Summary

Phagocytosis Assay for Apoptotiske Celler i<em> Drosophila</em> Embryoer

Published: August 03, 2017
doi:

Summary

Heri beskrives et fagocytose assay under anvendelse af de dispergerede embryonale celler af Drosophila . Det sætter os i stand til nemt og præcist at kvantificere phagocytose niveauer in vivo og at identificere nye molekyler, der er nødvendige for phagocytose af apoptotiske celler.

Abstract

De molekylære mekanismer, der ligger til grund for phagocytosen af ​​apoptotiske celler, skal præciseres mere detaljeret på grund af dets rolle i immune og inflammatoriske, uoprettelige sygdomme. Her har vi udviklet en eksperimentel metode til undersøgelse af fagocytose kvantitativt ved anvendelse af frugtflyve Drosophila , hvor gennetværket , der styrer engulferingsreaktioner, evolutionelt konserveres fra pattedyr. For at nøjagtigt detektere og tælle engulfing og un-engulfing fagocytter under anvendelse af hele dyr, blev Drosophila embryoner homogeniseret for at opnå dispergerede celler, herunder phagocytter og apoptotiske celler. Anvendelsen af ​​dispergerede embryonale celler gør det muligt for os at måle in vivo fagocytose niveauer som om vi udførte et in vitro fagocytose assay, hvor det er muligt at observere alle fagocytter og apoptotiske celler i hele embryoner og præcist kvantificere niveauet af fagocytose. Vi bekræftede, at denne metode gengiver de tidligere studierDer identificerede de gener, der kræves til fagocytose af apoptotiske celler. Denne metode gør det muligt at analysere opbrydning af døde celler, og når de kombineres med Drosophila 's kraftige genetik, vil de afsløre de komplekse fagocytiske reaktioner, der består af migration, genkendelse, opfangning og nedbrydning af apoptotiske celler af fagocytter.

Introduction

I metazoan dyr, f.eks. Nematoden Caenorhabditis elegans , frugtflyve Drosophila melanogaster og mus og mennesker, gennemgår et stort antal celler apoptose under udvikling for at forme deres kroppe og i voksenalderen for at opretholde homeostase 1 , 2 . Apoptotiske celler skal fjernes hurtigt, fordi de inducerer inflammation i det omgivende væv ved at frigive immunogene intracellulære materialer, hvis de ikke fjernes fuldstændigt 3 . For at lette hurtig fjernelse frembyder apoptotiske celler såkaldte eat-me-signaler, som genkendes af engulferingsreceptorerne af fagocytter, og elimineres af phagocytose 3 , 4 , 5 , 6 . Fagocytose spiller således en afgørende rolle i vedligeholdelsen af ​​værtshomeostase og dermed elucidere molekylet Lar mekanismer, der ligger til grund for fagocytose af apoptotiske celler, er vigtige.

Mekanismerne ansvarlige for phagocytose af apoptotiske celler synes at være evolutionelt konserveret blandt arter i nematoder, fluer og mus 7 . Adskillige fagocytose-analyser er i øjeblikket tilgængelige for at vurdere opfangningen af ​​apoptotiske celler i disse modeldyr. I C. elegans undergår 131 somatiske celler programmeret celledød under udvikling, og cellekroppe er fagocytosed af naboceller, som er ikke-faglige fagocytter 8 . Således tæller antallet af resterende cellekroppe i C. elegans angiver niveauet af fagocytose in vivo . Ved at søge efter nematode mutanter, der viser et forøget antal døde celler, er der blevet identificeret flere gener for phagocytose og genetisk karakteriseret 9 , 10 ,S = "xref"> 11 , 12 .

Eks vivo fagocytose assays med primære kultur fagocytter, generelt makrofager, anvendes ofte i mus. Apoptotiske celler fremstilles under anvendelse af cellelinjer, såsom Jurkat-celler, og blandes med primære fagocytter. Efter en inkubation i flere timer tælles det totale antal fagocytter og engulfing fagocytter for at vurdere niveauet af fagocytose. Som en sofistikeret modifikation af denne metode udviklede Nagatas gruppe et eks vivo fagocytose assay med celler, der udtrykker en caspase-resistent ICAD (inhibitor af caspaseaktiveret DNase), hvor apoptotiske celler ikke undergår apoptotisk DNA-fragmentering, men DNA spaltes stadig når Celler er phagocytosed. Når disse celler anvendes som apoptotiske mål i et fagocytose assay, fragmenteres kun DNA'et af engulferede apoptotiske celler og farves med TdT-medieret DUTP nick end-mærkning (TUNEL). Derfor lever deL af apoptotisk celle-engulfering måles ved at tælle TUNEL-signaler i en blanding af phagocytter og apoptotiske celler 13 .

I D. melanogaster er faglige fagocytter, der hedder hæmocytter, Drosophila- makrofager, ansvarlige for fagocytosen af ​​apoptotiske celler 14 , 15 . Ud over in vitro fagocytose-assays med kulturcellelinier er in vivo fagocytose-analyser med hele Drosophila- embryoner tilgængelige. Drosophila embryoner er et kraftfuldt redskab til at undersøge niveauet af apoptotisk celleopfyldning, fordi mange celler gennemgår apoptose og fagocytteres af hæmocytter under embryonisk udvikling 14 , 15 , 16 . Et eksempel på et in vivo fagocytose assay er metoden udviklet af Francs gruppe. I deres metode er hæmocytter deBeskadiget ved immunostaining af peroxidasin, en hæmocytmarkør, farves apoptotiske celler under anvendelse af det nukleare farvestof, 7-amino-actinomycin D i hele Drosophila- embryoner, og antallet af dobbelt positive celler tælles som et signal af fagocytose 17 . Et andet eksempel på et fagocytose-assay på embryoner er baseret på begrebet Nagatas metode beskrevet ovenfor; Imidlertid evalueres fagocytose in vivo under anvendelse af embryonerne af dCAD ( Drosophila caspase-aktiverede DNase) mutant fluer 18 , 19 . Disse in vivo fagocytose-assays er nyttige til direkte observation af fagocytose in situ . Vanskeligheder er imidlertid forbundet med at udelukke enhver mulig forspænding i trinnet med at tælle fagocytoseceller, fordi det er svært at observere alle fagocytter og apoptotiske celler i hele embryoner på grund af dens tykkelse.

For at overvinde denne begrænsning udvikler viUdarbejdet et nyt fagocytose assay i Drosophila embryoner. I vores metode homogeniseres hele embryoner for at fremstille dispergerede embryonale celler for nemt at tælle fagocytoserende hæmocytter. Phagocytter detekteres ved immunforaining af en fagocytmarkør, og apoptotiske celler påvises af TUNEL med disse dispergerede embryonale celler. Anvendelsen af ​​dispergerede embryonale celler gør det muligt for os at måle in vivo fagocytose niveauer som om vi udførte et in vitro fagocytose assay, der præcist kvantificerer niveauet af fagocytose. Alle genotyper af fluer kan anvendes i dette assay, hvis de udvikler sig til stadium 16 af embryoner 20 , udviklingsstadiet, hvor apoptotisk celleklaration ved phagocytose er den mest rigelige. Denne metode har den fordel at kvantificere niveauet af phagocytose kvantitativt og kan således bidrage til identifikationen af ​​nye molekyler involveret i phagocytose af apoptotiske celler in vivo .

Protocol

1. Fremstilling Fremstilling af friske druesaft-agarplader Tilsæt 100 ml vand til 4,4 g agar og opvarm blandingen i en mikrobølgeovn for at opløse agar. Tilsæt 80 ml frisk druesaft, 5 ml eddikesyre og 5 ml ethanol til agaropløsning. Hæld ca. 1,5 ml af opløsningen med en pipette på hvert glasskinne og lad det størkne. Fremstilling af 6 cm skål agaroseplader Tilsæt 50 ml vand til 0,5 g agarose og opvarm blandi…

Representative Results

For at undersøge phagocytosen af ​​apoptotiske celler blev Drosophila- embryoner fra udviklingsstadiet 16 opsamlet og fremstillet som dispergerede celler. Hæmocytter, Drosophila makrofager, blev farvet ved immuncytokemi for hæmocyt markør "Croquemort" 17, 22 under anvendelse af et specifikt antistof 19, 21, og apoptotiske celler blev fa…

Discussion

Vi heri beskrev et fagocytose assay ved anvendelse af Drosophila embryoner. Ved at anvende dispergerede embryonale celler til måling af fagocytose kvantitativt, hæmocytter, Drosophila faglige fagocytter immunostained for hemocytmarkøren Croquemort eller srpHemo- driven GFP, og apoptotiske celler påvises af TUNEL i denne protokol. Niveauet af fagocytose udtrykkes som et fagocytisk indeks ved at tælle det totale antal hæmocytter og fagocytoserende hæmocytter. Anvendelsen af ​​di…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi er taknemmelige for Kaz Nagaosa og Akiko Shiratsuchi for deres råd.

Materials

whole swine serum MP Biomedicals 55993 For bloking
Treff micro test tube(easy fit)  Dnase, Rnase free tube, 1.5 mL TreffLab 96. 4625. 9. 01 For  homogenization
pellet mixer  1.5 mL TreffLab 96. 7339. 9. 03 For  homogenization
Collagenase Sigma-Aldrich C-0130 For preparation of embryonic cells
Trypsin Thermo Fisher SCIENTIFIC 27250-018 For preparation of embryonic cells
Kpl Anti-Rat IgG (H+L) Ab MSA, AP KPL 475-1612 secondary antibody for
stainig hemocytes with an anti-Croquemort antibody
5-bromo-4-chloro-
3-indolyl-phosphate
Roche 11383221001 BCIP, For staining of hemocytes
nitro blue tetrazolium Roche 11383213001 NBT, For staining of hemocytes
Anti-Croquemort antibody described previously in Manaka et al, J. Biol. Chem., 279, 48466-48476
 Anti-GFP
from mouse IgG1κ (clones 7.1 and 13.1) 
Roche 11814460001 For staining of hemocytes
Goat Anti-Mouse IgG-AP Conjugate Bio-Rad 170-6520 secondary antibody for stainig hemocytes with an anti-Croquemort antibody
Apop Tag Peroxidase In Situ Apoptosis Detection Kit Millipore S7100 For staining of apoptoitc cells. This kit includes Equilibration buffer, Reaction buffer, STOP/Wash buffer, TdT enzyme, and Anti-Digoxigenin-Peroxidase.
3,3'-diaminobenzidine
tetrahydrichloride
nacalai tesque 11009-41 DAB, For staining of apoptoitc cells
Table of Fly Strains
Name Company Catalog Number Comments
w1118 Control flies, described in Freeman et al., Neuron, 38, 567-580
drprΔ5 drpr mutant, described in Freeman et al, Neuron, 38, 567-580
Itgbn2 Itgbn mutant, described in Devenport et al., Development, 131, 5405-5415
srpHemoGAL4 UAS-EGFP described in Brückner et al., Dev. Cell., 7, 73-84
UAS-drpr-IR VDRC 4833
UAS-Itgbn-IR NIG-fly 1762R-1

References

  1. Danial, N. N., Korsmeyer, S. J. Cell death: critical control points. Cell. 116 (2), 205-219 (2004).
  2. Vaux, D. L., Korsmeyer, S. J. Cell death in development. Cell. 96 (2), 245-254 (1999).
  3. Savill, J., Fadok, V. Corpse clearance defines the meaning of cell death. Nature. 407 (6805), 784-788 (2000).
  4. Lauber, K., Blumenthal, S. G., Waibel, M., Wesselborg, S. Clearance of apoptotic cells: getting rid of the corpses. Mol Cell. 14 (3), 277-287 (2004).
  5. Ravichandran, K. S., Lorenz, U. Engulfment of apoptotic cells: signals for a good meal. Nat Rev Immunol. 7 (12), 964-974 (2007).
  6. Ravichandran, K. S. Beginnings of a good apoptotic meal: the find-me and eat-me signaling pathways. Immunity. 35 (4), 445-455 (2011).
  7. Nakanishi, Y., Nagaosa, K., Shiratsuchi, A. Phagocytic removal of cells that have become unwanted: implications for animal development and tissue homeostasis. Dev Growth Differ. 53 (2), 149-160 (2011).
  8. Reddien, P. W., Horvitz, H. R. The engulfment process of programmed cell death in caenorhabditis elegans. Annu Rev Cell Dev Biol. 20, 193-221 (2004).
  9. Hedgecock, E. M., Sulston, J. E., Thomson, J. N. Mutations affecting programmed cell deaths in the nematode Caenorhabditis elegans. Science. 220 (4603), 1277-1279 (1983).
  10. Ellis, R. E., Jacobson, D. M., Horvitz, H. R. Genes required for the engulfment of cell corpses during programmed cell death in Caenorhabditis elegans. Genetics. 129 (1), 79-94 (1991).
  11. Gumienny, T. L. CED-12/ELMO, a novel member of the CrkII/Dock180/Rac pathway, is required for phagocytosis and cell migration. Cell. 107 (1), 27-41 (2001).
  12. Hsu, T. Y., Wu, Y. C. Engulfment of apoptotic cells in C. elegans is mediated by integrin alpha/SRC signaling. Curr Biol. 20 (6), 477-486 (2010).
  13. Hanayama, R. Identification of a factor that links apoptotic cells to phagocytes. Nature. 417 (6885), 182-187 (2002).
  14. Tepass, U., Fessler, L. I., Aziz, A., Hartenstein, V. Embryonic origin of hemocytes and their relationship to cell death in Drosophila. Development. 120 (7), 1829-1837 (1994).
  15. Gold, K. S., Bruckner, K. Macrophages and cellular immunity in Drosophila melanogaster. Semin Immunol. 27, 357-368 (2015).
  16. Abrams, J. M., White, K., Fessler, L. I., Steller, H. Programmed cell death during Drosophila embryogenesis. Development. 117 (1), 29-43 (1993).
  17. Franc, N. C., Heitzler, P., Ezekowitz, R. A., White, K. Requirement for croquemort in phagocytosis of apoptotic cells in Drosophila. Science. 284 (5422), 1991-1994 (1999).
  18. Mukae, N., Yokoyama, H., Yokokura, T., Sakoyama, Y., Nagata, S. Activation of the innate immunity in Drosophila by endogenous chromosomal DNA that escaped apoptotic degradation. Genes Dev. 16 (20), 2662-2671 (2002).
  19. Manaka, J. Draper-mediated and phosphatidylserine-independent phagocytosis of apoptotic cells by Drosophila hemocytes/macrophages. J Biol Chem. 279 (46), 48466-48476 (2004).
  20. Roberts, D. B. . Drosophila: A Practical Approach. , 3868-3878 (1998).
  21. Kuraishi, T., et al. Pretaporter, a Drosophila protein serving as a ligand for Draper in the phagocytosis of apoptotic cells. Embo j. 28 (24), 3868-3878 (2009).
  22. Franc, N. C., Dimarcq, J. L., Lagueux, M., Hoffmann, J., Ezekowitz, R. A. Croquemort, a novel Drosophila hemocyte/macrophage receptor that recognizes apoptotic cells. Immunity. 4 (5), 431-443 (1996).
  23. Kuraishi, T. Identification of calreticulin as a marker for phagocytosis of apoptotic cells in Drosophila. Exp Cell Res. 313 (3), 500-510 (2007).
  24. Nagaosa, K. Integrin betanu-mediated phagocytosis of apoptotic cells in Drosophila embryos. J Biol Chem. 286 (29), 25770-25777 (2011).
  25. Nonaka, S., Nagaosa, K., Mori, T., Shiratsuchi, A., Nakanishi, Y. Integrin alphaPS3/betanu-mediated phagocytosis of apoptotic cells and bacteria in Drosophila. J Biol Chem. 288 (15), 10374-10380 (2013).
  26. Fujita, Y., Nagaosa, K., Shiratsuchi, A., Nakanishi, Y. Role of NPxY motif in Draper-mediated apoptotic cell clearance in Drosophila. Drug Discov Ther. 6 (6), 291-297 (2012).
  27. Bruckner, K., et al. The PDGF/VEGF receptor controls blood cell survival in Drosophila. Dev Cell. 7 (1), 73-84 (2004).
  28. Nonaka, S., et al. Signaling Pathway for Phagocyte Priming upon Encounter with Apoptotic Cells. J Biol Chem. 292 (19), 8059-8072 (2017).
  29. Hanayama, R. Autoimmune disease and impaired uptake of apoptotic cells in MFG-E8-deficient mice. Science. 304 (5674), 1147-1150 (2004).
check_url/56352?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Nonaka, S., Hori, A., Nakanishi, Y., Kuraishi, T. Phagocytosis Assay for Apoptotic Cells in Drosophila Embryos. J. Vis. Exp. (126), e56352, doi:10.3791/56352 (2017).

View Video