Summary

En effektiv og enkel metode til at etablere NK og T-cellelinier fra patienter med kronisk aktiv Epstein - Barr virusinfektion

Published: March 30, 2018
doi:

Summary

En simpel metode til at opnå NK og T-celle kloner fra CAEBV patienter blev udviklet med høj effektivitet, en lille mængde af perifert blod og en lav-dosis af IL-2.

Abstract

En række metoder har været beskrevet at etablere NK/T cellelinjer fra patienter med lymfom eller Lymfoproliferative syndrom. Disse metoder ansat feeder celler, renset NK eller T celler med så meget som 10 mL blod eller en høj-dosis af IL-2. Denne undersøgelse præsenterer en ny metode med en kraftfuld og enkel strategi at etablere NK og T-celle linier ved dyrkning af perifert blod mononukleære celler (PBMC) med tilsætning af rekombinant humant IL-2 (rhIL-2), og bruger så lidt som 2 mL fuldblod. Cellerne kan formere sig hurtigt i to uger og opretholdes i mere end 3 måneder. Med denne metode, er der etableret 7 NK eller T-celle linier med en høj succesrate. Denne metode er simpel, pålidelig og gælder for oprettelse af cellelinjer fra flere tilfælde af CAEBV eller NK/T celle lymfom.

Introduction

Epstein – Barr virus (EBV) er allestedsnærværende og inficerer ikke kun B-celler, men også T og natural killer (NK) celler, der forårsager en række EBV-associerede NK/T Lymfoproliferative sygdomme (LPD) og lymfom/leukæmi, såsom EBV-associerede hemophagocytic lymphohistiocytosis, hydroa vacciniforme-lignende lymfom, extranodal T-NK-celle lymfom, nasal type og aggressive NK celle leukæmi1,2,3. Blandt disse er svær kronisk aktiv EBV (SCAEBV) sygdom, som er hændelse hovedsagelig i Østasien, og der nu betragtes som værende en LPD forårsaget af klonal ekspansion af EBV-inficerede T eller NK celler4,5,6, 7, men uden den tilsyneladende immundefekt præsentere i infektiøs mononukleose (IM)-som symptomer, herunder feber, hepatosplenomegaly, lymfadenopati og leverdysfunktion vedvarende eller regelmæssige vareleverancer, samt høj EBV-DNA belastning i den perifert blod8,9. Patienter med CAEBV har en dårlig prognose10,11, og dens patogenese og EBV rolle er uklart. Derfor, cellelinjer afledt af EBV-associerede NK/T Lymfoproliferative sygdomme og lymfomer er meget nyttige som cell modeller for afklaring mekanisme af EBV induceret NK eller T-celle spredning og sine forbindelser med høj forekomst af leukæmi eller lymfom.

Til dato har adskillige cellelinjer etableret med forskellige teknikker12,13,14,15,16. En menneskelig NK cellelinie, NK-YS, blev etableret fra NK celle lymfom/leukæmi, co dyrkning med en mus stromale cellelinie som feeder, og rhIL-2 i en koncentration på 20U pr. mL15. KAI3 var en anden NK cellelinie etableret fra patienter med en svær myg allergi eller SCAEBV med autolog lymphoblastoid cellelinje (LCL), B-celler forvandlet af EBV, som feeder cellerne og tilsætning af rhIL-2 på 100U/mL16. SNK6 og SNT8 var afledt af tumor væv af nasal NK/T celle lymfom patienter ved at tilføje højdosis rhIL-2 (700U/mL)12. Med lignende teknik var cellen SNK-1 fra CAEBV patienter, kulturperler fra PBMC ved fjernelse af T-celler og tilføje 700U/mL af rhIL-213,17. SNT13 og SNT15 blev etableret ved at fjerne CD4 + og CD8 + celler18. Hidtil, blev andre T-celle og NK cellelinjer fra EBV-NK/T LPD patienter alle udviklet med denne metode19.

Ulemperne ved de eksisterende metoder nævnt ovenfor omfatter beskæftigelse af feeder celler, kravet om en høj-dosis IL-2, udnyttelse af så meget som 10 mL fuldblod eller rensning af NK/T-celler, som er meget udfordrende i klinikken grund nødvendigheden af at kontrollere, hvilke typer af celle at EBV latent inficerer før begyndelsen til kultur. Som CAEBV primært opstår hos børn i Asien, er 10 mL blod ikke let at erhverve i alle regioner. I denne undersøgelse udviklede vi en ny enkel metode med en høj succesrate at etablere NK og/eller T-celle linier ved dyrkning PBMC fra CAEBV patienter ved hjælp af en lav-dosis af rhIL2 og en volumen på 2 mL fuldblod uden feeder celler. Resultaterne af denne metode har bevist sin høje effektivitet og tidsbesparende.

Protocol

Denne undersøgelse blev godkendt af den etiske komité i Institut for Genetik og udviklingsmæssige biologi, kinesiske Academy of Sciences, og protokollen følger de institutionelle retningslinjer for menneskelig velfærd. Bemærk: Se figur 1 for en skematisk af arbejdsprocessen. 1. isolering af PBMC fra CAEBV patienter Rense primære PBMC fra 2 mL fuldblod af CAEBV patienter af gradient (f.eks.Ficoll-plak) centrifug…

Representative Results

Efter 3 dage kultur under etableringen af cellelinjer, begynder polymorfe cellerne at dukke (figur 2). Efter 7 dage vokse celler hurtigt, da både antal og levedygtighed af celler er øget med en høj hastighed (figur 3). Små klynger af celler er klart synlig efter 10-14 dage vokser, når celle koncentrationen kan overstige 3-6 × 106. I denne periode, bør celler udvides ved opdeling i to eller tre brønde i kultur-p…

Discussion

I denne protokol, er blevet udviklet en ny teknik til oprettelse af NK/T cellelinjer fra fuldblod af CAEBV patienter. Sammenlignet med de eksisterende metoder, er den største fordel ved denne metode dets enkelhed og sit krav om kun en lille mængde blod, mens det udviser en høj succesrate og gode betingelser for cellernes levedygtighed. NK/T cellelinjer kan desuden etableres ved dyrkning PBMC uden fastsættelse af celletyper EBV latent inficerede på forhånd som bestemmelse ville forbruge mere blod og tid før dyrknin…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af nøglen projekter af kinesiske Academy of Sciences (KFZD-SW-205), strategiske biologiske ressourcer teknologi Support System af kinesiske Academy of Sciences (CZBZX-1 og ZSSB-004), og af tilskud fra National Science Foundation of China ( 81401640) og Shanghai naturvidenskab fond (14ZR1434800).

Materials

Hu HLA-DR FITC BD 560944 antibody for FACS
Hu CD4 FITC BD 555346 antibody for FACS
Hu/NHP CD8 PE BD 557086 antibody for FACS
Hu CD3 PE BD 555340 antibody for FACS
Hu CD16 FITC 3G8 BD 555406 antibody for FACS
Hu/NHP CD56 PE MY31 BD 556647 antibody for FACS
hu/CD19 PE-Cy7 BD 560728 antibody for FACS
human IL-2 Roche 11147528001
human serum MRC CCC118-125
CO2 incubator SANYO
Centrifuge Techcomp CT6T Centrifugation
microscope OLYMPUS CKX53 CKX53
Automated Cell Counter Countstar IC 1000 For cell counting
24 well cell culture cluster Corning Incorporated 3524 Polystyrene plates
25cm2 cell culture flask Nest 707001 Polystyrene
FBS Gibco 10270 Component of cell medium
RPMI Medium 1640 life 22400089 For cell medium
L-Glutamine Amresco 374 Component of cell medium
100 x streptomycin penicillin solution BioRoYeeBRY-2309 BioRoYee BRY-2309 Component of cell medium
Ficoll paque plus GE Healthcare 17-1440-03 For in vitro isolation of lymphocyte
DMSO Sigma D2650 For freezing cells
flow cytometer BD BD FACSAria II
soft ware BD BD FACSDiva soft ware FACS analysis

References

  1. Cohen, J. I. Epstein-Barr virus infection. N Engl J Med. 343 (7), 481-492 (2000).
  2. Cohen, J. I., Kimura, H., Nakamura, S., Ko, Y. H., Jaffe, E. S. Epstein-Barr virus-associated lymphoproliferative disease in non-immunocompromised hosts: a status report and summary of an international meeting, 8-9 September 2008. Ann Oncol. 20 (9), 1472-1482 (2009).
  3. Oshimi, K. Progress in understanding and managing natural killer-cell malignancies. Br J Haematol. 139 (4), 532-544 (2007).
  4. Kawa, K., et al. Mosquito allergy and Epstein-Barr virus-associated T/natural killer-cell lymphoproliferative disease. Blood. 98 (10), 3173-3174 (2001).
  5. Kimura, H. Pathogenesis of chronic active Epstein-Barr virus infection: is this an infectious disease, lymphoproliferative disorder, or immunodeficiency?. Rev Med Virol. 16 (4), 251-261 (2006).
  6. Kimura, H., et al. Clinical and virologic characteristics of chronic active Epstein-Barr virus infection. Blood. 98 (2), 280-286 (2001).
  7. Ohshima, K., et al. Proposed categorization of pathological states of EBV-associated T/natural killer-cell lymphoproliferative disorder (LPD) in children and young adults: overlap with chronic active EBV infection and infantile fulminant EBV T-LPD. Pathol Int. 58 (4), 209-217 (2008).
  8. Okano, M. Overview and problematic standpoints of severe chronic active Epstein-Barr virus infection syndrome. Crit Rev Oncol Hematol. 44 (3), 273-282 (2002).
  9. Straus, S. E. The chronic mononucleosis syndrome. J Infect Dis. 157 (3), 405-412 (1988).
  10. Jones, J. F., et al. T-cell lymphomas containing Epstein-Barr viral DNA in patients with chronic Epstein-Barr virus infections. N Engl J Med. 318 (12), 733-741 (1988).
  11. Kikuta, H., et al. Epstein-Barr virus genome-positive T lymphocytes in a boy with chronic active EBV infection associated with Kawasaki-like disease. Nature. 333 (6172), 455-457 (1988).
  12. Nagata, H., et al. Characterization of novel natural killer (NK)-cell and gammadelta T-cell lines established from primary lesions of nasal T/NK-cell lymphomas associated with the Epstein-Barr virus. Blood. 97 (3), 708-713 (2001).
  13. Nagata, H., et al. Presence of natural killer-cell clones with variable proliferative capacity in chronic active Epstein-Barr virus infection. Pathol Int. 51 (10), 778-785 (2001).
  14. Tabata, N., et al. Hydroa vacciniforme-like lymphomatoid papulosis in a Japanese child: a new subset. J Am Acad Dermatol. 32 (2 Pt 2), 378-381 (1995).
  15. Tsuchiyama, J., et al. Characterization of a novel human natural killer-cell line (NK-YS) established from natural killer cell lymphoma/leukemia associated with Epstein-Barr virus infection. Blood. 92 (4), 1374-1383 (1998).
  16. Tsuge, I., et al. Characterization of Epstein-Barr virus (EBV)-infected natural killer (NK) cell proliferation in patients with severe mosquito allergy; establishment of an IL-2-dependent NK-like cell line. Clin Exp Immunol. 115 (3), 385-392 (1999).
  17. Zhang, Y., et al. Common cytological and cytogenetic features of Epstein-Barr virus (EBV)-positive natural killer (NK) cells and cell lines derived from patients with nasal T/NK-cell lymphomas, chronic active EBV infection and hydroa vacciniforme-like eruptions. Br J Haematol. 121 (5), 805-814 (2003).
  18. Oyoshi, M. K., et al. Preferential expansion of Vgamma9-JgammaP/Vdelta2-Jdelta3 gammadelta T cells in nasal T-cell lymphoma and chronic active Epstein-Barr virus infection. Am J Pathol. 162 (5), 1629-1638 (2003).
  19. Imadome, K., et al. Novel mouse xenograft models reveal a critical role of CD4+ T cells in the proliferation of EBV-infected T and NK cells. PLoS Pathog. 7 (10), e1002326 (2011).
  20. Shibuya, A., Nagayoshi, K., Nakamura, K., Nakauchi, H. Lymphokine requirement for the generation of natural killer cells from CD34+ hematopoietic progenitor cells. Blood. 85 (12), 3538-3546 (1995).
  21. Spits, H., Yssel, H. Cloning of Human T and Natural Killer Cells. Methods. 9 (3), 416-421 (1996).
  22. Liu, X., Xu, C., Duan, Z. A Simple Red Blood Cell Lysis Method for the Establishment of B Lymphoblastoid Cell Lines. J Vis Exp. (119), (2017).
  23. Kawabe, S., et al. Application of flow cytometric in situ hybridization assay to Epstein-Barr virus-associated T/natural killer cell lymphoproliferative diseases. Cancer Sci. 103 (8), 1481-1488 (2012).
check_url/56515?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Xu, C., Ai, J., Zhang, Q., Li, T., Wu, X., Xie, Z., Duan, Z. An Efficient and Simple Method to Establish NK and T Cell Lines from Patients with Chronic Active Epstein-Barr Virus Infection. J. Vis. Exp. (133), e56515, doi:10.3791/56515 (2018).

View Video