Evaluering af celle Invasion og migrationsprocessen: en sammenligning af den Video mikroskop-baseret skrabespil sår Assay og Boyden kammer Assay
Summary
Denne undersøgelse rapporter to forskellige metoder til analyse af celle invasion og migration: Boyden kammer assay og in vitro- video mikroskop-baserede sårheling analysen. Protokoller for disse to eksperimenter er beskrevet, og deres fordele og ulemper sammenlignes.
Abstract
Tumorcellerne invasion og migration evner er vigtigste bidragydere til kræft progression og gentagelse. Mange undersøgelser har udforsket migration og invasion evne at forstå, hvordan kræftceller udbrede, med formålet at udvikle nye behandling strategier. Analyse af cellulære og molekylære grundlag for disse evner har ført til karakterisering af celle mobilitet og de fysisk-kemiske egenskaber af cytoskelettet og cellulære mikromiljø. I mange år, har Boyden kammer assay og scratch sår analysen været standardteknikker at studere cellen invasion og migration. Disse to teknikker har imidlertid begrænsninger. Boyden kammer assay er vanskelig og tidskrævende, og scratch sår analysen har lav reproducerbarhed. Udviklingen af moderne teknologier, især i mikroskopi, har øget reproducerbarhed af scratch sår assay. Ved hjælp af kraftfulde analyse systemer, kan et “i-inkubator” video mikroskop bruges til at levere automatisk og real-time analyse af celle migration og invasion. Formålet med dette papir er at rapportere og sammenligne de to assays bruges til at studere cellen invasion og migration: Boyden kammer assay og en optimeret in vitro- video mikroskop-baseret skrabelod sår assay.
Introduction
Celle invasion og migration er involveret i udbredelsen af kræftceller, som er hovedårsagen til modstanden mod behandling1 og kan føre til locoregionale eller metastatisk fornyet efter kræft behandling2. Epitel-mesenchymale overgangen (EMT) er den indledende proces af celle invasion-migration i hvilke kræft celler skifte fra en epitelial til en mesenchymale fænotype. E-Cadherin er en ekstracellulære markør af epitel fænotype3, og øget udtryk for N-cadherin og vimentin er karakteristisk for mesenchymale fænotype4. Indvandring afhænger også kræftceller iboende evne til at invadere den ekstracellulære matrix (ECM) gennem handling af matrix metalloproteases5.
Denne invasion-migration mekanisme er blevet beskrevet for kræft på mange steder, især i hoved og hals kræft6. Mange forskere har fokuseret på migration og invasion processerne for bedre at forstå hvordan kræftceller formidle i håb om, at denne viden vil føre til ny behandling strategier. Det er afgørende, at disse undersøgelser udføres ved hjælp af pålidelig og reproducerbar assays.
In vitro analyse af celle motilitet kan være udfordrende. Udviklet for mange år siden, anses Boyden kammer analysen for at være standard for invasion-migration analyse7. Men det er tidskrævende og er ofte unøjagtige. En anden test er den sårheling assay8, som indebærer at gøre en skramme på en celle éncellelag kultur og fanger billeder af celle invasion og migration med faste tidsintervaller. Denne teknik er blevet kritiseret vidt på grund af de store variationer mellem resultaterne af to successive tests. Dog har anvendelsen af moderne teknologier, især i mikroskopi, bedre reproducerbarhed af scratch sår assay. Video mikroskoper nemt kan indføres i væksthuse og kan generere real-time billeder af celle migration. Disse enheder optage mikroskopiske data og automatisk analyse af sår celle sammenløbet med tiden. Formålet med dette papir er at beskrive Boyden kammer assay og optimeret scratch sår analysen og diskutere fordele og svagheder ved hver metode.
Protocol
Representative Results
Discussion
Vi rapporterer her to forskellige metoder til at studere cellen invasion og migration processen. Analysen af denne proces er vigtigt at forstå de faktorer, der er involveret i metastatisk gentagelse, som kunne forklares med øgede motilitet af en delpopulation af kræftceller kaldes kræft stamceller10,11.
Boyden kammer eksperiment er en de hyppigst anvendte teknikker til at udforske celle invasion og migration. En fordel ved denne ti…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Disse teknikker blev udviklet med støtte fra LabEx primtal (ANR-11-LABX-0063), Contrat Plan-Etat-regionen (CPER) inden for de videnskabelige rammer ETOILE (CPER 2009-2013) og Lyric Grant Inka-DGOS-4664.
Materials
| Fetal Calf Serum Gold | GE Healthcare | A15-151 | |
| Hydrocortisone water soluble | Sigma-Aldrich | H0396-100MG | |
| Penicillin/Streptomycin 100 X | Dominique Dutscher | L0022-100 | |
| DMEM | Gibco | 61965-026 | |
| F12 Nut Mix (1X) + GlutaMAX-I | Gibco | 31765-027 | |
| EGF | Promega | G5021 | The solution must be prepared just before use because it is very unstable |
| Z1 coulter particle | Beckman Coulter | 6605698 | |
| Optical microscope | Olympus | CKX31 | |
| SQ20B cell line | Gift from the John Little’s Laboratory | – | |
| Wound Maker | Essen Bioscience | 4494 | Store in safe and dry place |
| 96-well ImageLock Plate | Essen Bioscience | 4379 | |
| CoolBox 96F System with CoolSink 96F | Essen Bioscience | 1500-0078-A00 | |
| CoolBox with M30 System | Essen Bioscience | 1500-0078-A00 | |
| Boyden Insert | Dominique Dutcher | 353097 | |
| Boyden Coated Insert | Dominique Dutcher | 354483 | Store at -20 °C |
| Companion 24-well Plate | Dominique Dutcher | 353504 | |
| BD Matrigel standard | BD BioScience | BD 354234 | Store at -20°C. |
| RAL 555 Staining Kit | RAL Diagnostics | 361550 | Store in safe and dry place |
| Microcentrifuge tubes | Eppendorf | 33511 |
References
- Friedl, P., Wolf, K. Tumour-cell invasion and migration: diversity and escape mechanisms. Nat Rev Cancer. 3 (5), 362-374 (2003).
- Moncharmont, C., et al. Radiation-enhanced cell migration/invasion process: A review. Crit Rev Oncol Hematol. , (2014).
- Burdsal, C. A., Damsky, C. H., Pedersen, R. A. The role of E-cadherin and integrins in mesoderm differentiation and migration at the mammalian primitive streak. Development. 118 (3), 829-844 (1993).
- Chen, C., Zimmermann, M., Tinhofer, I., Kaufmann, A. M., Albers, A. E. Epithelial-to-mesenchymal transition and cancer stem(-like) cells in head and neck squamous cell carcinoma. Cancer Lett. 338 (1), 47-56 (2013).
- Nelson, A. R., Fingleton, B., Rothenberg, M. L., Matrisian, L. M. Matrix metalloproteinases: biologic activity and clinical implications. J Clin Oncol. 18 (5), 1135-1149 (2000).
- Smith, A., Teknos, T. N., Pan, Q. Epithelial to mesenchymal transition in head and neck squamous cell carcinoma. Oral Oncol. 49 (4), 287-292 (2013).
- Chen, H. -. C. Boyden chamber assay. Meth Mol Biol. 294, 15-22 (2005).
- Rodriguez, L. G., Wu, X., Guan, J. -. L. Wound-healing assay. Meth Mol Biol. 294, 23-29 (2005).
- Piaton, E., et al. Technical recommendations and best practice guidelines for May-Grünwald-Giemsa staining: literature review and insights from the quality assurance. Ann Path. 35 (4), 294-305 (2015).
- Moncharmont, C., et al. Targeting a cornerstone of radiation resistance: cancer stem cell. Cancer lett. 322 (2), 139-147 (2012).
- Moncharmont, C., et al. Carbon ion irradiation withstands cancer stem cells’ migration/invasion process in Head and Neck Squamous Cell Carcinoma (HNSCC). Oncotarget. 7 (30), 47738-47749 (2016).
- Gilormini, M., Wozny, A. -. S., Battiston-Montagne, P., Ardail, D., Alphonse, G., Rodriguez-Lafrasse, C. Isolation and Characterization of a Head and Neck Squamous Cell Carcinoma Subpopulation Having Stem Cell Characteristics. J Vis Exp: JoVE. (111), (2016).
