Summary

Numune hazırlama ve transmisyon elektron mikroskobu tarafından Exosomes görüntüleme

Published: January 04, 2018
doi:

Summary

Bu iletişim kuralı gerekli transmisyon elektron mikroskobu negatif boyama, ayrıntılı yapısı ve IMMUNO-altın spesifik proteinlerin konumlarda exosomes belirlemek için etiketleme için ultrathin kesit dahil olmak üzere için çeşitli teknikler açıklanır.

Abstract

Exosomes hücre dışı veziküller nano boyutlu vücut sıvıları tarafından salgılanan vardır ve onları salgılar hücre özellikleri temsil etmek için bilinir. İçeriği ve salgılanan veziküller morfolojisi hücre davranış ya da fizyolojik durum, örneğin hücre büyümesi, geçiş, bölünme ve ölüm yansıtır. Exosomes rolü son derece boyutuna bağlı olabilir ve exosomes boyutu 30 ila 300’e değişir nm. En çok kullanılan eksozom görüntüleme için diğer sonuçlar Cryo-transmisyon elektron mikroskobu, elektron mikroskobu tarama ve Atomik kuvvet mikroskobu dayalı iken negatif boyama yöntemidir. Tipik eksozom’ın Morfoloji negatif boyama ile değerlendirildi, bir fincan şekli olmakla birlikte, daha fazla ayrıntılı bilgi henüz net değildir. Bir eksozom yapısal çalışma ile iyi karakterize gerekli özellikle de sağlık ve ilaç alanlar var. Bu nedenle, işlev bağımlı Morfoloji eksozom detaylı yapısında belirli bir protein etiketleme gibi elektron mikroskobu teknikleri tarafından doğrulanması gerekir. Ayrıntılı yapısı gözlemlemek için ultrathin kesitli görüntülerini ve exosomes negatif lekeli görüntüleri karşılaştırıldı. Bu protokol için iletim elektron mikroskopi exosomes negatif boyama, Bütün Dağı IMMUNO-boyama, blok hazırlık, ince bölüm ve IMMUNO-altın etiketleme gibi görüntüleme için öneririz.

Introduction

Ekstrasellüler veziküller (EVs) hücreleri tarafından salgılanan lipid bilayer veziküller vardır ve büyüklükleri 30 ve 300 nm arasında değişmektedir. EVs veziküller Hodgkin Hastaligi1hastalarda kanıt ile 1978 yılında ilk bildirildi. Bu veziküller 40-120 nanometre boyutunda bulunduğu rapor edilmiştir. 1980 yılında, bu EVs pıhtılaşma sistemi ve tromboz, bir damar kanseri hastalar2içinde bir kan pıhtısı oluşumu katılmaktadırlar bildirildi. 30 yıl sonra EVs tümör işgali, bağışıklık kaçış ve anjiogenezi3tanıtmak için önemli bir faktör olarak bildirilmiştir. Buna ek olarak, EVs fonksiyonları alanlarda hücresel etkileşimlerin iltihabı, bağışıklık bozukluğu, nörolojik hastalık ve kanser4düzenleyiciler olarak incelenmiştir. EVs protein, mRNA ve mikroRNA5gibi belirli biomolecules içerdiğinden, teşhis ve tedavi uygulama onların potansiyel analiz6,7oldu. EVs exosomes, prostasomes, oncosomes, dexosomes, microparticles, promininosomes, argosomes ve hücresel kökeni ve biyolojik fonksiyon3bağlı eksozom benzeri veziküller dahil olmak üzere alt gruplar oluşan bir kategori vardır. Buna ek olarak, onların Biyogenez üzerinde bağlı olarak, bu EVs microvesicles (döken microvesicles, 100-1000 nm) ve exosomes (30-300 nm)8,9bölünmüş olabilir. Bunlar arasında ya bir hücre iletişim bağışıklık yanıtı10, kanser11,12ve bulaşıcı hastalık13olarak bildirilmiştir.

Exosomes olarak bir biyomarker erken tanı için ilgi hızla artıyor ve arıtma ve exosomes karakterizasyonu moleküler görüntüleme teknikleri ile eşlik etmelidir. Farklı boyutlarda ve türleri exosomes, kendi kökeni ve işlev14, bağlı olarak, Morfoloji mikroskobu teknikleri gibi elektron mikroskobu yüksek çözünürlüklü tarafından ayrılır. Çoğu exosomes negatif lekeli transmisyon elektron mikroskobu (TEM)15,16,17tarafından görüntülenmiştir ve bu sonuçlar immunolabeling bütün Dağı vezikül içinde belirli bir protein tarafından teyit edildi 18. birkaç araştırma grubu aracılığıyla tarama elektron mikroskobu, Atomik kuvvet mikroskobu19,20ve Cryo-TEM21,22yapısı bildirdin. Ancak, bu teknikler eksozom yapısı eğitim için yararlı olsa da, ya içinde bulunan spesifik proteinlerin konumunu gözlemlemek için yetersiz bunlar. Bu nedenle, belirli protein etiketleme ile exosomes görüntüleme için bir protokol tanıttı. Biz blok hazırlanması, ultrathin kesit ve immunostaining protein’ın detaylı eksozom konumda ascertaining için uygulanır. Bu negatif boyama ve geleneksel eksozom karakterizasyonu için kullanılan bütün Dağı immunostaining ile karşılaştırıldı.

Protocol

1. blok hazırlık, kesit, boyama ve ya görüntüleme Santrifüjü 100.000 x g 1,5 saat23de tarafından gelen Kültür süpernatant HCT116 hücre exosomes cips. Kültür süpernatant kaldırmak ve dikkatle 1 mL 0.1 M sodyum cacodylate çözüm (pH 7,0) 1 h 4 ° C’de % 2.5 oxazolidin ile arıtılmış eksozom Pelet düzeltmek 0.1 M sodyum cacodylate için 160 mL distile su (DW) 4,28 g Kakodilik asit geçiyoruz. PH 7.4 0,1 M HCl o zaman ilâ 200 mL distile su ile yapmak için ayarlayın…

Representative Results

Şu anda, exosomes transmisyon elektron mikroskobu tarafından boyutu ve şekli kategoride sınıflandırılır. Şekil 2 negatif lekeli eksozom ve bağışıklık etiketli eksozom tüm bağlama durumu gösterir. Şekil 3 kesitli eksozom ve immün etiketli exosomes ince kesit sonra gösterir. IMMUNO-altın belirli proteinlerin antikorları kullanarak boyama olumlu bir eksozom tanımlamak ve proteinler arasında eksozom türleri s…

Discussion

Bu makalede ayrıntılı eksozom’ın yapısı gözlemleyerek ve onun belirli proteinlerin etiketleme için bir protokol sunar. Negatif boyama eksozom17görüntüleme için en iyi yöntem olarak kabul edilmiştir. Bu geleneksel teknik exosomes Kupası şeklindeki yapı göstermiştir. Ancak, bu fincan şekli bir kurutma işlemi nedeniyle oluşan yapay doku biçimidir. Cryo-TEM sonuçları exosomes sulu çözüm25,26yılında tamamen kürese…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu araştırma Bio tarafından desteklenen & tıbbi teknoloji geliştirme programı Ulusal Araştırma Vakfı (NMG) & Kore hükümeti tarafından finanse (MSIP & MOHW) (No. 2016M3A9B6904244). Biz de eksozom arıtma Medicinal Bioconvergence Araştırma Merkezi üyeleri teşekkür ederiz.

Materials

Glutaraldehyde EMS 16200
Sodium cacodylate  EMS 12300
Osmium tetroxide 1 g crystal EMS 19100 Use only in fume hood
acetone JUNSEI 1B2031
Spurr medium TED PELLA 18108
Ultra-microtome Leica UCT
Uranyl acetate EMS 22400 Hazardous chemical
Lead citrate EMS 17900
Transmission Electron Microscopy Hitachi H7600
nickel grid EMS G200-Ni
Copper grid EMS G200-Cu
glycine SIGMA 022K5404
Phosphate buffer saline SIGMA P4417
Bovine serum albumin Aurion 25557
1st Antibody purification in manually 
Purified anti-human CD274 (B7-H1, PD-L1) Antibody BioLegend 329710 Whole mount Immumogold
Purified Mouse IgG2b, κ Isotype Ctrl BioLegend 401202 Whole mount Immumogold (Control)
2nd Anti-mouse igG conjugated 9-11 nm gold particle sigma G7652
silver paint CANS CTP100
aluminum stub EMS 75622
FIB-SEM Zeiss AURIGA
Transmission Electron Microscopy JEOL JEM2200FS
Glow discharger JEOL JFC1100E
Carbon grid EMS 121119
Paraformaldehyde EMS 19210
Formvar carbon coated Copper Grid (200 meh) EMS FCF200-CU
Formvar carbon coated  Nickel Grid (200 mesh) EMS FCF200-NI

References

  1. Friend, C., et al. Observations on cell lines derived from a patient with Hodgkin’s disease. Cancer Res. 38 (8), 2581-2591 (1978).
  2. Dvorak, H. F., et al. Tumor shedding and coagulation. Science. 212 (4497), 923-924 (1981).
  3. Zaborowski, M. P., Balaj, L., Breakefield, X. O., Lai, C. P. Extracellular Vesicles: Composition, Biological Relevance, and Methods of Study. Bioscience. 65 (8), 783-797 (2015).
  4. Yanez-Mo, M., et al. Biological properties of extracellular vesicles and their physiological functions. J Extracell Vesicles. 4, 27066 (2015).
  5. Wu, Y., Deng, W., Klinke, D. J. Exosomes: improved methods to characterize their morphology, RNA content, and surface protein biomarkers. Analyst. 140 (19), 6631-6642 (2015).
  6. Gyorgy, B., et al. Membrane vesicles, current state-of-the-art: emerging role of extracellular vesicles. Cell Mol Life Sci. 68 (16), 2667-2688 (2011).
  7. Barile, L., Vassalli, G. Exosomes: Therapy delivery tools and biomarkers of diseases. Pharmacol Ther. , (2017).
  8. Vlassov, A. V., Magdaleno, S., Setterquist, R., Conrad, R. Exosomes: current knowledge of their composition, biological functions, and diagnostic and therapeutic potentials. Biochim Biophys Acta. 1820 (7), 940-948 (2012).
  9. Villarroya-Beltri, C., Baixauli, F., Gutierrez-Vazquez, C., Sanchez-Madrid, F., Mittelbrunn, M. Sorting it out: regulation of exosome loading. Semin Cancer Biol. 28, 3-13 (2014).
  10. Thery, C., Ostrowski, M., Segura, E. Membrane vesicles as conveyors of immune responses. Nat Rev Immunol. 9 (8), 581-593 (2009).
  11. Camussi, G., Deregibus, M. C., Bruno, S., Cantaluppi, V., Biancone, L. Exosomes/microvesicles as a mechanism of cell-to-cell communication. Kidney Int. 78 (9), 838-848 (2010).
  12. Zaharie, F., et al. Exosome-Carried microRNA-375 Inhibits Cell Progression and Dissemination via Bcl-2 Blocking in Colon Cancer. J Gastrointestin Liver Dis. 24 (4), 435-443 (2015).
  13. Fuhrmann, G., Neuer, A. L., Herrmann, I. K. Extracellular vesicles – a promising avenue for the detection and treatment of infectious diseases?. Eur J Pharm Biopharm. , (2017).
  14. Lotvall, J., et al. Minimal experimental requirements for definition of extracellular vesicles and their functions: a position statement from the International Society for Extracellular Vesicles. J Extracell Vesicles. 3, 26913 (2014).
  15. Liu, X., Wang, H. W. Single particle electron microscopy reconstruction of the exosome complex using the random conical tilt method. J Vis Exp. (49), (2011).
  16. Wang, J., Yao, Y., Wu, J., Li, G. Identification and analysis of exosomes secreted from macrophages extracted by different methods. Int J Clin Exp Pathol. 8 (6), 6135-6142 (2015).
  17. Thery, C., Amigorena, S., Raposo, G., Clayton, A. Isolation and characterization of exosomes from cell culture supernatants and biological fluids. Curr Protoc Cell Biol. , 22 (2006).
  18. Mazzeo, C., et al. Exosome secretion by eosinophils: A possible role in asthma pathogenesis. J Allergy Clin Immunol. 135 (6), 1603-1613 (2015).
  19. Sokolova, V., et al. Characterisation of exosomes derived from human cells by nanoparticle tracking analysis and scanning electron microscopy. Colloids Surf B Biointerfaces. 87 (1), 146-150 (2011).
  20. Sharma, S., et al. Structural-mechanical characterization of nanoparticle exosomes in human saliva, using correlative AFM, FESEM, and force spectroscopy. ACS Nano. 4 (4), 1921-1926 (2010).
  21. Raposo, G., Stoorvogel, W. Extracellular vesicles: exosomes, microvesicles, and friends. J Cell Biol. 200 (4), 373-383 (2013).
  22. Bosch, S., et al. Trehalose prevents aggregation of exosomes and cryodamage. Sci Rep. 6, 36162 (2016).
  23. Lobb, R. J., et al. Optimized exosome isolation protocol for cell culture supernatant and human plasma. J Extracell Vesicles. 4, 27031 (2015).
  24. Kim, S. B., et al. Caspase-8 controls the secretion of inflammatory lysyl-tRNA synthetase in exosomes from cancer cells. J Cell Biol. , (2017).
  25. Conde-Vancells, J., et al. Characterization and comprehensive proteome profiling of exosomes secreted by hepatocytes. J Proteome Res. 7 (12), 5157-5166 (2008).
  26. Kadiu, I., Narayanasamy, P., Dash, P. K., Zhang, W., Gendelman, H. E. Biochemical and biologic characterization of exosomes and microvesicles as facilitators of HIV-1 infection in macrophages. J Immunol. 189 (2), 744-754 (2012).
  27. Gong, J., Korner, R., Gaitanos, L., Klein, R. Exosomes mediate cell contact-independent ephrin-Eph signaling during axon guidance. J Cell Biol. 214 (1), 35-44 (2016).
  28. Melo, S. A., et al. Glypican-1 identifies cancer exosomes and detects early pancreatic cancer. Nature. 523 (7559), 177-182 (2015).
  29. Valadi, H., et al. Exosome-mediated transfer of mRNAs and microRNAs is a novel mechanism of genetic exchange between cells. Nat Cell Biol. 9 (6), 654-659 (2007).
  30. van Niel, G., Heyman, M. The epithelial cell cytoskeleton and intracellular trafficking. II. Intestinal epithelial cell exosomes: perspectives on their structure and function. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 283 (2), G251-G255 (2002).
check_url/56482?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Jung, M. K., Mun, J. Y. Sample Preparation and Imaging of Exosomes by Transmission Electron Microscopy. J. Vis. Exp. (131), e56482, doi:10.3791/56482 (2018).

View Video