기본 바인딩 파트너, 컨텍스트 및 x 선 형광 및 radiometal 통풍 관을 제시 하 여 기판 내용물의 생물 특성 periplasmic 전이 금속 보호자의 추출에 대 한 프로토콜.
우리는 세포질에서 세균성 periplasm의 분리에 대 한 확장 가능한 메서드를 보여 줍니다. 이 메서드는 생물 특성화 및 periplasmic 및 세포질 구획 사이 측정 기판 전송 목적 periplasmic 단백질을 순화 하는 데 사용 됩니다. 실험 신중 하 게 제한 함으로써는 periplasm 세포질에서 분리 된 시간, 관심사의 단백질을 추출 하 고 시험의 각 구획 구획 사이 이성 오염 없이 기판에 대 한 개별적으로 수 있습니다. 분류에서 추출 된 단백질 3 차원 구조 결정 또는 기질 바인딩 프로필에 대 한 추가 분석 수 있습니다 다음. 또는, 다른 세균 구획에 걸쳐 radiotracer 추적 프로그램의 배포 뿐만 아니라 총 % 이해, 결정 (및 그러므로 금속 전송)를 가진 외피 후이 메서드를 수행할 수 있습니다. radiotracer 실험 생리 적인 기질과 artefactual 기판, mismetallation에 의해 발생 하는 등 구분을 도울 수 있다.
X 선 형광 샘플, 금속 관의 유무를 발견 하 고 성장 조건, 정화 조건, 결정 화 조건의 제품으로 금속 관에 발생할 수 있는 변화를 측정에 사용할 수 있습니다. X 선 형광은 또한 변칙 엑스레이 분산 데이터 수집을 위해 사용 하는 최고의 금속 에너지 흡수 피크를 확인 하는 데 사용할 수 있습니다 각 금속에 대 한 풍부의 상대 측정을 제공 합니다. Radiometal 통풍 관 소설 기판의 발견을 지원 뿐만 아니라 x-선 형광에 의해 감지 하는 기판의 생리 적 특성의 유효성을 검사 하는 방법으로 사용할 수 있습니다.
그램 음성 박테리아에 전이 금속 원자의 세포질 풀 증가 하 고 내부 막에 걸쳐 금속 전을 완화 하는 내부 막 ABC (ATP 묶는 카세트) 수입에 의해 보충. Periplasmic 클러스터-1 기질 의무적인 단백질 (SBPs) 금속 원자를 직접 바인딩할 하 고 동족 ABC 수입1에 게 전달 하 periplasm 통해 페리 보호자의 그룹을 작성 합니다. 다른 클러스터의 SBPs 기판, 킬레이트 화 된 금속 (클러스터 A-2), (클러스터 B와 D-1), 탄수화물과 아미노산 등의 전송에 전용 (클러스터 B, C, F-2, F-4); 그럼에도 불구 하 고, 기판에 SBPs c-클램프 배 진화론 보존2를 따릅니다. SBP 기판 전송에 대 한 일반적인된 제안 된 메커니즘에 c-클램프 금성 파리 통3닮은 contortions의 시리즈를 겪고 포함 됩니다. 일반적으로, 클러스터-1 SBPs 홀로 (금속 바인딩) 형태로 정화 하지만 이러한 SBPs의 연구는 apo (금속 무료) 형태의 실험4단백질 생성에 있는 어려움에 의해 제한 됩니다. 날짜 하려면, apo 공부 전략 클러스터-1 SBPs mutagenesis, 투 석, 및 ethylenediaminetetraacetic 산 (EDTA) chelator5,6,,78 부분 변성 되었습니다. , 9 , 10 , 11.이 실험에서 발생 하는 구조적 데이터 클러스터-1 SBPs 수 있습니다 정확 하 게 금성 파리 통 메커니즘을 수행 하지 것이 좋습니다. 현재 문학에서 누락 apo 클러스터-1 SBPs에 vivo에서 생리 바인딩 파트너를 사용 하 여 생산 하는 방법 이다.
YfeA, Yersinia pestis에서 클러스터 A-1 SBP, 그것의 생리 적인 동족 YfeBCDE ABC 가져오기 도구와의 상호 작용을 통해 apo 양식으로 개조 되었다 전염병의 etiological 대리인 정화 세포 분별 법을 사용 하 여 처음으로 시연 에 셀입니다. 우리 YfeA은 에너지 흩어진 엑스레이 분광학 (EDS), 일컬어 x 선 형광에 의해 apo 형태로 보여줍니다. 우리는 또한 외부 막에 걸쳐 금속 통풍 관 및 내부 막에 걸쳐 금속 가져오기 사이 구별을 매우 중요 한 방사성 금속 통풍 관 연구와 세포 분류를 결합 하 여 YfeBCDE 기능을 보여 줍니다. 방사성 트레이 서를 사용 하 여 pg/L 양의 금속, 탐지의 한계 보다 훨씬 낮은 검출 기법 등으로 유도 결합 플라즈마 질량 분석 (ICP-MS) 또는 원자 흡수 분 광 법 (AAS)에 대 한 수 있습니다. 공부 되 고 시스템의 최소한의 섭 동에 대 한 수 있습니다. 또한, 종종 나열 된 전통적인 방법 큰 샘플 볼륨, 추가 후 처리, 및 긴 차례-주위에 시간, radiotracer 분석 실험에 대 한 일반적인 되지 않은 필요 합니다. 따라서,는 radiotracer를 사용 하 여 금속 분포와 셀 내에 통풍 관을 모니터링 하기 위한 편리 하 고 간단한 방법을 제공 한다. 그것은 경우 클러스터 A-1 SBP이이 메서드를 사용 하 여 생산 하는 apo apo는 단백질을 생성 하는 데 사용 하는 현재 관행에서 구조 관찰 에코 것 이라고 하는 것을 확인할 수 있다.
세포 분별 법 격리12에 그들의 내용을 구체적으로의 암시적 목적에 대 한 세포질 구획을 분리 하기 위한 설정된 방법입니다. 세포 분별 법 세포 주기 동안 분자의 위치를 확인 하거나 특정 구획13의 활동을 측정에 주로 사용 됩니다. 예를 들어 금속 전송 활동 금속 기판에 대 한 세포질 구획 검색을 통해 분석 될 수 있습니다. 세포 분별 법 통합 구별 및 내부 막에 걸쳐 외부 막에 걸쳐 금속 통풍 관 및 금속 사이 비교 수 있습니다. 이 프로세스 후에 측정할 수 있습니다 시간이 지남에. 단백질 정화의 경우 세포 세포의 용 해의 가장 일반적인 방법 및 불용 성 구성 요소에서 가용성 구성 요소의 분리는 기계적 장애 (즉, 분쇄, 혼합), 고압 균질 (즉, 프랑스 압력 셀, 셀 disrupter), 그리고 초음파 주파수 (즉., 쥡니다)14. 세포를 lyse에 초음파 주파수의 사용은 일반적으로 가장 적합 작은 볼륨; 그러나, 쥡니다 단백질 변성 수 과도 한 열을 생성으로 알려져 있다. 과도 한 열 생성을 피하기 위해, 초음파 주파수 시간이 소요 될 수 있는 작은 파편으로 DNA 분자를 실수로 저하 순차적 짧은 파열에서 일반적으로 적용 됩니다. 각 프로브는 처리할 수 있는 샘플 볼륨에 대 한 제한 된 범위 또한 여러 비싼 쥡니다 프로브 대리점 및 분석 실험에 대 한 필요할 수 있습니다. 세포를 lyse를 높은 압력의 사용 방지 세포 이전 프랑스 압력 셀 프레스 구성 요소를 냉각 또는 차가운 룸 같은 추운 환경에서 셀 방해를 운영 하 여 세포 세포의 용 해 동안 과도 한 열을 생성 합니다. 쥡니다 프로브 처럼 프랑스 압력 셀 프레스 부품의 여러 다양 한 샘플 볼륨을 처리 하기 위해 구입할 필요가 있습니다. 어셈블리는 연결 하기 쉽지만 운영 하 고 청소 하 고, 어 색 한 프랑스 압력 셀 보도 고 이동 하는 무거운 수 밀도 샘플에서 막힘을 하는 경향이 있다. 사용 하 여 초음파 주파수 및 고압 시스템 세포를 lyse 장점 높은 샘플 복구, 최소한의 교차 오염, 여러 샘플을 처리 하는 능력 및 조정 가능한 힘을 기울이기, 될 수 있는 세포의 최적화에 대 한 적응 샘플 종류의 넓은 range. 최적화는 초음파 주파수를 조정 하 여 발생할 수 있는 버스트, 피스톤 압력 파운드 당 제곱 인치 (psi), 그리고 언론을 통해 전달의 수의 기간. 사용 기계 중단 lyse 세포의 세포 세포의 용 해에 대 한 가장 저렴 하 고 가장 기술적으로 사소한 전략 있을 수 있습니다. 기계 중단 샘플 복구에 과제를 제시할 수 있습니다 하 고 여러 샘플을 처리 하는 데 적합 하지 않습니다. 기계 중단 샘플을 높은 압력 또는 초음파 주파수 보다 gentler입니다 하지만 높은 처리량 이며 비효율적인 세포의 용 해 하는 경향이 있다. 기계, 고압 균질 있으며 초음파 주파수의 중요 한 실험적인 한계는 전체 세포 구조의 통제 중단 세포, 후 모든 수성 셀 구성 요소가 혼합 되어 함께. 또한, 모든 셀 구획; 동시에 중단 하지 않습니다. 따라서, 일찍 lyse 구획의 내용을 늦게 lyse 구획의 내용 보다 더 긴 지속적인 파괴 세력 대상이 될 수 있습니다. 세포 분별 분리에 대 한 저렴 한, 기술적으로 간단 하 고, 효율적인 구획 기반 셀 내용의 고가의 장비 및 가혹한, 파괴적인 힘에 샘플 노출에 대 한 필요성을 피하고 있는 동안 수 있습니다.
가져온된 기판 및 잠재적으로 apo 단백질 reintroduced 홀로 단백질 세포, 다운스트림 착 색 인쇄기 또는 다른 정화 기술을 이전 하는 동안 다시 생성, SBP의 경우. 세포 동안 EDTA chelator의 포함 어디 단백질 정화의 첫 단계로 금속 선호도 불가능 EDTA 크로마토그래피 수 지에서 금속 스트립 것 이기 때문에 단백질15바인딩 방지 추가 장애물을 선물 한다. 간단 하 고 저렴 한 솔루션은 삼투성 충격, 셀 분류 차등 원심 분리 및 일반적인 실험실 시 약 주의깊게 기능 분석에 대 한 충분 한 단백질을 추출 하는 탐정을 사용. 삼투성 충격 분별 세포 격실을 분리 하는 삼투성 압력에 2 단계 변화를 활용 합니다. 첫째, 고 버퍼 원인 세포를 crenate 물 잎 각 셀 하 고 둘째, 소형 버퍼 인해 팽창으로 물 다시 각 셀에 셀. 신중 하 게 제어 함으로써 세포가 팽창 하는 얼마나 오래, 외부 막 수 수 선택적으로 lysed (때문에 들어오는 물에서 삼투성 압력의 상승), 따라서 그들의 내용을 버퍼에 비우는. 내부 막의 보존 하면 세포질 내용을 spheroplasts에서 유지 되 고 원심 분리에 의해 periplasmic 내용에서 쉽게 분리 됩니다.
YfeA는 polyspecific SBP 철, 망간, 아연 원자16바인딩 수입니다. 통합된 금속의 상대적 비율 성장, 중 금속 보완에 따라 변경 될 수 있습니다 그리고 아르곤 국립 연구소의 고급 광자 소스16에서 구할 수 있다 엑스레이 형광에 의해와 같은 분석. X 선 형광 수 있습니다 신속 하 게 금속에 대 한 필요 없이 광범위 한 어셈블리를 프로 파일링 수 사관 큰 또는 회절 품질 결정, 고 단백질 촉진 또는 배치할 솔루션에서 데이터를 수집도 있습니다.
X 선 형광 밝힐 수 있습니다 신속 하 게 예기치 않은 결과 같은,이 경우에, 기본 YfeA 기판 아연 되 고 아니라는 문서화 된 생리 기판 철 또는 망간16. X-선 산란 데이터를 수집 하기 전에 사용 하는 경우 x 선 형광 실험 설계, 예 금속 에너지 edge(s) 변칙 엑스레이 분산 데이터 수집을 위해 사용 하는 조사를 알릴 수 있습니다. 금속, x 선 형광의 관계 되는 풍부는 금속 결 석 인지 확인할 수도 있습니다 결정으로 유용한 샘플, apo 홀로 단백질에서 단백질을 포함 하 고 추정 금속 결정을 분리 하는 빠른 방법 제공 신호 강도 없이 시간이 걸리는 데이터 처리에 대 한 필요 합니다. 강한 금속 신호 샘플을 식별, 시 다중 파장 변칙 분산 (매드) 검사에 의해 변칙 엑스레이 분산 데이터 수집을 위해 사용 하는 정확한 파장을 확인할 수 있습니다.
이 상세한 프로토콜 새로운 경험 성공적으로 셀 분류를 수행 하 고 싱크 로트 론 beamline 하드웨어 총 금속 콘텐츠를 프로 파일링 하 고 금속-바인딩 단백질의 연구를의 효과적인 사용을 만들 수 있도록 위한 것입니다.
세포 분별 법 세포질 구획의 내용을 구체적으로 검색을 위한 유용한 도구 이며, 금속 원자와 같은 작은 분자는 물론 단백질 같은 고분자를 추출 하기 위한 유용한 도구가 될 수 있습니다. 그것은 그 세포 분류는 절대 기법 이며 혼합/물의 resuspension, 부 화 온도 및 보육 시간에 주의 하지 않고 경향이 오류가 있을 수 있습니다 지적 가치가 있다. 최소한의 액체로 세포에 따라서 무시할 수 분류 될 수 있습니다 불완전 한 혼합, 상 온에서 분별 두 막 세포질 내용, periplasmic 분수의 오염 결과의 급속 한 세포를 발생할 수 있습니다 및 연장된 보육 시간 또한 과도 한 세포에 따라서 분수 오염 발생할 수 있습니다. (내부 막 보존) 동안 효율적이 고 비교적 완전 한 외부 막 세포를 달성 하기 위한 합리적인 타협 당뇨 분별 버퍼에 얼음 20 분 부 화 이다. 또 다른 고려 사항은 떨고 또는 소용돌이 의해 가혹한 추출 추출 단백질 집계 되는 등의 품질을 손상 수 추출 방법입니다. 부드럽게와 같은 혼합 주걱, 반전 또는 피 펫 다운스트림 분석에 대 한 높은 품질의 재료를 유지 하 여 발음 하는 것이 좋습니다. 그림 1에 의해 입증으로 대리점 셀 분류에서 정화 가변 효율성 발생할 수 있습니다. 한 실험에서 YfeA의 추출된 periplasmic 콘텐츠 (그림 1C), 8%로 시작 하면서 또 다른 실험에서 YfeA periplasmic 콘텐츠 (그림 1D)의 17%로 시작. 이러한 차이의 반복된 사용 (추가 성장 매체에 EDTA Yfe 발기인의 모피 규제 등 기아 메커니즘에 의해 통제 하는 유전자의 표정을 증가 시킬 수 있습니다), 가변 식 조건 등 여러 가지 이유에서 발생할 수 있습니다 동결 영구 주식, 그리고 인간의 오류입니다. 보육 시간을 조정 하는 대신을 준비 하는 것이 좋습니다. Periplasm 분수에서 정화 음이온 교환 크로마 단계에서 선형 그라데이션 차입을 포함 하는 것이 좋습니다. 단계 그라데이션 차입은 차입 전략 모바일 단계 구성에서 사용 하는 개별 및 갑작스러운 변화 (즉., 0 mM NaCl, 50 mM NaCl, 150 mM NaCl, 등.). 선형 그라데이션 차입은 차입 전략 모바일에 점진적인 변화를 사용 하 여 (즉, 0 mM NaCl, 5 m m NaCl, 10 mM NaCl 등)구성 단계. 단계 기온 변화도 고정 단계에 대 한 다른 친 화력 있는 분자를 분리 하는 데 유용 하며 선형 그라데이션 차입 고정 단계에 대 한 비슷한 선호도가지고 분자 분리를 위한 유용 합니다. 태그로 없는 인공 정화 (고정 위상에 대 한 선호도 강화)에 독특한 단백질 종 풍부 셀 구획에서 단백질 정화의 경우 선형 그라데이션 차입 수 noninterest의 단백질을 분리 하는 것이 좋습니다. 관심사의 단백질으로 고정 단계를 비슷한 선호도 있다. 일반적으로, 순화 apo YfeA의 1-2 mg의 수확량의 내 생에서 YfeA을 표현 하는 문화의 각 리터에서 예상 된다 Y. pestis 발기인.
X 선 형광 하 신속 하 게 결정 샘플, 금속 콘텐츠 조사 것 그렇지 않으면 알 수 없는 예기치 않은 금속 관에 대 한 조사를 수 있도록 하는 기술입니다. EDTA는 느슨하게 연결 된 또는 자유 금속을 제거 하 고 분별 버퍼에 포함 된, 있지만 YfeA periplasm 분수에서 파생 된 일부 홀로 단백질을 포함할 수 있습니다. 금속 전송 동적 프로세스는, 아마도 홀로 단백질 콘텐츠는 여전히 기증 하지 YfeBCDE에 그것의 화물 YfeA에서 유래. 그것은 x-선 형광만 총 금속 콘텐츠를 측정 하는 금속 결정 격자에 정렬 또는 특히 단백질에 바인딩된 경우 나타내지 않습니다. 금속 결정 격자에 정렬 및 특히 단백질 분자를 바인딩할 경우를 확인 하려면 x 선 산란 데이터 수집 및 처리는 필요 합니다. 그럼에도 불구 하 고, x 선 형광 금속 오염 잔류 홀로 단백질 통합의 빠른 샘플 평가 할 수 있습니다. 싱크 로트 론 방사선 시간이 제한 됩니다 그리고 아니라 항상 모든 샘플에 x 선 산란 데이터 수집에 대 한 전략을 고안 하는 시간, 따라서 x 선 형광은 많은 결정을 검사 및 엑스레이 샘플에 대 한 우선 순위에 대 한 귀중 한 기술 분산 데이터를 수집 해야 합니다. 또한, x 선 형광 x-레이 diffract 하지 않을 수 있습니다 샘플에서 데이터 컬렉션을 수 있습니다. X 선 형광 데이터를 수집 하는 동안 때때로 신호 수 매우 약한 고 결과 스펙트럼 정보. 신호, x 선 형광 또는 미친 검색을 개선 하기 위해 노출 시간을 증가 또는 감소 하는 x 선 빔 감쇠를 고려 하십시오. 샘플 x 선 분산 데이터 수집을 식별 하면 것이 좋습니다 보다는 x 선 형광 및 미친 방사선 피해를 최소화, 데이터의 품질을 향상 검색 샘플의 다른 부분에 x 선 산란 데이터를 수집 하 컬렉션, 비정상적인 신호 감소에 대 한 가능성을 최소화 하는 고.
방사선 추적기의 탐지 nanomolar 수량 자료의 또는, 요구 하 고 분자 추적 요원으로 이러한 추적기를 사용 하 여 세포질 과정의 간단 하 고 매우 중요 한 메서드를 제공 합니다. 위에서 설명한 radiometal 분석 결과 총 금속 통풍 관, 세포질 구획으로 통풍 관의 속도 분포를 결정 하기 위해 사용할 수 있습니다. 실제로, 각 데이터 시간 포인트 필요 합니다 40 분 분류를; 그러나, 각 시간 지점에 도달 하면 세포는 즉시 수송과 고 높은 소금 버퍼 (그림 5단계 1)에서 알을 품을. (그림 53 단계) 후, 폐기 높은 소금 버퍼 (그림 51 단계), 언론과 periplasmic 및 세포질 분수의 Radiometal 측정 표시 높은 소금 버퍼 외피는 성공적으로 모두 제거 남은 시간 포인트 도달 후 초기 원심 분리에 따라 서 성 되지 않은 무료 금속. 또한 추가 나머지 연결 되지 않은 무료 금속을 제거 하는 높은 소금 버퍼에 부 화 후 초기 원심 분리는 연결 되지 않은 무료, 금속과 원심 분리의 대부분 (80%까지)를 제거 합니다. 어떤 느린 연결 되지 않은 무료 금속 하지 크게 금속 전송 40 분 분류 하는 동안 영향을 미칠 전망 이다. 세포내 금속 전송에 40 분 분별의 영향 신중한 데이터 해석에 대 한 또 다른 고려 사항은 이다. 사실상 전체 분류 프로토콜 얼음, 단계 사이 30 초 원심 분리를 제외 하 고 발생합니다. 전송 시간 과정 실험 그 금속 전송20,,2122; 되어있는 셀 4 ° C에서 유지 표명 금속 따라서, 실험 얼음 때문에, 40 분 분류는 하지 크게 세포질의 periplasm 금속 수준의 증대와 금속 수준의 셀 했다 시간 점의 대표 될 것으로 예상 된다 처음 centrifugalized.
다른 세포질 격실에서 상대 통풍 관의 결정은 뿐만 아니라 더 메커니즘의 분자 정보를 조사 하는 탐정을 활성화 XFS 데이터, 기판의 생리 적 특성을 확실 하 게 도움이 수 있습니다. 예를 들어 radiometal 통풍 관 실험 유전 mutagenesis의 추가 제공 키 기능 잔류물을 강화 하는 직접적인 방법 또는 분자에 관여 기판 전송. Radiometal 통풍 관 실험 및 분석의 장점은 신속한 처리, 높은 처리량, 높은 재현성 및 성장 조건과 유전적 구조를 비교 하는 실험의 병렬화를 포함 합니다.
The authors have nothing to disclose.
데이터 전체 또는 부분 국립 암 연구소 (ACB-12002)과 국립 연구소의 종합 의료 과학 (AGM-12006)에서 연방 자금 자금 하고있다 GM/CA@APS에서 또한 수집 했다. 이 연구 자원 고급 광자 소스 (AP)의 사용, 계약 번호 아래 Argonne 국립 연구소에 의해 과학의 암컷 사무실에는 미국 부서의 에너지 (도우) 사무실의 과학 사용자 시설 운영 드-AC02-06CH11357입니다. 고급 광자 소스 사용 에너지의 미국 학과, 과학의 사무실, 사무실의 기본적인 에너지 과학, 계약 번호 아래에 의해 지원 되었다 W-31-109-잉글랜드-38.
우리는 질량 분석 분석에 그들의 지원에 대 한 인정 UAB 종합 암 센터-질량 분석/Proteomics 공유 시설 (P30CA13148-38) 싶습니다.
C.D.R.는 버밍엄 사무실의 다양성, 자본과 포함에서 알라바 마의 대학에서 교부 금에 의해 지원 되었다. L.L.R.는 버밍엄에서 알라바 마의 대학 방사선학 부에 의해 지원 되었다. 과학, 에너지의 동위 원소 프로그램 지원 52만 생산 하 고 아래 A.V.F.M. DESC0015773를 부여 합니다.
Chemicals | |||
Polyethylene glycol 4000, EMD Millipore | Fisher | M1097270100 | |
Ampicillin Sodium Salt (Crystalline Powder) | Fisher | BP1760-5 | |
AMRESCO M9 Medium Broth | Fisher | NC9688886 | |
Bis-Tris, Fisher BioReagents | Fisher | BP301-100 | |
Calcium Chloride Dihydrate (Certified ACS) | Fisher | C79-500 | |
Dextrose (D-Glucose) Anhydrous (Granular Powder/Certified ACS) | Fisher | D16-500 | |
Ethylenediaminetetraacetic Acid, Disodium Salt Dihydrate (Crystalline/Certified ACS) | Fisher | S311-100 | |
Fisher BioReagents Microbiology Media: LB Broth, Miller | Fisher | BP1426-500 | |
Magnesium Sulfate Heptahydrate (Crystalline/Certified ACS) | Fisher | M63-500 | |
Sodium Azide, White Powder | Fisher | BP922I-500 | |
Sodium Chloride (Crystalline/Certified ACS) | Fisher | S271-500 | |
Sodium Phosphate Dibasic Anhydrous (Granular or Powder/Certified ACS) | Fisher | S374-500 | |
Tris Hydrochloride (Small White Flakes/Molecular Biology) | Fisher | BP153-500 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Equipment | |||
Cryschem Plate | Hampton | HR3-158 | |
EMD Millipore Amicon Ultra-15 Centrifugal Filter Units | Fisher | UFC903024 | |
EMD Millipore Millex Sterile Syringe Filters: Durapore PVFD Membrane | Fisher | SLHV013SL | |
GE Healthcare HiLoad 26/600 Superdex 200 pg | Fisher | 28-9893-36 | |
GE Healthcare HiTrap IEX HP Prepacked Columns | Fisher | 17-1154-01 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Cells | |||
Agilent Technologies BL21-CODON PLUS RIPL CELLS | Fisher | 230280 |