Summary

Perle basert Multiplex analysen for analyse av tåre cytokin profiler

Published: October 13, 2017
doi:

Summary

Analyse av tåre filmen cytokiner hjelper i å studere ulike øyet sykdommer. Perle basert multiplex analyser er enkel og følsom og aktiverer testing av flere mål i prøver med små volumer. Her beskriver vi en protokoll for rive filmen cytokin profilering en med perle basert multiplex analysen.

Abstract

Rive filmen er en kompleks blanding av lipider, proteiner og mineraler som dekker den ytre overflaten av øyet, og dermed gir smøring, ernæring og beskyttelse til de underliggende cellene. Analyse av tårer er en voksende område for identifikasjon av biomarkers for prediksjon, diagnose og prognosen for ulike øyet sykdommer. Tårer er lett tilgjengelig og deres samling er ikke-invasiv. Derfor er fremmarsj teknologier økende innflytelse for identifikasjon av flere analytter i tårer å studere endringer i proteiner eller metabolitten komposisjon og dets tilknytning til pathological betingelser. Rive cytokiner er ideelle biomarkers for å studere helse okulær overflaten og også hjelpe forstå mekanismene av ulike okulær overflaten lidelser som tørre øyne-sykdom og vernal konjunktivitt. Perle basert multiplex analyser har evnen til å oppdage flere analytter i en liten mengde utvalg med en høyere følsomhet. Beskriver her vi standardiserte protokollen tåreoppsamling utvalg, utvinning og analyse av cytokin profilering bruker en perle basert multiplex analysen.

Introduction

Tårer er produsert av lacrimal kjertel og tilbehør kjertler og strøk den ytre overflaten av øyet. Rive filmen består av en ytre lipid lag og en indre vandig lag som inneholder løselig proteiner, mucins og membran bundet mucins. Tårer hindre mikrobiell invasjon, levere næringsstoffer og gir smøring på okulær overflaten. Tårer fungere som et grensesnitt mellom luften og vev for oksygen-transport til hornhinnen. 1 tåre filmen består av proteiner, karbohydrater, lipider og elektrolytter. Tilknytningen mellom tåre proteiner med okulær og systemiske sykdommer som glaukom, tørre øyne-sykdom, vernal konjunktivitt, diabetes mellitus, skjoldbrusk-assosiert orbitopathy og kreft er funnet i flere studier. 2 , 3 , 4 tåreprøver kan samles ved microcapillary rør eller rive flyt strimler (Schirmer strimler). I tillegg er til Schirmer test en standard prosedyre utføres i hornhinnen og refraktiv kirurgi klinikker, resultatene som kan brukes til cytokin analyse analyser. Ikke-invasive prøvetaking, tilgjengelighet av bio-prøven og foreningen av tåre komposisjon med ulike fysiologiske og patologiske forhold gjør rive filmen en potensiell kilde til biomarkers for flere okulær og systemiske sykdommer. 4 , 5 , 6

Rive cytokiner spiller en viktig rolle i å studere okulær overflaten helse og inflammatoriske tilstander av ulike øyet sykdommer. 7 unormal konsentrasjoner av flere cytokiner i tåreprøver ble rapportert å være assosiert med tørre øyne-sykdom, vernal keratoconjunctivitis (VKC), atopisk keratoconjunctivitis (AKC), sesongmessige allergisk konjunktivitt og uveitis. 8 , 9 , 10 , 11 , 12 , 13 tåre proteiner kan analyseres av tradisjonelle metoder som massespektrometri, vestlige blotting og enzym knyttet immunosorbent analyser (ELISA). 14 , 15 men begrensningene for disse metodene er dårlig følsomhet og et større volum av prøve kreves for analyse av flere tåre cytokiner i hver pasient. 16 , 17 perle basert multiplex analyser har blitt utviklet for å analysere flere analytter i kompleks blanding prøvene og brukt på rive prøver å analysere flere cytokiner i ulike sykdommer. 6 , 18 A kombinasjon av sandwich ELISA og flyt cytometri teknikker gjør disse analyser blir mer følsom enn ELISA for kvantifisering av flere analytter i en enkelt prøve. 19 denne metoden kan brukes på en rekke kliniske prøver og celle kultur supernatants og hjelper i studiet av immunreaksjoner i flere patofysiologiske forhold. 20 , 21 , 22 , 23 , 24

Det er flere studier sammenligne perle basert multipleks søk med ELISA og har rapportert en sammenheng mellom metodene. Do et al. sammenlignet perle basert multiplex analysen med konvensjonelle ELISA for påvisning av adiponectin, resistin, leptin og ghrelin i prøver fra mennesker serum- eller og rapportert en sterk sammenheng (r > 0,9) mellom analyser. 25 Dupont et al. rapportert en sterk sammenheng mellom perle basert multiplex analyser og ELISA for påvisning av IL-1β, IL-4, IL-5, IL-6, IL-10, IFN-ϒ og TNF-α phytohemagglutinin og lipopolysakkarid stimulert fullblod samlet fra gravide. 26 Pickering et al. rapportert en sterk sammenheng mellom perle basert multiplex analysen og ELISA for påvisning av serum antistoffer mot Haemophilus influensa type b polysakkarid (r = 0.96), toxoids av Clostridium tetani (r = 0.96), og Corynebacterium diphtheriae (r = 0,91). 27 Biagini et al. rapportert en høy positiv korrelasjon (r = 0.852) mellom perle basert multiplex analysen og ELISA deteksjon av Bacillus anthracis anti-PA IgG i serumprøver. 28 Wang et al. rapportert en sammenheng mellom perle basert multiplex analysen og ELISA for påvisning av Alzheimers biomarkers amyloid-β 42 (r = 0.77), totalt tau (r = 0,94), og tau fosforylert på aminosyre 181 (r = 0,82) i Cerebrospinalvæske prøver. 29 disse studiene har vist anvendelse av perle basert multiplex analyser på rekke kliniske prøver, mindre utvalg volumkrav og en sammenheng med standard ELISA, som gjør perle basert multiplex analyser en lovende alternativ til tradisjonelle ELISA metoder for påvisning av flere analytter i forskjellige typer prøver forskjellige sykdommen fenotyper. Her beskriver vi en standardisert protokoll for perle basert multiplex analysen for cytokin profilering for 41 analytter i tåreprøver fra sunn fag med Schirmer strimler.

Protocol

protokollene som brukes i denne studien var godkjent av institusjonelle gjennomgang styret Tan takk Seng Hospital, Singapore. 1. Riv cytokin analyse samling av tårer: be personen(e) som sitter komfortabelt på en undersøkelse stol og plassere hodet mot nakkestøtten. Spør emnet å slå opp, nøye åpne Schirmer strimler (laget av Whatman filter papir nr 41) og plassere avrundet slutten av stripen på de underlegne fornix av øyet og instruere …

Representative Results

Innhentet tåreprøver fra 8 øynene til 4 sunn fag ved hjelp rive flyt strimler og cytokin nivåer ble analysert ved hjelp av ovennevnte protokollen. Alle fag var mannlige og en alder av fire fagene var 36, 42, 44 og 52 år henholdsvis. Okulære overflaten helse og tørre øyne sykdom ble evaluert av kliniske tester (rive filmen bryte opp tid, Schirmerfamiliens test, hornhinnen flekker, conjunctival flekker, lokket/meibomian kjertel eksamen, hornhinnen tåre tegn og visuelle tegn og symp…

Discussion

Cytokiner er små mobilnettet utskilles proteiner og potent immun modulatorer regulere immunreaksjoner. 32 uttrykket profiler av ulike cytokiner i tåre prøver er knyttet til ulike patologiske forhold av øyet og studier av cytokin profiler å forstå sykdom patogene mekanismer, bestemme okulær helsetilstanden, sykdommens alvorlighetsgrad, diagnostisering og progresjon. 2 , 5 lavere protein konsentrasjoner og lite utvalg volumer er hoved…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forskningsarbeid ble støttet av sentrum tilskudd fra Tan takk Seng Hospital personlig frø finansiering Program 2015; Singapore øye Research Institute Pilot Grant og Tan takk Seng Hospital Pitch for fondet gi.

Materials

Milliplex MAP human cytokine / chemokine magnetic bead panel -1 kit Merck, USA HCYTOMAG-60K-41
Flexmap 3D luminex instrument  Luminex Corp, Austin, TX, USA
xPonent software  Luminex Corp, Austin, TX, USA
RBXGenerator software BIO-RAD, France
Bio-Plex Manager 6.1 BIO-RAD, France
Plate shaker Corning, USA
TECAN Microplate Washer Tecan, Switzerland HydroSpeed
Vortex Genie 2 Scientific Industries inc, USA G560E
Pipettes Mettler Toledo, CA, USA
1.5ml microcentrifuge tube Axygen, USA MCT-150-C
Schirmer tear flow test strip Eye Care and Cure, USA 101657
Flexmap 3D Calibration Kit Luminex Corp, Austin, TX, USA 40-028
Flexmap 3D Verfication Kit Luminex Corp, Austin, TX, USA 40-029
Ocular examination chair

References

  1. Conrady, C. D., Joos, Z. P., Patel, B. C. Review: The Lacrimal Gland and Its Role in Dry Eye. J Ophthalmol. 7542929, (2016).
  2. von Thun Und Hohenstein-Blaul, N., Funke, S., Grus, F. H. Tears as a source of biomarkers for ocular and systemic diseases. Exp Eye Res. , 126-137 (2013).
  3. Pieragostino, D., D’Alessandro, M., di Ioia, M., Di Ilio, C., Sacchetta, P., Del Boccio, P. Unraveling the molecular repertoire of tears as a source of biomarkers: beyond ocular diseases. Proteomics Clin Appl. 9 (1-2), 169-186 (2015).
  4. Azkargorta, M., Soria, J., Acera, A., Iloro, I., Elortza, F. Human tear proteomics and peptidomics in ophthalmology: Toward the translation of proteomic biomarkers into clinical practice. J Proteomics. 150, 359-367 (2017).
  5. Hagan, S., Martin, E., Enríquez-de-Salamanca, A. Tear fluid biomarkers in ocular and systemic disease: potential use for predictive, preventive and personalised medicine. EPMA J. 7, 15 (2016).
  6. Rentka, A., et al. Membrane array and multiplex bead analysis of tear cytokines in systemic sclerosis. Immunol Res. 64 (2), 619-626 (2016).
  7. Zhou, L., Beuerman, R. W. Tear analysis in ocular surface diseases. Prog Retin Eye Res. 31 (6), 527-550 (2012).
  8. Jackson, D. C., et al. Tear Interferon-Gamma as a Biomarker for Evaporative Dry Eye Disease. Invest Ophthalmol Vis Sci. 57 (11), 4824-4830 (2016).
  9. Agrawal, R., et al. A distinct cytokines profile in tear film of dry eye disease (DED) patients with HIV infection. Cytokine. 88, 77-84 (2016).
  10. Uchio, E., Ono, S. Y., Ikezawa, Z., Ohno, S. Tear levels of interferon-gamma, interleukin (IL) -2, IL-4 and IL-5 in patients with vernal keratoconjunctivitis, atopic keratoconjunctivitis and allergic conjunctivitis. Clin Exp Allergy. 30 (1), 103-109 (2000).
  11. Leonardi, A., Curnow, S. J., Zhan, H., Calder, V. L. Multiple cytokines in human tear specimens in seasonal and chronic allergic eye disease and in conjunctival fibroblast cultures. Clin Exp Allergy. 36 (6), 777-784 (2006).
  12. Enríquez-de-Salamanca, A., Calonge, M. Cytokines and chemokines in immune-based ocular surface inflammation. Expert Rev Clin Immunol. 4 (4), 457-467 (2008).
  13. Carreño, E., et al. Cytokine and chemokine tear levels in patients with uveitis. Acta Ophthalmol. , (2016).
  14. Bjerrum, K. B., Prause, J. U. Collection and concentration of tear proteins studied by SDS gel electrophoresis. Presentation of a new method with special reference to dry eye patients. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 232 (7), 402-405 (1994).
  15. Saijyothi, A. V., et al. Two dimensional electrophoretic analysis of human tears: collection method in dry eye syndrome. Electrophoresis. 31 (20), 3420-3427 (2010).
  16. Thakur, A., Willcox, M. D. Cytokine and lipid inflammatory mediator profile of human tears during contact lens associated inflammatory diseases. Exp Eye Res. 67 (1), 9-19 (1998).
  17. Wei, Y., Gadaria-Rathod, N., Epstein, S., Asbell, P. Tear cytokine profile as a noninvasive biomarker of inflammation for ocular surface diseases: standard operating procedures. Invest Ophthalmol Vis Sci. 54 (13), 8327-8336 (2013).
  18. Topcu-Yilmaz, P., et al. Determination of tear and serum inflammatory cytokines in patients with rosacea using multiplex bead technology. Ocul Immunol Inflamm. 21 (5), 351-359 (2013).
  19. Hagan, S., Tomlinson, A. Tear fluid biomarker profiling: a review of multiplex bead analysis. Ocul Surf. 11 (4), 219-235 (2013).
  20. Choi, R., et al. Serum inflammatory profiles in pulmonary tuberculosis and their association with treatment response. J Proteomics. 149, 23-30 (2016).
  21. Kang, J. H., Vanderstichele, H., Trojanowski, J. Q., Shaw, L. M. Simultaneous analysis of cerebrospinal fluid biomarkers using microsphere-based xMAP multiplex technology for early detection of Alzheimer’s disease. Methods. 56 (4), 484-493 (2012).
  22. Staples, E., Ingram, R. J., Atherton, J. C., Robinson, K. Optimising the quantification of cytokines present at low concentrations in small human mucosal tissue samples using Luminex assays. J Immunol Methods. 394 (1-2), 1-9 (2013).
  23. Inic-Kanada, A., et al. Comparison of ophthalmic sponges and extraction buffers for quantifying cytokine profiles in tears using Luminex technology. Mol Vis. 18, 2717-2725 (2012).
  24. Moncunill, G., Aponte, J. J., Nhabomba, A. J., Dobaño, C. Performance of multiplex commercial kits to quantify cytokine and chemokine responses in culture supernatants from Plasmodium falciparum stimulations. PLoS One. 8 (1), e52587 (2013).
  25. Loo, B. M., Marniemi, J., Jula, A. Evaluation of multiplex immunoassays, used for determination of adiponectin, resistin, leptin, and ghrelin from human blood samples, in comparison to ELISA assays. Scand J Clin Lab Invest. 71 (3), 221-226 (2011).
  26. Dupont, N. C., Wang, K., Wadhwa, P. D., Culhane, J. F., Nelson, E. L. Validation and comparison of luminex multiplex cytokine analysis kits with ELISA: determinations of a panel of nine cytokines in clinical sample culture supernatants. J Reprod Immunol. 66 (2), 175-191 (2005).
  27. Pickering, J. W., Martins, T. B., Schroder, M. C., Hill, H. R. Comparison of a multiplex flow cytometric assay with enzyme-linked immunosorbent assay for auantitation of antibodies to tetanus, diphtheria, and Haemophilus influenzae Type b. Clin Diagn Lab Immunol. 9 (4), 872-876 (2002).
  28. Biagini, R. E., Sammons, D. L., Smith, J. P., MacKenzie, B. A., Striley, C. A., et al. Comparison of a multiplexed fluorescent covalent microsphere immunoassay and an enzyme-linked immunosorbent assay for measurement of human immunoglobulin G antibodies to anthrax toxins. Clin Diagn Lab Immunol. 11 (1), 50-55 (2004).
  29. Wang, L. S., Leung, Y. Y., Chang, S. K., Leight, S., Knapik-Czajka, M., et al. Comparison of xMAP and ELISA assays for detecting cerebrospinal fluid biomarkers of Alzheimer’s disease. J Alzheimers Dis. 31 (2), 439-445 (2012).
  30. Kalsow, C. M., Reindel, W. T., Merchea, M. M., Bateman, K. M., Barr, J. T. Tear cytokine response to multipurpose solutions for contact lenses. Clin Ophthalmol. 7, 1291-1302 (2013).
  31. . The definition and classification of dry eye disease: report of the Definition and Classification Subcommittee of the International Dry Eye WorkShop (2007). The ocular surface. 5 (2), 75-92 (2007).
  32. Stenger, S., Röllinghoff, M. Role of cytokines in the innate immune response to intracellular pathogens. Ann Rheum Dis. 60, (2001).
  33. Li, S., et al. Antibody protein array analysis of the tear film cytokines. Optom Vis Sci. 85 (8), 653-660 (2008).
  34. Tighe, O., Negm, I., Todd, L., Fairclough, Utility, reliability and reproducibility of immunoassay multiplex kits. Methods. 61 (1), 23-29 (2013).
  35. Dionne, K., Redfern, R. L., Nichols, J. J., Nichols, K. K. Analysis of tear inflammatory mediators: A comparison between the microarray and Luminex methods. Mol Vis. 22, 177-188 (2016).
  36. Sitaramamma, T., Shivaji, S., Rao, G. N. HPLC analysis of closed, open, and reflex eye tear proteins. Indian J Ophthalmol. 46 (4), 239-245 (1998).
  37. Saijyothi, A. V., et al. Two dimensional electrophoretic analysis of human tears: collection method in dry eye syndrome. Electrophoresis. 31 (20), 3420-3427 (2010).
  38. VanDerMeid, K. R., Su, S. P., Krenzer, K. L., Ward, K. W., Zhang, J. Z. A method to extract cytokines and matrix metalloproteinases from Schirmer strips and analyze using Luminex. Mol Vis. 17, 1056-1063 (2011).
  39. Khalifian, S., Raimondi, G., Brandacher, G. The use of luminex assays to measure cytokines. J Invest Dermatol. 135 (4), e31 (2015).
  40. Richens, J. L., Urbanowicz, R. A., Metcalf, R., Corne, J., O’Shea, P., Fairclough, L. Quantitative validation and comparison of multiplex cytokine kits. J Biomol Screen. 15 (5), 562-568 (2010).
  41. Berthoud, T. K., et al. Comparison of commercial kits to measure cytokine responses to Plasmodium falciparum by multiplex microsphere suspension array technology. Malar J. 10, 115 (2011).
  42. Boehm, N., Riechardt, A. I., Wiegand, M., Pfeiffer, N., Grus, F. H. Proinflammatory cytokine profiling of tears from dry eye patients by means of antibody microarrays. Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (10), 7725-7730 (2011).
  43. Sack, R., Conradi, L., Beaton, A., Sathe, S., McNamara, N., Leonardi, A. Antibody array characterization of inflammatory mediators in allergic and normal tears in the open and closed eye environments. Exp Eye Res. 85 (4), 528-538 (2007).
check_url/55993?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Balne, P. K., AU, V. B., Tong, L., Ghosh, A., Agrawal, M., Connolly, J., Agrawal, R. Bead Based Multiplex Assay for Analysis of Tear Cytokine Profiles. J. Vis. Exp. (128), e55993, doi:10.3791/55993 (2017).

View Video