av den EB hengende dråpe 8 eller ved suspensjonskultur 7, henholdsvis, eller umiddelbart etter EB hengende dråpe aggregering 21. I protokollen vi utviklet, ble RA lagt tidligere. Til tross for den tidligere innføring av RA til EBS dannet av suspe…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne studien ble støttet av NIH stipend R01 HL119984 til AH

Materials

Materials
MEFs EMD Millipore PMEF-CF ESC feeder layer
ESC EMD Millipore CMTI-2
Cell culture dish (60 mm) Eppendorf 30701119 Cell culture
Cell culture dish (100 mm) Falcon 353003 Cell culture
Petri dish (100 mm) Corning 351029 Hanging drops
24-well plate Greiner Bio-One 662160 2D EBs
6-well plate Eppendorf 30720113 Transfection
Dark 1.5 ml centrifuge tube Celltreat Scientific Products 229437 RA stock solution
Microscope cover-glass Fisherbrand 12-545-80 Circular, 12 mm diameter
Superfrost-plus microscope slides Fisherbrand 12-550-15
3D collagen culture kit EMD Millipore ECM675 3D culture
Effectene Transfection Reagent Qiagen 301427 Stem cell transfection
Microcon Centrifugal Filters (10 kDa) EMD Millipore MRCPRT010 Protein concentration
Name  Company Catalog Number Comments
Reagents
DMEM Lonza 12-709F MEFs culture
IMDM Gibco 12440-046 ESCs culture
Fetal bovine serum (FBS) EMD Millipore ES-009-B ESCs culture
Gelatin Sigma-Aldrich G2625 Dish coating
LIF R&D Systems 8878-LF-025 To maintain ESC pluripotency
MEM Non-Essential Amino Acids Solutions Gibco 11140050 Cell culture
2-Mercaptoethanol Gibco 21985023 Cell culture
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140122 Cell culture
Gentamicin Gibco 15750060 Cell culture
MycoZap Plus-PR Lonza VZA-2022 Cell culture
0.25% Trypsin-EDTA Gibco 25200-072 Cell culture
DMSO Sigma-Aldrich D2650
All-trans-retinoic acid Sigma-Aldrich R2625-50MG Induction of neural differentiation
Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich A7030-50G Blocking and antibody dilution 
Triton X-100 Sigma-Aldrich T8787-100ML Cell membrane permeabilization
Cell strainer Corning 352360
Prolong Gold anti-fade reagent with DAPI Life Tech. P36931 Mounting reagent
16% Paraformaldehyde  Electron Microscopy Sciences 15710 Cell fixation
Fibronectin R&D Systems 1030-FN Dish coating
PBS Gibco 10010049
Collagenase type I Worthington Biochem. Corp LS004196 EB dissociation
Name  Company Catalog Number Comments
Primary Antibodies
Nestin (Rat-401) Santa Cruz Biotech sc-33677 Detection of neural differentiation
Oct4 Santa Cruz Biotech sc-5279 Detection of neural differentiation
Nanog Bethyl Laboratories A300-398A Detection of neural differentiation
Sox2 Cell Signaling 3579 Detection of neural differentiation
Tubulin b3 (AA10) Santa Cruz Biotech sc-80016 Detection of neural differentiation
Name  Company Catalog Number Comments
Secondary Antibodies
Donkey anti-Mouse-Alexa555 Life Tech. A31570 Immunofluorescence
Donkey anti-mouse-Alexa488  Life Tech. A21202 Immunofluorescence
Name  Company Catalog Number Comments
Instruments
Wide-field microscope Nikon Eclipse TS100 Cell culture imaging
Confocal microscope Nikon C2 Immunofluorescence imaging

References

  1. Hopfl, G., Gassmann, M., Desbaillets, I. Differentiating embryonic stem cells into embryoid bodies. Methods Mol Biol. 254, 79-98 (2004).
  2. Itskovitz-Eldor, J., et al. Differentiation of human embryonic stem cells into embryoid bodies compromising the three embryonic germ layers. Mol Med. 6 (2), 88-95 (2000).
  3. Dang, S. M., Kyba, M., Perlingeiro, R., Daley, G. Q., Zandstra, P. W. Efficiency of embryoid body formation and hematopoietic development from embryonic stem cells in different culture systems. Biotechnol Bioeng. 78 (4), 442-453 (2002).
  4. Johansson, S., Svineng, G., Wennerberg, K., Armulik, A., Lohikangas, L. Fibronectin-integrin interactions. Front Biosci. 2, d126-d146 (1997).
  5. Blumberg, B. An essential role for retinoid signaling in anteroposterior neural specification and neuronal differentiation. Semin Cell Dev Biol. 8 (4), 417-428 (1997).
  6. Ross, S. A., McCaffery, P. J., Drager, U. C., De Luca, L. M. Retinoids in embryonal development. Physiol Rev. 80 (3), 1021-1054 (2000).
  7. Bain, G., Ray, W. J., Yao, M., Gottlieb, D. I. Retinoic acid promotes neural and represses mesodermal gene expression in mouse embryonic stem cells in culture. Biochem Biophys Res Commun. 223 (3), 691-694 (1996).
  8. Okada, Y., Shimazaki, T., Sobue, G., Okano, H. Retinoic-acid-concentration-dependent acquisition of neural cell identity during in vitro differentiation of mouse embryonic stem cells. Dev Biol. 275 (1), 124-142 (2004).
  9. Duester, G. Retinoic acid synthesis and signaling during early organogenesis. Cell. 134 (6), 921-931 (2008).
  10. Niederreither, K., Dolle, P. Retinoic acid in development: towards an integrated view. Nat Rev Genet. 9 (7), 541-553 (2008).
  11. Maden, M. Retinoic acid in the development, regeneration and maintenance of the nervous system. Nat Rev Neurosci. 8 (10), 755-765 (2007).
  12. Sheng, N., et al. Retinoic acid regulates bone morphogenic protein signal duration by promoting the degradation of phosphorylated Smad1. Proc Natl Acad Sci U S A. 107 (44), 18886-18891 (2010).
  13. Gajovic, S., St-Onge, L., Yokota, Y., Gruss, P. Retinoic acid mediates Pax6 expression during in vitro differentiation of embryonic stem cells. Differentiation. 62 (4), 187-192 (1997).
  14. Dong, D., Ruuska, S. E., Levinthal, D. J., Noy, N. Distinct roles for cellular retinoic acid-binding proteins I and II in regulating signaling by retinoic acid. J Biol Chem. 274 (34), 23695-23698 (1999).
  15. Sessler, R. J., Noy, N. A ligand-activated nuclear localization signal in cellular retinoic acid binding protein-II. Mol Cell. 18 (3), 343-353 (2005).
  16. Tang, S., et al. SIRT1-Mediated Deacetylation of CRABPII Regulates Cellular Retinoic Acid Signaling and Modulates Embryonic Stem Cell Differentiation. Mol Cell. 55 (6), 843-855 (2014).
  17. Yang, J., et al. RhoA inhibits neural differentiation in murine stem cells through multiple mechanisms. Sci Signal. 9 (438), ra76 (2016).
  18. Garnaas, M. K., et al. Syx, a RhoA guanine exchange factor, is essential for angiogenesis in Vivo. Circ Res. 103 (7), 710-716 (2008).
  19. Chou, Y. H., Khuon, S., Herrmann, H., Goldman, R. D. Nestin promotes the phosphorylation-dependent disassembly of vimentin intermediate filaments during mitosis. Mol Biol Cell. 14 (4), 1468-1478 (2003).
  20. Arai, T., Matsumoto, G. Subcellular localization of functionally differentiated microtubules in squid neurons: regional distribution of microtubule-associated proteins and beta-tubulin isotypes. J Neurochem. 51 (6), 1825-1838 (1988).
  21. Arnhold, S., Klein, H., Semkova, I., Addicks, K., Schraermeyer, U. Neurally selected embryonic stem cells induce tumor formation after long-term survival following engraftment into the subretinal space. Invest Ophthalmol Vis Sci. 45 (12), 4251-4255 (2004).
  22. Liu, Y., et al. Retinoic acid receptor beta mediates the growth-inhibitory effect of retinoic acid by promoting apoptosis in human breast cancer cells. Mol Cell Biol. 16 (3), 1138-1149 (1996).
  23. Altucci, L., et al. Retinoic acid-induced apoptosis in leukemia cells is mediated by paracrine action of tumor-selective death ligand TRAIL. Nat Med. 7 (6), 680-686 (2001).
  24. Pettersson, F., Dalgleish, A. G., Bissonnette, R. P., Colston, K. W. Retinoids cause apoptosis in pancreatic cancer cells via activation of RAR-gamma and altered expression of Bcl-2/Bax. Br J Cancer. 87 (5), 555-561 (2002).
  25. Kothapalli, C. R., Kamm, R. D. 3D matrix microenvironment for targeted differentiation of embryonic stem cells into neural and glial lineages. Biomaterials. 34 (25), 5995-6007 (2013).
  26. Cai, J., et al. BMP and TGF-beta pathway mediators are critical upstream regulators of Wnt signaling during midbrain dopamine differentiation in human pluripotent stem cells. Dev Biol. 376 (1), 62-73 (2013).
check_url/55621?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Yang, J., Wu, C., Stefanescu, I., Horowitz, A. Analysis of Retinoic Acid-induced Neural Differentiation of Mouse Embryonic Stem Cells in Two and Three-dimensional Embryoid Bodies. J. Vis. Exp. (122), e55621, doi:10.3791/55621 (2017).

View Video