Summary

Tillverkning och karakterisering av Griffithsin modifierade Fiber ställningar för Prevention av sexuellt överförbara infektioner

Published: October 31, 2017
doi:

Summary

Detta manuskript beskriver förfarandet för att fabricera och karaktärisera Griffithsin-modifierad poly (mjölksyra-co-glykolsyra) electrospun fibrer som visar potent självhäftande och antivirala aktivitet mot humant immunbristvirus typ 1 infektion in vitro. Metoder som används för att syntetisera, surface-ändra, och karakterisera den resulterande morfologin, konjugation, och desorption av Griffithsin från ytan-modifierade fibrer beskrivs.

Abstract

Electrospun fibrer (EFs) har använts i en mängd olika terapeutiska tillämpningar; de har dock nyligen tillämpats som en teknik för att förebygga och behandla sexuellt överförbara infektioner (STI). Dessutom fokuserar många EF teknologier på att kapsla in den aktiva agenten, i förhållande till utnyttja ytan för att förmedla biofunctionality. Här beskriver vi en metod för att fabricera och surface-ändra poly(lactic-co-glycolic) syra (PLGA) electrospun fibrer, med den potenta antivirala lektin Griffithsin (GRFT). PLGA är en FDA-godkända polymer som allmänt har använts i drogen leverans på grund av dess enastående kemiska och biokompatibla egenskaper. GRFT är en naturlig, potenta, och säker lektin som besitter bred aktivitet mot många virus inklusive humant immunbristvirus typ 1 (HIV-1). Kombination, har GRFT-modifierade fibrer visade potent inaktivering av HIV-1 i vitro. Detta manuskript beskrivs metoderna för att fabricera och karaktärisera GRFT-modifierade EFs. Första är PLGA electrospun att skapa en fiber byggnadsställning. Fibrerna är därefter ytan modifierade med GRFT hjälp 1-etyl – 3-(3-dimethylaminopropyl) carbodiimide (EDC) och N-hydroxysuccinimide (NHS) kemi. Svepelektronmikroskopi (SEM) användes för att bedöma storlek och morfologi av surface-modifierade formuleringar. Dessutom en gp120 eller hemagglutinin (HA)-baserade ELISA kan användas för att kvantifiera mängden GRFT konjugerat till, liksom GRFT desorption från fiber yta. Detta protokoll kan tillämpas mer allmänt för att fabricera fibrer som är ytan-modifierad med en mängd olika proteiner.

Introduction

Användningen av EFs som en aktuell leveransplattform har potential att avsevärt minska könssjukdomar. För närvarande finns det över 36 miljoner människor lever med HIV, med över två miljoner nya fall av rapporterade i 2015 ensam1,2. Dessutom, herpes simplex virus typ 2 (HSV-2) infektion drabbar hundratals miljoner människor över hela världen och har visat sig förbättra förvärvet av HIV av 2-5 gånger3. På grund av detta förhållande mellan HSV-2 infektion och HIV förvärv finns det betydande intresse i utvecklingen av nya verksamma ämnen som ger samtidigt skydd mot flera sexuellt överförbara sjukdomar. Utvecklingen av nya fordon att förbättra leveransen av dessa antivirala medel ger dessutom potential att ytterligare förbättra skyddande och terapeutiska potens. Mot detta mål, har EFs undersökts som en ny leveransplattform för att minska prevalensen av HIV-1 och HSV-2 infektion.

Under de senaste två decennierna, EFs har i stor utsträckning används i fälten av drogen leverans och tissue engineering4. Ofta, är biokompatibla polymerer valda för att enkelt översätta till terapeutiska tillämpningar. För att fabricera polymera EFs, löses valda polymeren i ett organiskt lösningsmedel eller vattenbaserad lösning, beroende på graden av polymer vattenavvisande egenskaper5. Ämnen av intresse läggs sedan till lösningsmedel eller aqueous lösningen före den electrospinning processen. Polymer lösningen är sedan aspirerade i en spruta och långsamt matas ut medan omfattas av en elektrisk ström. Denna process resulterar vanligtvis i polymer fibrer med blad eller cylindriska macrostructures (figur 1) och fiber diametrar alltifrån mikro – till nano-skala6. För mest terapeutiska tillämpningar, aktiva agenter införlivas inom fibrerna under processen electrospinning och frigörs från fiber via diffusion och efterföljande fiber nedbrytning. Graden av nedbrytning eller release kan ändras med hjälp av olika typer av polymerer eller polymera blandningar för att upprätta en önskad release profil, förmedla unika kemiska och fysikaliska egenskaper7, och att främja inkapsling av praktiskt taget alla sammansatta. Som sådan, har EFs visat positiva till leverans av småmolekylära läkemedel och biologiska agens inklusive proteiner, peptider, oligonukleotider och tillväxtfaktorer6,8,9.

I fältet för STI prevention, har EFs nyligen använts att införliva och ge eller inducerbara-frisättning av antivirala medel10,11,12,13,14 ,15,16,17,18,19. I en av de tidigaste studierna utvecklades pH-lyhörd fibrer för att frigöra ämnen som svar på förändringar i miljön inom den kvinnliga fortplantningsorganen (FRT), som på begäran en metod för skydd mot HIV-1-11. Sedan, har andra studier undersökt polymerblandningar består av polyeten oxid (PEO) och poly-L-mjölksyra (PLLA), för att utvärdera avstämbara frisläppandet av antivirala och preventivmedel agenter för HIV-1 förebyggande och preventivmedel i vitro 12. ytterligare studier har påvisat genomförbarheten av EFs att tillhandahålla följande: förlängd frisättning av liten molekyl antiviraler14, stark och flexibel mekaniska egenskaper20, 3D-leverans arkitekturer21 , hämning av spermier penetration12och förmågan att gå samman med andra leverans teknik13. Slutligen har tidigare arbete utvärderat polymera fibrer för ihållande-leverans av antivirala medel mot gemensamma co-infective virus, HSV-2 och HIV-1-14. I denna studie som polymer fibrer kompletterande verksamhet till antivirala leverans behålla sin struktur för upp till 1 månad och tillhandahålla en fysisk viral inträdeshinder. Från dessa resultat konstaterades det att EFs kan användas till både fysiskt och kemiskt hindra virusinfektion.

Medan avstämbara release egenskaper gör polymera EFs en attraktiv plattform för mikrobicid leverans, har EFs utvecklats i andra program att fungera som surface-modifierade ställningar7. EFs har använts för att efterlikna morfologi av den extracellulära matrixen (ECM), ofta egenskap ställningar att förbättra cellulär förnyelse22och förbättra deras användbarhet i tissue engineering23,24. Fibrer som består av polymerer, såsom poly-ε-kaprolakton (PCL) och PLLA har ändrats av ytan med tillväxtfaktorer och proteiner efter electrospinning att ge ECM-liknande egenskaper inklusive ökad cellulär adhesion och spridning25 , 26. Dessutom antimikrobiell yta-modifierade EFs har utvärderats för att förhindra tillväxt av specifika patogena bakterier27,28. På grund av denna mångsidighet och förmåga att inducera biologiska effekter, fortsätter EF tekniken att expandera i en mängd olika fält att tillhandahålla flera mekanistiska funktioner. Trots deras nytta av en mångfald av program, har ännu, surface-modifierade fibrer endast nyligen undersökts i mikrobicid fält29.

Parallellt med utvecklingen av nya delivery-teknologier för att förebygga och behandla sexuellt överförbara sjukdomar, nya biologiska behandlingar har utvecklats. En av de mest lovande mikrobicid kandidaterna är den självhäftande antivirala lektin, GRFT30. Ursprungligen härstammar från en art av röda alger, GRFT har visat aktivitet som en potent hämmare av HSV-2, HIV, SARS, samt hepatit C virus31,32,33,34, 35 , 36. I själva verket bland biologiskt-baserade hämmare, GRFT har den mest potenta anti-HIV-aktiviteten, inactivating HIV-1 nästan omedelbart vid kontakt30, bibehållen stabilitet och aktivitet i närvaro av kultur media från vaginal mikrober för upp till 10 dagar37. Mer nyligen, en 0,1% GRFT gel visades att skydda möss mot intravaginal HSV-2 utmaning, vilket gör det en lovande kandidat för den första raden av skydd mot både HSV-2 och HIV-132, 38. för HIV specifikt GRFT hämmar infektion genom fysiskt bindande gp120 eller terminal mannos N-länkade glycan rester på virala kuvert ytor att förhindra inträde38,39,40,41 ,42. Denna hämning är mycket potent och med IC50s närmar sig 3 ng/mL43. Förutom att hämma HIV-infektion, har studier också visat att GRFT skyddar mot HSV-2 infektion genom att hämma cell till cell spridning av virus32. I alla fall, har GRFT visat sig vara självhäftande viruspartiklar, samtidigt som vi visar hög motståndskraft mot denaturering. Senast, har GRFT visat synergistisk aktivitet med kombinationer av Tenofovir (TFV) och andra antivirala medel44, gör det möjligt och sannolikt fördelaktigt att administrera tillsammans med EFs. GRFT potent egenskaper gör det en utmärkt biologiskt-baserade antivirala kandidat, där leverans kan förstärkas med EF-teknik.

Utnyttja denna kunskap för självhäftande och medfödda antivirala egenskaperna för GRFT, utformades en polymera fiber byggnadsställning som integrerar dessa egenskaper för att ge det första lagret av viruset inträde hämning29. Att hitta inspiration i det sättet att cervicovaginal slem hindrar virus transport främst genom mucoadhesive mucin interaktioner, hypotesen vi som genom att använda EFs som en byggnadsställning och kovalent ändra ytan med GRFT, en hög täthet av Surface-konjugerad GRFT skulle försvaga och inaktivera virus på dess entrypoint45,46,47. Här utvecklades EFs som en stationär byggnadsställning tillhandahålla en protein-baserade, viral lim-inactivating barriär plattform. Vi försökt kombinera potenta antivirala egenskaperna för GRFT med en biokompatibel, modifierbara och slitstark polymer plattform, att skapa en nya viruset ”fälla”.

För att uppnå dessa mål, fibrer består av PLGA var electrospun och EDC-NHS kemi användes för att därefter ändra EF ytan med GRFT. PLGA tjänade som en modell polymer på grund av dess omfattande användning i electrospinning48, kombinerat med dess biokompatibilitet och kostnadseffektivitet. Dessutom ytmodifiering utnyttjar den stora ytan av EFs och ger ett användbart alternativ som kan kombineras med inkapsling att maximera fiber verktyget49. Till skillnad från traditionella inkapsling metoder där endast en del av GRFT är tillgängliga (och endast övergående presentera i FRT), kan ytmodifiering aktivera GRFT att upprätthålla maximal bioaktivitet under hela behandlingen. Dessutom kan införlivandet av hydrofil föreningar såsom proteiner, av traditionella electrospinning metoder, resultera i lägre inkapsling effektivitetsvinster och förlust av protein aktivitet50. GRFT yta-modifierade fibrer kan därför erbjuda en lovande alternativa leveranssätt som kan användas ensamt eller i kombination med electrospinning för att förbättra skyddet mot STI infektion.

Protocol

1. beredning och tillverkning av Electrospun Fiber ställningen försiktighet: allt arbete med lösningsmedel eller polymerlösningar bör utföras i dragskåp kemisk . Hänvisa till material säkerhetsdatablad av varje reagens innan protokollet. Att electrospin en 3 mL 15% w/w PLGA polymer lösningen, väger 720 mg 50: 50 poly (mjölksyra-co-glykolsyra) (PLGA; 0,55 till 0,75 dL/g, 31-57 kDa) i en 10 mL injektionsflaska av scintillation. Volymen av lösningen baseras på t…

Representative Results

Fiber morfologi har en betydande effekt på ytan-modifierade EFs förmåga att ge skydd mot virus. Även om electrospinning är en bekväm och okomplicerad procedur, kan icke-optimerade polymer formuleringar resultera i oregelbunden fiber morfologi (figur 5B-C). Förändringar i electrospinning tillstånd som resulterar i bildandet av pärlstav eller amorfa morfologier matta-liknande, orsakas ofta av lösningsmedel-polymer oförenlighet, låg…

Discussion

På grund av sin porösa strukturer och stora ytor, har EFs funnit en mängd olika applikationer inom vården, varav den ena innehåller servering som terapeutiska leveransfordon. Narkotika och andra ämnen kan införlivas inom EFs för avstämbara leverans, medan biologiska och kemiska ligander kan vara konjugerat till fiber ytan för cell-specifika inriktning52 eller biosensing53. Här modifierade tillverkning av GRFT yta PLGA EFs, som en leverans byggnadsställning att f…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi är tacksamma mot den judiska Heritage Fund for Excellence för att finansiera denna forskning. Vi tackar Dr. Stuart Williams II för generöst ger användning av electrospinning systemet. Vi tackar också Dr Kenneth Palmer för att förse oss med Griffithsin. Vi tackar dessutom Dr. Nobuyuki Matoba och hans labb för utbildning oss i GRFT ELISA fungerar.

Materials

Poly(Lactide-co-Glycolide) (PLGA) 50:50 Lactel B6013-2P
1,1,1,3,3,3-Hexafluoro-2-propanol (HFIP) Thermo Scientific  147541000
Blunt Dispensing Needle 18g X 1/2 Brico Medical Supplies BN1815
BD 3mL Syringe Luer-lok tip VWR 309657
Parafilm (plastic film) Sigma Aldrich P7793
2-(N-Morpholino)ethanesulfonic acid (MES Buffer) Sigma Aldrich M3671 
Sodium Chloride Sigma Aldrich S7653
Potassium Chloride Sigma Aldrich P9333
Sodium phosphate dibasic Sigma Aldrich S7907
Potassium phosphate monobasic Sigma Aldrich P0662
Hydroxysuccinimide (NHS) Thermo Scientific  24500
1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl)carbodiimide hydrochloride (EDC) Thermo Scientific  22980
2-Mercaptoethanol Fisher BP176
Griffithsin (GRFT) Kentucky Bioprocessing NA custom made, no product number
Dimethyl Sulfoxide Milipore 317275
Polyethylene glycol sorbitan monolaurate (Polysorbate, Tween 20) Sigma Aldrich P9416 
Tris EDTA Buffer Sigma Aldrich 93283
Flat-Bottom Immuno Nonsterile 96-Well Plates Thermo Scientific  3355
Influenza Hemagglutinin (HA) Kentucky Bioprocessing NA custom made, no product number
Goat Anti-GRFT (Primary Antibody) Kentucky Bioprocessing NA custom made, no product number
 Donkey anti-goat IgG-HRP (Secondary Antibody) Santa Cruz 2056
Sure Blue TMB Microwell Peroxidase Substrate KPL 52-00-00

References

  1. Gottlieb, S. L., et al. Toward global prevention of sexually transmitted infections (STIs): the need for STI vaccines. Vaccine. 32, 1527-1535 (2014).
  2. Freeman, E. E., et al. Herpes simplex virus 2 infection increases HIV acquisition in men and women: systematic review and meta-analysis of longitudinal studies. AIDS. 20, 73-83 (2006).
  3. Sill, T. J., von Recum, H. A. Electrospinning: applications in drug delivery and tissue engineering. Biomaterials. 29, 1989-2006 (2008).
  4. Jiang, T., Carbone, E. J., Lo, K. W. H., Laurencin, C. T. Electrospinning of polymer nanofibers for tissue regeneration. Prog Polym Sci. 46, 1-24 (2015).
  5. Hu, X., et al. Electrospinning of polymeric nanofibers for drug delivery applications. J. Control. Release. 185, 12-21 (2014).
  6. Huang, Z. M., Zhang, Y. Z., Kotaki, M., Ramakrishna, S. A review on polymer nanofibers by electrospinning and their applications in nanocomposites. Compos Sci Technol. 63, 2223-2253 (2003).
  7. Son, Y. J., Kim, W. J., Yoo, H. S. Therapeutic applications of electrospun nanofibers for drug delivery systems. Arch. Pharmacal Res. 37, 69-78 (2014).
  8. Ji, W., et al. Bioactive electrospun scaffolds delivering growth factors and genes for tissue engineering applications. Pharm. Res. 28, 1259-1272 (2011).
  9. Blakney, A. K., Ball, C., Krogstad, E. A., Woodrow, K. A. Electrospun fibers for vaginal anti-HIV drug delivery. Antiviral Res. 100, 9-16 (2013).
  10. Huang, C., et al. Electrospun cellulose acetate phthalate fibers for semen induced anti-HIV vaginal drug delivery. Biomaterials. 33, 962-969 (2012).
  11. Ball, C., Krogstad, E., Chaowanachan, T., Woodrow, K. A. Drug-eluting fibers for HIV-1 inhibition and contraception. PLoS One. 7, 49792 (2012).
  12. Yohe, S. T., Colson, Y. L., Grinstaff, M. W. Superhydrophobic materials for tunable drug release: using displacement of air to control delivery rates. J. Am. Chem. Soc. 134, 2016-2019 (2012).
  13. Aniagyei, S. E., et al. Evaluation of poly(lactic-co-glycolic acid) and poly(dl-lactide-co-epsilon-caprolactone) electrospun fibers for the treatment of HSV-2 infection. Mater. Sci. Eng. C Mater. Biol. Appl. 72, 238-251 (2017).
  14. Huang, C., et al. Electrospun polystyrene fibers for HIV entrapment. Polym. Advan. Technol. 25, 827-834 (2014).
  15. Carson, D., Jiang, Y., Woodrow, K. A. Tunable Release of Multiclass Anti-HIV Drugs that are Water-Soluble and Loaded at High Drug Content in Polyester Blended Electrospun Fibers. Pharm. Res. 33, 125-136 (2016).
  16. Chou, S. F., Carson, D., Woodrow, K. A. Current strategies for sustaining drug release from electrospun nanofibers. J. Control. Release. 220, 584-591 (2015).
  17. Ball, C., Woodrow, K. A. Electrospun solid dispersions of Maraviroc for rapid intravaginal preexposure prophylaxis of HIV. Antimicrob. Agents Chemother. 58, 4855-4865 (2014).
  18. Blakney, A. K., Krogstad, E. A., Jiang, Y. H., Woodrow, K. A. Delivery of multipurpose prevention drug combinations from electrospun nanofibers using composite microarchitectures. Int. J. Nanomedicine. 9, 2967-2978 (2014).
  19. Li, C. M., Vepari, C., Jin, H. J., Kim, H. J., Kaplan, D. L. Electrospun silk-BMP-2 scaffolds for bone tissue engineering. Biomaterials. 27, 3115-3124 (2006).
  20. Cai, S., Xu, H., Jiang, Q., Yang, Y. Novel 3D electrospun scaffolds with fibers oriented randomly and evenly in three dimensions to closely mimic the unique architectures of extracellular matrices in soft tissues: fabrication and mechanism study. Langmuir. 29, 2311-2318 (2013).
  21. Li, M. Y., et al. Electrospun protein fibers as matrices for tissue engineering. Biomaterials. 26, 5999-6008 (2005).
  22. Cui, W., Zhou, Y., Chang, J. Electrospun nanofibrous materials for tissue engineering and drug delivery. Sci. Technol. Adv. Mater. 11, 014108 (2010).
  23. Zahedi, P., Rezaeian, I., Ranaei-Siadat, S. O., Jafari, S. H., Supaphol, P. A review on wound dressings with an emphasis on electrospun nanofibrous polymeric bandages. Polym. Advan. Technol. 21, 77-95 (2010).
  24. Vaidya, P., Grove, T., Edgar, K. J., Goldstein, A. S. Surface grafting of chitosan shell, polycaprolactone core fiber meshes to confer bioactivity. J Bioact Compat Pol. 30, 258-274 (2015).
  25. Rim, N. G., et al. Mussel-inspired surface modification of poly(L-lactide) electrospun fibers for modulation of osteogenic differentiation of human mesenchymal stem cells. Colloid Surface B. 91, 189-197 (2012).
  26. Yao, C., Li, X. S., Neoh, K. G., Shi, Z. L., Kang, E. T. Surface modification and antibacterial activity of electrospun polyurethane fibrous membranes with quaternary ammonium moieties. J Membrane Sci. 320, 259-267 (2008).
  27. Kangwansupamonkon, W., Tiewtrakoonwat, W., Supaphol, P., Kiatkamjornwong, S. Surface Modification of Electrospun Chitosan Nanofibrous Mats for Antibacterial Activity. J Appl Polym Sci. 131, (2014).
  28. Grooms, T. N., et al. Griffithsin-Modified Electrospun Fibers as a Delivery Scaffold To Prevent HIV Infection. Antimicrob. Agents Chemother. 60, 6518-6531 (2016).
  29. Emau, P., et al. Griffithsin, a potent HIV entry inhibitor, is an excellent candidate for anti-HIV microbicide. J. Med. Primatol. 36, 244-253 (2007).
  30. Meuleman, P., et al. Griffithsin has antiviral activity against hepatitis C virus. Antimicrob. Agents Chemother. 55, 5159-5167 (2011).
  31. Nixon, B., et al. Griffithsin protects mice from genital herpes by preventing cell-to-cell spread. J. Virol. 87, 6257-6269 (2013).
  32. O’Keefe, B. R., et al. Broad-spectrum in vitro activity and in vivo efficacy of the antiviral protein griffithsin against emerging viruses of the family Coronaviridae. J. Virol. 84, 2511-2521 (2010).
  33. Ishag, H. Z., et al. Griffithsin inhibits Japanese encephalitis virus infection in vitro and in vivo. Arch. Virol. 158, 349-358 (2013).
  34. Ferir, G., et al. Combinations of griffithsin with other carbohydrate-binding agents demonstrate superior activity against HIV Type 1, HIV Type 2, and selected carbohydrate-binding agent-resistant HIV Type 1 strains. AIDS Res. Hum. Retroviruses. 28, 1513-1523 (2012).
  35. Xue, J., et al. The Griffithsin Dimer Is Required for High-Potency Inhibition of HIV-1: Evidence for Manipulation of the Structure of gp120 as Part of the Griffithsin Dimer Mechanism. Antimicrob Agents Ch. 57, 3976-3989 (2013).
  36. Kouokam, J. C., et al. Investigation of griffithsin’s interactions with human cells confirms its outstanding safety and efficacy profile as a microbicide candidate. PLoS One. 6, 22635 (2011).
  37. Moulaei, T., et al. Monomerization of viral entry inhibitor griffithsin elucidates the relationship between multivalent binding to carbohydrates and anti-HIV activity. Structure. 18, 1104-1115 (2010).
  38. Barton, C., et al. Activity of and effect of subcutaneous treatment with the broad-spectrum antiviral lectin griffithsin in two laboratory rodent models. Antimicrob. Agents Chemother. 58, 120-127 (2014).
  39. Mori, T., et al. Isolation and characterization of griffithsin, a novel HIV-inactivating protein, from the red alga Griffithsia sp. J. Biol. Chem. 280, 9345-9353 (2005).
  40. Ziolkowska, N. E., et al. Domain-swapped structure of the potent antiviral protein griffithsin and its mode of carbohydrate binding. Structure. 14, 1127-1135 (2006).
  41. Ziolkowska, N. E., et al. Crystallographic, thermodynamic, and molecular modeling studies of the mode of binding of oligosaccharides to the potent antiviral protein griffithsin. Proteins. 67, 661-670 (2007).
  42. O’Keefe, B. R., et al. Scaleable manufacture of HIV-1 entry inhibitor griffithsin and validation of its safety and efficacy as a topical microbicide component. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 106, 6099-6104 (2009).
  43. Ferir, G., Palmer, K. E., Schols, D. Synergistic activity profile of griffithsin in combination with tenofovir, maraviroc and enfuvirtide against HIV-1 clade C. Virology. 417, 253-258 (2011).
  44. Lai, S. K., Wang, Y. Y., Hanes, J. Mucus-penetrating nanoparticles for drug and gene delivery to mucosal tissues. Adv. Drug Deliv. Rev. 61, 158-171 (2009).
  45. Lai, S. K., Wang, Y. Y., Hida, K., Cone, R., Hanes, J. Nanoparticles reveal that human cervicovaginal mucus is riddled with pores larger than viruses. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 107, 598-603 (2010).
  46. Lai, S. K., Wang, Y. Y., Wirtz, D., Hanes, J. Micro- and macrorheology of mucus. Adv. Drug Deliv. Rev. 61, 86-100 (2009).
  47. Gentile, P., Chiono, V., Carmagnola, I., Hatton, P. V. An Overview of Poly(lactic-co-glycolic) Acid (PLGA)-Based Biomaterials for Bone Tissue Engineering. Int J Mol Sci. 15, 3640-3659 (2014).
  48. Repanas, A., Andriopoulou, S., Glasmacher, B. The significance of electrospinning as a method to create fibrous scaffolds for biomedical engineering and drug delivery applications. J Drug Deliv Sci Tec. 31, 137-146 (2016).
  49. Yoo, H. S., Kim, T. G., Park, T. G. Surface-functionalized electrospun nanofibers for tissue engineering and drug delivery. Adv. Drug Deliv. Rev. 61, 1033-1042 (2009).
  50. Barton, C., Kouokam, J. C., Hurst, H., Palmer, K. E. Pharmacokinetics of the Antiviral Lectin Griffithsin Administered by Different Routes Indicates Multiple Potential Uses. Viruses. 8, (2016).
  51. Sawicka, K., Gouma, P., Simon, S. Electrospun biocomposite nanofibers for urea biosensing. Sensor Actuat B-Chem. 108, 585-588 (2005).
  52. Ramakrishna, S., et al. Electrospun nanofibers: solving global issues. Mater Today. 9, 40-50 (2006).
  53. Liu, X., et al. Electrospinnability of Poly Lactic-co-glycolic Acid (PLGA): the Role of Solvent Type and Solvent Composition. Pharm. Res. 34, 738-749 (2017).
  54. Bhardwaj, N., Kundu, S. C. Electrospinning: A fascinating fiber fabrication technique. Biotechnol Adv. 28, 325-347 (2010).
  55. Fong, H., Chun, I., Reneker, D. H. Beaded nanofibers formed during electrospinning. Polymer. 40, 4585-4592 (1999).
  56. Zong, X. H., et al. Structure and process relationship of electrospun bioabsorbable nanofiber membranes. Polymer. 43, 4403-4412 (2002).
  57. Rodoplu, D., Mutlu, M. Effects of Electrospinning Setup and Process Parameters on Nanofiber Morphology Intended for the Modification of Quartz Crystal Microbalance Surfaces. J Eng Fiber Fabr. 7, 118-123 (2012).
  58. Grabarek, Z., Gergely, J. Zero-Length Crosslinking Procedure with the Use of Active Esters. Anal Biochem. 185, 131-135 (1990).
  59. Staros, J. V., Wright, R. W., Swingle, D. M. Enhancement by N-Hydroxysulfosuccinimide of Water-Soluble Carbodiimide-Mediated Coupling Reactions. Anal Biochem. 156, 220-222 (1986).
  60. Tan, S. H., Inai, R., Kotaki, M., Ramakrishna, S. Systematic parameter study for ultra-fine fiber fabrication via electrospinning process. Polymer. 46, 6128-6134 (2005).
  61. Spasova, M., Stoilova, O., Manolova, N., Rashkov, I., Altankov, G. Preparation of PLLA/PEG Nanofibers by Electrospinning and Potential Applications. J Bioact Compat Pol. 22, 62-76 (2007).
  62. Boland, E. D., et al. Electrospinning polydioxanone for biomedical applications. Acta Biomater. 1, 115-123 (2005).
  63. Senecal, A., Magnone, J., Marek, P., Senecal, K. Development of functional nanofibrous membrane assemblies towards biological sensing. React Funct Polym. 68, 1429-1434 (2008).
  64. Zhang, Y. Z., Venugopal, J., Huang, Z. M., Lim, C. T., Ramakrishna, S. Characterization of the surface biocompatibility of the electrospun PCL-collagen nanofibers using fibroblasts. Biomacromolecules. 6, 2583-2589 (2005).
  65. Gupta, D., Venugopal, J., Mitra, S., Giri Dev, V. R., Ramakrishna, S. Nanostructured biocomposite substrates by electrospinning and electrospraying for the mineralization of osteoblasts. Biomaterials. 30, 2085-2094 (2009).

Play Video

Cite This Article
Vuong, H. R., Tyo, K. M., Steinbach-Rankins, J. M. Fabrication and Characterization of Griffithsin-modified Fiber Scaffolds for Prevention of Sexually Transmitted Infections. J. Vis. Exp. (128), e56492, doi:10.3791/56492 (2017).

View Video