Summary

Kondrogen pelletsdannelse fra ledningsblod-afledte inducerede pluripotente stamceller

Published: June 19, 2017
doi:

Summary

Her foreslår vi en protokol for chondrogen differentiering fra ledningsblodmononukleære celleafledte humant inducerede pluripotente stamceller.

Abstract

Human ledbrusk mangler evnen til at reparere sig selv. Bruskdegeneration behandles således ikke ved helbredende men ved konservative behandlinger. I øjeblikket bestræbes der på at regenerere beskadiget brusk med ex vivo ekspanderede chondrocytter eller knoglemarvafledte mesenkymale stamceller (BMSC'er). Den begrænsede levedygtighed og ustabilitet af disse celler begrænse deres anvendelse i brusk-rekonstruktion. Humant inducerede pluripotente stamceller (hiPSCs) har modtaget videnskabelig opmærksomhed som et nyt alternativ til regenerative applikationer. Med ubegrænset selvfornyelsesevne og multipotens er hiPSCs blevet fremhævet som en ny erstatningscellekilde til bruskreparation. At opnå en høj mængde chondrogenpellets af høj kvalitet er imidlertid en stor udfordring for deres kliniske anvendelse. I denne undersøgelse anvendte vi embryoidlegeme (EB) -afledte udvækstceller til chondrogen differentiering. Succesfuld chondrogenese blev bekræftet af PCR anD farvning med alcianblåt, toluidinblåt og antistoffer mod henholdsvis kollagentyperne I og II (henholdsvis COL1A1 og COL2A1). Vi tilvejebringer en detaljeret metode til differentiering af blodmononukleære celleafledte iPSC'er (CBMC-hiPSC'er) til chondrogenpellets.

Introduction

Brugen af ​​hiPSC'er repræsenterer en ny strategi for lægemiddel screening og mekanistiske undersøgelser af forskellige sygdomme. Fra et regenerativt perspektiv er hiPSC'er også en potentiel kilde til udskiftning af beskadigede væv, der har begrænset helbredelsesevne, såsom ledbrusk 1 , 2 .

Regenerering af indfødt leddbrusk har været en udfordring i flere årtier. Ledbrusk er et blødt, hvidt væv, der strækker slutningen af ​​knoglerne og beskytter dem mod friktion. Det har dog begrænset regenerativ evne, når den er beskadiget, hvilket gør selvreparation næsten umulig. Derfor har forskning fokuseret på bruskregenerering været igangværende i flere årtier.

Tidligere blev in vitro differentiering i den kondrogeniske linie sædvanligvis udført med BMSC'er eller native chondrocytter isoleret fra knæleddet 3 . På grund af tO deres chondrogen potentiale, BMSC'er og native kondrocytter har mange fordele, der støtter deres anvendelse i chondrogenese. På grund af deres begrænsede ekspansion og ustabile fænotype står disse celler imidlertid over for flere begrænsninger ved genopbygningen af ​​leddbruskdefekter. Under in vitro kulturbetingelser har disse celler tendens til at miste deres egen karakteristika efter 3-4 passager, hvilket i sidste ende påvirker deres differentieringsevner 4 . Også i tilfælde af native kondrocytter er yderligere skader på knæleddet uundgåeligt, når man opnår disse celler.

I modsætning til BMSC'er eller native kondrocytter kan hiPSC'er uendeligt udvide in vitro . Med de rette kulturbetingelser har hiPSC'er stort potentiale som en erstatningskilde for chondrogen differentiering. Imidlertid er det udfordrende at ændre de høje egenskaber hos hiPSCs 5 . Desuden tager det flere komplicerede in vitro stePs til at styre hiPSCs skæbne til en bestemt celletype. På trods af disse komplikationer anbefales brug af hiPSC'er stadig på grund af deres høje selvfornyelsesevner og deres evne til at differentiere til målrettede celler, herunder chondrocytter 6 .

Kondrogene differentiering udføres sædvanligvis med tredimensionale dyrkningssystemer, såsom pelletkulturen eller mikromassekulturen ved anvendelse af MSC-lignende stamceller. Hvis du bruger hiPSC'er, adskiller protokollen til at generere MSC-lignende stamceller fra de eksisterende protokoller. Nogle grupper bruger monolagskultur af hiPSC'er til direkte at omdanne fænotypen til MSC-lignende celler 7 . De fleste studier bruger dog EB'er til at generere udvækstceller, der ligner MSC 8 , 9 , 10 , 11 .

Forskellige typer vækstfaktorer anvendes til at fremkalde chondrogeNesis. Normalt anvendes BMP- og TGFβ-familieproteiner alene eller i kombination. Differentiering er også blevet induceret med andre faktorer, såsom GDF5, FGF2 og IGF1 12 , 13 , 14 , 15 . TGFβ1 har vist sig at stimulere chondrogenese på en dosisafhængig måde i MSC'er 16 . Sammenlignet med den anden isotype, TGFβ3, inducerer TGFβ1 chondrogenese ved at forøge præ-brusk-mesenkymcellekondensationen. TGFβ3 inducerer chondrogenese ved signifikant at forøge mesenchymcelleproliferationen 17 . Imidlertid anvendes TGFβ3 oftere af forskere end TGFβ1 7 , 10 , 18 , 19 . BMP2 forøger ekspressionen af ​​gener relateret til de chondrogeniske matrixkomponenter i humantArtikulære chondrocytter under in vitro betingelser 20 . BMP2 øger ekspressionen af ​​gener, der er kritiske for bruskdannelse i MSC'er i kombination med TGFβ-proteiner 21 . Det har også vist sig, at BMP2 synergistisk forøger effekten af ​​TGFβ3 gennem Smad- og MAPK-banerne 22 .

I denne undersøgelse blev CBMC-hiPSC'er aggregeret i EB'er ved anvendelse af EB-medium i en petriskål med lav vedhæftning. Udvækstceller blev induceret ved at binde EB'erne til en gelatinecoated skål. Kondrogene differentiering ved hjælp af udvækstceller blev udført ved pellets kultur. Behandling med både BMP2 og TGFβ3 kondenserede succesfuldt cellerne og induceret ekstracellulær matrix (ECM) proteinakkumulering til chondrogen pelletsdannelse. Denne undersøgelse antyder en simpel, men effektiv chondrogene differentieringsprotokol ved anvendelse af CBMC-hiPSC'er.

Protocol

Denne protokol blev godkendt af det institutionelle reviewskort i det katolske universitet i Korea (KC12TISI0861). CBMC'er, der blev anvendt til omprogrammering, blev direkte hentet fra Cord Blood Bank i Seoul St. Mary's Hospital. 1. Chondrogen Differentiering fra iPSCs CBMC-iPSC generation Generer CBMC-hiPSC'er ved hjælp af protokollen vist i vores tidligere arbejde 23 . Saml blodcellerne i et 15 ml konisk r…

Representative Results

I dette studie genererede vi chondrogenpellets fra CBMC-hiPSC'er ved at fremkalde udvækstceller fra EB'er. Kondrogene differentiering blev induceret under anvendelse af CBMC-hiPSC'er med bekræftet høj pluripotens 11 . En simpel skema af vores protokol er vist i figur 1A . Før differentiering blev iPSC-kolonier ekspanderet ( figur 1B ). De udvidede iPSC'er blev samlet som EB'er for …

Discussion

Denne protokol genererede succesfulde hiPSC'er fra CBMC'er. Vi omprogrammerede CBMC'er til hiPSC'er ved anvendelse af en Sendai viral vektor indeholdende Yamanaka faktorer 24 . Tre sager blev anvendt i differentiering, og alle forsøg med succes fremkaldte chondrogenpellets ved anvendelse af denne protokol. Talrige undersøgelser har rapporteret protokoller til differentieringen af ​​hiPSC'er i chondrocytter 25 , 26</sup…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af et tilskud fra Korea Healthcare Technology R & D-projektet, Ministeriet for Sundhed, Velfærd og Familie, Republikken Korea (HI16C2177).

Materials

Plasticware
100mm Dish TPP 93100
6-well Plate TPP 92006
50 mL Cornical Tube SPL 50050
15 mL Cornical Tube SPL 50015
10 mL Disposable Pipette Falcon 7551
5 mL Disposable Pipette Falcon 7543
12-well Plate TPP 92012
Name Company Catalog Number Description
E8 Medium Materials
DMEM/F12, HEPES Life Technologies 11330-057 E8 Medium (500 mL)
Sodium Bicarbonate Life Technologies 25080-094 E8 Medium (Conc.: 543 μg/mL)
Sodium Selenite Sigma Aldrich S5261 E8 Medium  (Conc.: 14 ng/mL)
Human Transfferin Sigma Aldrich T3705 E8 Medium (Conc.: 10.7 μg/mL)
Basic FGF2 Peprotech 100-18B E8 Medium  (Conc.: 100 ng/mL)
Human Insulin Life Technologies 12585-014 E8 Medium (Conc.: 20 μg/mL)
Human TGFβ1 Peprotech 100-21 E8 Medium (Conc.: 2 ng/mL)
Ascorbic Acid Sigma Aldrich A8960 E8 Medium  (Conc.: 64 μg/mL)
DPBS Life Technologies 14190-144
Vitronectin Life Technologies A14700
ROCK Inhibitor Sigma Aldrich Y0503
Name Company Catalog Number Description
Quality Control Materials
18 mm Cover Glass Superior HSU-0111580
4% Paraformaldyhyde Tech & Innovation BPP-9004
Triton X-100 BIOSESANG 9002-93-1
Bovine Serum Albumin Vector Lab SP-5050
Anti-SSEA4 Antibody Millipore MAB4304
Anti-Oct4 Antibody Santa Cruz SC9081
Anti-TRA-1-60 Antibody Millipore MAB4360
Anti-Sox2 Antibody Biolegend 630801
Anti-TRA-1-81 Antibody Millipore MAB4381
Anti-Klf4 Antibody Abcam ab151733
Alexa Fluor 488 goat anti-mouse IgG (H+L) antibody Molecular Probe A11029
Alexa Fluor 594 goat anti-rabbit IgG (H+L) antibody Molecular Probe A11037
DAPI Molecular Probe D1306
Prolong gold antifade reagent Invitrogen P36934
4% Paraformaldyhyde Tech & Innovation BPP-9004
Tween 20 BIOSESANG T1027
Bovine Serum Albumin Vector Lab SP-5050
Anti-Collagen II antibody abcam  ab34712 1:100
Alcian blue Sigma Aldrich A3157-10G
Fast Green FCF Sigma Aldrich F7252-25G
Safranin O Sigma Aldrich 090m0039v
Nuclear fast red Americanmastertech STNFR100 
xylene Duksan 115 
Ethanol Duksan 64-17-5
Mayer's hematoxylin solution wako pure chemical industries LAK7534
DAP VECTOR LABORATORIES SK-4100
Slide Glass, Coated Hyun Il Lab-Mate HMA-S9914
Trizol Invitrogen 15596-018
Chloroform Sigma Aldrich 366919
Isoprypylalcohol Millipore 109634
Ethanol Duksan 64-17-5
RevertAid First Strand cDNA Synthesis kit Thermo Scientfic K1622
Name Company Catalog Number Description
Chondrogenic Differentiation Materials
DMEM Life Technologies 11885 Chondrogenic media component (500 mL)
Penicilin Streptomycin Life Technologies P4333 Chondrogenic media component (Conc.: 1 %)
Ascorbic Acid Sigma Aldrich A8960 Chondrogenic media component (Conc.: 64 μg/mL) 
MEM Non-Essential Amino Acids Solution (100X) Life Technologies 11140-050 Chondrogenic media component (Conc.: 100 mM)
rhBMP-2 R&D 355-BM-050 Chondrogenic media component (Conc.:100ng/ml)
Recombinant Hman TGF-beta3 R&D 243-B3-002 Chondrogenic media component (Conc.:10ng/ml)
KnockOut Serum Replacement Life Technologies 10828-028 Chondrogenic media component (Conc.: 1 %)
ITS+ Premix BD 354352 Chondrogenic media component (Conc.: 1 %)
Dexamethasone-Water Soluble  Sigma Aldrich D2915-100MG Chondrogenic media component (Conc.:10-7 M)
GlutaMAX Supplement Life Technologies 35050-061 Chondrogenic media component (Conc.: 1 %)
Sodium pyruvate solution Sigma Aldrich S8636 Chondrogenic media component (Conc.: 1 %)
L-Proline Sigma Aldrich P5607-25G Chondrogenic media component (40μg/ml)

References

  1. van Osch, G. J., et al. Cartilage repair: past and future–lessons for regenerative medicine. J Cell Mol Med. 13 (5), 792-810 (2009).
  2. Ahmed, T. A., Hincke, M. T. Strategies for articular cartilage lesion repair and functional restoration. Tissue Eng Part B Rev. 16 (3), 305-329 (2010).
  3. Diekman, B. O., et al. Cartilage tissue engineering using differentiated and purified induced pluripotent stem cells. Proc Natl Acad Sci USA. 109 (47), 19172-19177 (2012).
  4. Solchaga, L. A., Penick, K., Goldberg, V. M., Caplan, A. I., Welter, J. F. Fibroblast growth factor-2 enhances proliferation and delays loss of chondrogenic potential in human adult bone-marrow-derived mesenchymal stem cells. Tissue Eng Part A. 16 (3), 1009-1019 (2010).
  5. Guzzo, R. M., Drissi, H. Differentiation of Human Induced Pluripotent Stem Cells to Chondrocytes. Methods Mol Biol. 1340, 79-95 (2015).
  6. Drissi, H., Gibson, J. D., Guzzo, R. M., Xu, R. H. Derivation and Chondrogenic Commitment of Human Embryonic Stem Cell-Derived Mesenchymal Progenitors. Methods Mol Biol. 1340, 65-78 (2015).
  7. Nejadnik, H., et al. Improved approach for chondrogenic differentiation of human induced pluripotent stem cells. Stem Cell Rev. 11 (2), 242-253 (2015).
  8. Teramura, T., et al. Induction of mesenchymal progenitor cells with chondrogenic property from mouse-induced pluripotent stem cells. Cell Reprogram. 12 (3), 249-261 (2010).
  9. Koyama, N., et al. Human induced pluripotent stem cells differentiated into chondrogenic lineage via generation of mesenchymal progenitor cells. Stem Cells Dev. 22 (1), 102-113 (2013).
  10. Ko, J. Y., Kim, K. I., Park, S., Im, G. I. In vitro chondrogenesis and in vivo repair of osteochondral defect with human induced pluripotent stem cells. Biomaterials. 35 (11), 3571-3581 (2014).
  11. Nam, Y., Rim, Y. A., Jung, S. M., Ju, J. H. Cord blood cell-derived iPSCs as a new candidate for chondrogenic differentiation and cartilage regeneration. Stem Cell Res Ther. 8 (1), 16 (2017).
  12. Hotten, G. C., et al. Recombinant human growth/differentiation factor 5 stimulates mesenchyme aggregation and chondrogenesis responsible for the skeletal development of limbs. Growth Factors. 13 (1-2), 65-74 (1996).
  13. Murphy, M. K., Huey, D. J., Hu, J. C., Athanasiou, K. A. TGF-beta1, GDF-5, and BMP-2 stimulation induces chondrogenesis in expanded human articular chondrocytes and marrow-derived stromal cells. Stem Cells. 33 (3), 762-773 (2015).
  14. Shintani, N., Siebenrock, K. A., Hunziker, E. B. TGF-ss1 enhances the BMP-2-induced chondrogenesis of bovine synovial explants and arrests downstream differentiation at an early stage of hypertrophy. PLoS One. 8 (1), e53086 (2013).
  15. Fukumoto, T., et al. Combined effects of insulin-like growth factor-1 and transforming growth factor-beta1 on periosteal mesenchymal cells during chondrogenesis in vitro. Osteoarthritis Cartilage. 11 (1), 55-64 (2003).
  16. Worster, A. A., Nixon, A. J., Brower-Toland, B. D., Williams, J. Effect of transforming growth factor beta1 on chondrogenic differentiation of cultured equine mesenchymal stem cells. Am J Vet Res. 61 (9), 1003-1010 (2000).
  17. Knippenberg, M., et al. Differential effects of bone morphogenetic protein-2 and transforming growth factor-beta1 on gene expression of collagen-modifying enzymes in human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells. Tissue Eng Part A. 15 (8), 2213-2225 (2009).
  18. Jang, Y., et al. Centrifugal gravity-induced BMP4 induces chondrogenic differentiation of adipose-derived stem cells via SOX9 upregulation. Stem Cell Res Ther. 7 (1), 184 (2016).
  19. Kang, R., et al. Mesenchymal stem cells derived from human induced pluripotent stem cells retain adequate osteogenicity and chondrogenicity but less adipogenicity. Stem Cell Res Ther. 6, 144 (2015).
  20. Tao, H., et al. Biological evaluation of human degenerated nucleus pulposus cells in functionalized self-assembling peptide nanofiber hydrogel scaffold. Tissue Eng Part A. 20 (11-12), 1621-1631 (2014).
  21. Sekiya, I., Larson, B. L., Vuoristo, J. T., Reger, R. L., Prockop, D. J. Comparison of effect of BMP-2, -4, and -6 on in vitro cartilage formation of human adult stem cells from bone marrow stroma. Cell Tissue Res. 320 (2), 269-276 (2005).
  22. Shen, B., Wei, A., Tao, H., Diwan, A. D., Ma, D. D. BMP-2 enhances TGF-beta3-mediated chondrogenic differentiation of human bone marrow multipotent mesenchymal stromal cells in alginate bead culture. Tissue Eng Part A. 15 (6), 1311-1320 (2009).
  23. Rim, Y. A., Nam, Y., Ju, J. H. Induced Pluripotent Stem Cell Generation from Blood Cells Using Sendai Virus and Centrifugation. J Vis Exp. (118), (2016).
  24. Kim, Y., et al. The Generation of Human Induced Pluripotent Stem Cells from Blood Cells: An Efficient Protocol Using Serial Plating of Reprogrammed Cells by Centrifugation. Stem Cells Int. 2016, 1329459 (2016).
  25. Oldershaw, R. A., et al. Directed differentiation of human embryonic stem cells toward chondrocytes. Nat Biotechnol. 28 (11), 1187-1194 (2010).
  26. Toh, W. S., et al. Differentiation and enrichment of expandable chondrogenic cells from human embryonic stem cells in vitro. J Cell Mol Med. 13 (9B), 3570-3590 (2009).
  27. Hwang, N. S., Varghese, S., Elisseeff, J. Derivation of chondrogenically-committed cells from human embryonic cells for cartilage tissue regeneration. PLoS One. 3 (6), e2498 (2008).
  28. Nakagawa, T., Lee, S. Y., Reddi, A. H. Induction of chondrogenesis from human embryonic stem cells without embryoid body formation by bone morphogenetic protein 7 and transforming growth factor beta1. Arthritis Rheum. 60 (12), 3686-3692 (2009).
  29. Guzzo, R. M., Scanlon, V., Sanjay, A., Xu, R. H., Drissi, H. Establishment of human cell type-specific iPS cells with enhanced chondrogenic potential. Stem Cell Rev. 10 (6), 820-829 (2014).
  30. Rim, Y. A., Park, N., Nam, Y., Ju, J. H. Generation of Induced-pluripotent Stem Cells Using Fibroblast-like Synoviocytes Isolated from Joints of Rheumatoid Arthritis Patients. J Vis Exp. (116), (2016).
  31. Pfaff, N., et al. Efficient hematopoietic redifferentiation of induced pluripotent stem cells derived from primitive murine bone marrow cells. Stem Cells Dev. 21 (5), 689-701 (2012).
  32. Xu, H., et al. Highly efficient derivation of ventricular cardiomyocytes from induced pluripotent stem cells with a distinct epigenetic signature. Cell Res. 22 (1), 142-154 (2012).
  33. Lee, S. B., et al. Contribution of hepatic lineage stage-specific donor memory to the differential potential of induced mouse pluripotent stem cells. Stem Cells. 30 (5), 997-1007 (2012).
  34. Hu, S., et al. Effects of cellular origin on differentiation of human induced pluripotent stem cell-derived endothelial cells. JCI Insight. 1 (8), 1-12 (2016).
  35. Vonk, L. A., de Windt, T. S., Slaper-Cortenbach, I. C., Saris, D. B. Autologous, allogeneic, induced pluripotent stem cell or a combination stem cell therapy? Where are we headed in cartilage repair and why: a concise review. Stem Cell Res Ther. 6 (94), 1-11 (2015).
  36. Gomez-Leduc, T., et al. Chondrogenic commitment of human umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells in collagen matrices for cartilage engineering. Sci Rep. 6, 32786 (2016).
  37. Mareschi, K., et al. Isolation of human mesenchymal stem cells: bone marrow versus umbilical cord blood. Haematologica. 86 (10), 1099-1100 (2001).
  38. Wexler, S. A., et al. Adult bone marrow is a rich source of human mesenchymal ‘stem’ cells but umbilical cord and mobilized adult blood are not. Br J Haematol. 121 (2), 368-374 (2003).
  39. Zhang, X., et al. Isolation and characterization of mesenchymal stem cells from human umbilical cord blood: reevaluation of critical factors for successful isolation and high ability to proliferate and differentiate to chondrocytes as compared to mesenchymal stem cells from bone marrow and adipose tissue. J Cell Biochem. 112 (4), 1206-1218 (2011).
  40. Wagner, W., et al. Replicative senescence of mesenchymal stem cells: a continuous and organized process. PLoS One. 3 (5), e2213 (2008).
  41. Tarte, K., et al. Clinical-grade production of human mesenchymal stromal cells: occurrence of aneuploidy without transformation. Blood. 115 (8), 1549-1553 (2010).
  42. Chen, W. C., et al. Prediction of poor survival by cyclooxygenase-2 in patients with T4 nasopharyngeal cancer treated by radiation therapy: clinical and in vitro studies. Head Neck. 27 (6), 503-512 (2005).
  43. Guzzo, R. M., Gibson, J., Xu, R. H., Lee, F. Y., Drissi, H. Efficient differentiation of human iPSC-derived mesenchymal stem cells to chondroprogenitor cells. J Cell Biochem. 114 (2), 480-490 (2013).
check_url/55988?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Nam, Y., Rim, Y. A., Ju, J. H. Chondrogenic Pellet Formation from Cord Blood-derived Induced Pluripotent Stem Cells. J. Vis. Exp. (124), e55988, doi:10.3791/55988 (2017).

View Video