Summary

Het MPLEx-Protocol voor Multi-dienst Analyses van bodemmonsters

Published: May 30, 2018
doi:

Summary

Een protocol wordt gepresenteerd voor gelijktijdig metabolieten, eiwitten en lipiden extraheren uit een één bodemmonster, waardoor deelmonster bereidingstijden en multi-dienst spectrometrische analyse van monsters met een beperkte hoeveelheden inschakelen.

Abstract

De Spectrometrie van de massa (MS)-gebaseerde geïntegreerde metaproteomic, metabolomic en lipidomic (multi-dienst) studies zijn het omzetten van ons vermogen om te begrijpen en karakteriseren van microbiële gemeenschappen in milieu en biologische systemen. Deze metingen zijn zelfs inschakelen uitgebreide analyses van de microbiële gemeenschappen complexe bodem, dat de meest zijn complexe microbiële systemen bekend tot op heden. Multi-dienst analyses hebben echter monster voorbereiding uitdagingen, aangezien afzonderlijke extracties zijn meestal nodig voor elk onderzoek van de dienst, daardoor aanzienlijk versterken de voorbereidingstijd en de hoeveelheid monster nodig. Om deze beperking, is een 3-in-1-methode voor de gelijktijdige winning van metabolieten, eiwitten en lipiden (MPLEx) uit de dezelfde bodemmonster gemaakt door aanpassing van een aanpak op basis van oplosmiddel. Dit protocol MPLEx heeft bewezen om zowel eenvoudig en robuust voor vele types van de steekproef, zelfs wanneer gebruikt voor beperkte hoeveelheden van complexe bodemmonsters. De MPLEx methode ingeschakeld ook sterk de snelle multi-dienst metingen die nodig zijn voor een beter begrip van de leden van elke microbiële Gemeenschap, tijdens het evalueren van de veranderingen die plaatsvinden op biologische en ecologische verstoringen te krijgen.

Introduction

Evaluatie van bodem microbiële gemeenschappen heeft belangrijke implicaties voor het begrijpen van carbon fiets- en klimaat-verandering. Recente studies hebben echter gewezen op problemen, zoals het ontbreken van gesequenceerd genomen voor microbiota in verschillende bodemtypes en de onbekende functie van veel van de eiwitten opgespoord. Het resultaat van deze uitdagingen als gevolg van de bodem wordt van de meest complexe microbiële Gemeenschap bekend tot op heden1,2,3. Multi-dienst analyses, die resultaten van metagenomic, metatranscriptomic, metaproteomic, metabolomic en lipidomic studies combineren, werden onlangs geïmplementeerd in talrijke studies van de bodem een groter inzicht in de microben aanwezig, terwijl uitgebreide informatie over de moleculaire veranderingen die plaatsvinden als gevolg van milieu verstoringen1,4,5te verkrijgen. Een uitdaging met multi-dienst studies is dat de Spectrometrie van de massa (MS)-gebaseerde metaproteomic, metabolomic en lipidomic metingen vergen doorgaans een specifieke extractieproces voor elke dienst als MS compatibel6,7 , 8 , 9. deze precieze procedures maken de uitvoering ervan bijzonder moeilijk of niet onmogelijk wanneer slechts een beperkte hoeveelheid van het monster beschikbaar is. Deze uitdagingen hebben gevraagd ons te onderzoeken van een gelijktijdige metaboliet, eiwitten en lipiden (MPLEx) extractiemethode staat met behulp van kleinere steekproef volumes of massa’s, verbetering van de nauwkeurigheid en snellere staalvoorbereiding voor alle drie analyses 10. tot op heden zijn er geen alternatieve bodem extractie procedures die al deze doelen kunnen bereiken.

Opdat de globale multi-dienst analyses van een één bodemmonster, was een organische oplosmiddelen extractie-protocol gebaseerd op chloroform, methanol en water scheidingen benutte10. Deze methode werd oorspronkelijk ontwikkeld voor totale lipide extracties9,11 en meer recentelijk is gewijzigd voor de gelijktijdige winning van metabolieten, eiwitten en lipiden uit een monster12,13 ,14,15,16,17,18,19,20,21,22, 23,24,25,26,27,28,29,30, waardoor minder hoeveelheid monster en experimentele variabiliteit10. In het MPLEx protocol is chloroform niet mengbaar zijn met water, die de basis voor de triphasic chemische scheiding van monster bestanddelen in verschillende fracties vormt. De top van de waterige fase bevat daarom de hydrofiele metabolieten, gevolgd door een eiwit-schijf, waarna een lipide-laag in de bodem chloroformfase (Figuur 1). Wanneer MPLEx wordt toegepast op de meeste bodems, afvaldeeltjes hoopt zich aan de onderkant van de bemonstering buizen en kan worden verwijderd nadat alle lagen worden verzameld. Elk bodemtype kan verschillen, echter, en in zeer organische bodem zoals turf, het puin van de bodem blijft in de middenlaag en niet vallen aan de onderkant van de buis van de bemonstering. MPLEx biedt verschillende voordelen wanneer meerdere molecuul isoleren uit hetzelfde monster soorten zoals 1) kleinere hoeveelheden van het monster kunnen worden gebruikt voor multi-dienst analyses, 2) multi-dienst extracties uit de dezelfde daling van steekproef algemeen experimentele variabiliteit, en 3) grotere aantallen monsters kan veel sneller worden voorbereid voor hogere doorvoer studies10. Samen deze voordelen zijn van vitaal belang voor het verstrekken van betere meting vermogens voor de evaluatie van bodemmonsters en hun complexe microbiële gemeenschappen.

Protocol

Opmerking: Zeer natte bodems kunnen worden gelyofiliseerd voorafgaand aan de winning zonder nadeel voor de doeltreffendheid van de extractie. Natte bodem kan ook worden gebruikt maar moet worden overwogen bij toevoegen van reagentia op specifieke verhoudingen. Opmerking: Het is aanbevolen om het gebruik van 20 g droge bodem gewicht per extractie, die moet worden verdeeld tussen twee buizen van 50 mL (maximaal 10 g bodemmonster per tube 50 mL). Extracties kunnen worden geschaald, omhoog of omla…

Representative Results

Wanneer het MPLEx-protocol is gebruikt voor het extraheren van moleculen uit Kansas inheemse prairie bodem (een Mollisol-bodem), de drievoudige analyses resultaten opgeleverd voor 3376 peptiden, 105 lipiden en 102 polar metabolieten (alle unieke id’s). Terwijl het MPLEx protocol gevestigde voor algemene extractie van lipiden en metabolieten12,13,14,15,</sup…

Discussion

Het is belangrijk op te merken dat niet alle laboratoria dezelfde beschikbare apparatuur hebben zal, zodat bepaalde methoden, bijvoorbeeld de lysis stap, kunnen worden aangepast. We gebruiken hier vortexing en sonicating, maar het gebruik van een groot 50 mL kraal beater zou werken. Als een lyophilizer met een verzamelaar temperatuur staat-105 ° C niet beschikbaar is, kunnen dan monsters worden gedroogd onder een stikstof-stream. Ook bodemtypes variëren sterk en zand, silt, klei, Veen en leem (enz.) kunnen opn…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs bedank Nathan Johnson voor zijn hulp bij de voorbereiding van de cijfers. Dit onderzoek werd gesteund door de Pan-omics-programma dat wordt gefinancierd door het Amerikaanse Department of Energy Office van biologische en milieuonderzoek (Genomic Science Program), de Microbiomes in overgang (MinT) laboratorium gericht onderzoek ontwikkeling Initiatief op de Pacific Northwest National Laboratory, evenals de nationale instituten van gezondheid National Institute of Environmental Health Sciences (R01 ES022190) en NIH (P42 ES027704). KEBJ bedank R21 HD084788 voor financiële steun aan de ontwikkeling en validering van nieuwe multi-dienst extractie technieken. Dit werk werd uitgevoerd in de W. R. Wiley milieu Molecular Sciences Laboratory (EMSL), een faciliteit nationale wetenschappelijke gebruiker DOE op de Pacific Northwest National Laboratory (PNNL). PNNL is een multi programma nationaal laboratorium Exploitatiedoor Battelle voor het DOE onder Contract DE-AC06-76RL01830.

Materials

Chloroform Sigma-Aldrich 650498 Stored at -20°C !Caution chloroform has acute potential health effects, skin irritation and possible chemical burns, irritation to the respiratory system, may affect the kidneys, liver, heart. Wear suitable protective glasses, clothing and gloves, work in a fume hood.
Methanol Sigma-Aldrich 34860 Stored at -20°C !Caution Methanol may cause respiratory tract, skin and eye irritation, may damage the nerves, kidneys and liver. Wear suitable protective glasses, clothing and gloves, work in a fume hood.
Purified water from Millipore Milli-Q Water purification system.
Sodium dodecyl sulfate Sigma-Aldrich L6026 !Caution SDS causes acute toxicity and is flammable. It is a skin, eye and airway irritant. Wear gloves and safety glasses.
Soil protein extraction kit MoBio, NoviPure Soil Protein Extraction Kit, Qiagen 30000-20
DL-dithiothreitol Sigma-Aldrich 43815
1M Trizma HCL Sigma-Aldrich T2694
Trichloroacetic acid Sigma-Aldrich T0699 !Caution TCA is caustic, toxic and may cause skin burns. Wear gloves and safety glasses.
Acetone Sigma-Aldrich 650501 Stored at -20°C !Caution Acetone may cause respiratory tract and skin and eye irritation. Flammable liquid and vapor. Wear safety glasses gloves and a lab coat, work in a fume hood.
Urea Sigma-Aldrich 208884 !Caution Urea is an eye and skin irritant, use gloves and safety glasses
Ammonium bicarbonate Fluka 09830
Trypsin Promega V528A 20µg vials
Bicinchoninic acid protein assay kit Pierce 23227
Ammonium Formate Sigma-Aldrich 09735
Acetonitrile Sigma-Aldrich 34998 !Caution Acetonitrile is a skin and eye irritant. Highly flammable. Wear gloves and safety glasses. Work in a fume hood.
Trifluoroacetic acid Sigma-Aldrich T6508 !Caution TFA is extremely hazardous in case of skin contact, eye contact, ingestion and inhalation. May produce tissue damage particularly on mucous membranes of eyes, mouth and respiratory tract. Skin contact may produce burns. Wear gloves, lab coat, safety glasses and work in a fume hood.
Methoxyamine hydrochloride Sigma-Aldrich 226904 !Caution Methoxyamine hydrochloride causes severe burns and serious damage to eyes, may cause sensitization by skin contact. Wear safety glasses, gloves and lab coat, work in a fume hood.
Pyridine Sigma-Aldrich 270970 !Caution Pyridine can cause skin and eye irritation, central nervous system depression. Vapor may cause flash fire. Wear safety glasses, gloves and lab coat, work in a fume hood.
N-Methyl-N-(trimethylsilyl)trifluoroacetamide with 1% trimethylchlorosilane Sigma-Aldrich 69478 !Caution MSTFA + 1% TMCS can cause skin corrosion, serious eye damage and specific target organ toxicity. Flammable liquid and vapor. Wear safety glasses, gloves and lab coat, work in a fume hood.
Potassium chloride Sigma-Aldrich P9541
Milli-Q water purification system Millipore model MPGP04001
Vortex Scientific Industries SI-0236 Vortex Genie 2
Probe sonicator FisherBrand model FB505
Refrigerated centrifuge Eppendorf model 5810R
50mL tube swinging bucket rotor Eppendorf A-4-44
50mL fixed angle rotor Eppendorf FA-45-6-30
Balance OHAUS model V22PWE150IT
Serological pipette controller Eppendorf 12-654-100
10mL, 25mL glass serological pipettes FisherBrand 13-678-27F, 13-678-36D
Thermomixer with Thermotop Eppendorf 5382000015, 5308000003
0.9 – 2.0 mm blend stainless steel beads NextAdvance SSB14B
0.15 mm garnet beads MoBio 13122-500
Magnetic stir plate FisherBrand 11-100-16SH
Magnetic stir bar FisherBrand 14512130
pH paper strips, pH range 0–14 FisherBrand M95903
15mL, 50mL conical polypropylene centrifuge tube Genesee Scientific 21-103 21-108 chloroform compatible
50mL vortex attachment MoBio 13000-V1-50
Ice bucket FisherBrand 02-591-44
27.25x70mm glass vials FisherBrand 03-339-22K
Breathe Easier plate membranes Midwest Scientific BERM-2000
Alcohol wipes Diversified Biotech BPWP-1000
Heater shaker incubator Benchmark, Incu-Shaker Mini
Analog rotisserie tube rotator SoCal BioMed, LLC 82422001
Filter-Aided-Sample-Prep kit FASP; Expedeon 44250
Microplate reader Biotek, EPOCH
-20 Degree Celsius Freezer Fisher 13986149
-80 Degree Celsius Freezer Stirling Ultracold SU78OUE
Q-Exactive ion trap mass spectrometer Thermo Scientific
Agilent 7890A gas chromatograph coupled with a single quadrupole 5975C mass spectrometer Agilent Technologies, Inc.
LTQ-Orbitrap Velo Thermo Scientific
Waters NanoEquityTM UPLC system Millford, MA
250mL media bottle FisherBrand 1395-250
Waters vial Waters 186002805
Glass MS sample vial and inserts MicroSolv 9502S-WCV, 9502S-02ND
Glass HPLC vial and snap caps MicroSolv 9512C-0DCV, 9502C-10C-B
HPLC 96-well plate Agilent 5042-6454
Large glass vial 27.25x70mm FisherBrand 03-339-22K
Lyophilizer Labconco 7934021
Polished stainless steel flat head spatula Spoonula; FisherBrand 14-375-10
Kim wipes Kimberly-Clark 34721
XBridge C18, 250×4.6 mm, 5 μM with 4.6×20 mm guard column Waters 186003117, 186003064
Agilent 1100 series HPLC system Agilent Technologies G1380-90000
1.7mL centrifuge tube Sorenson 11700
Hamilton Glass Syringes, 5mL, 50µL and 250µL Hamilton 81517, 80975, 81175
Pasteur Pipettes FisherBrand 13-678-20A
Pasteur Pipette Bulbs Sigma-Aldrich Z111597
Bath Sonicator Branson 1800 Ultrasonic Cleaner
Vacuum Centrifuge Labconco Centrivap Acid-Resistant Concentrator System
MicroSpin Columns, C18 Silica The Nest Group SEM SS18V

References

  1. Hultman, J., et al. Multi-omics of permafrost, active layer and thermokarst bog soil microbiomes. Nature. 521, 208-212 (2015).
  2. White, R. A., et al. Moleculo long-read sequencing facilitates assembly and genomic binning from complex soil metagenomes. mSystems. 1, (2016).
  3. White, R. A., Callister, S. J., Moore, R. J., Baker, E. S., Jansson, J. K. The past, present and future of microbiome analyses. Nat Protoc. 11, 4-8 (2016).
  4. Ritchie, M. D., Holzinger, E. R., Li, R., Pendergrass, S. A., Kim, D. Methods of integrating data to uncover genotype-phenotype interactions. Nat Rev Genet. 16, 85-97 (2015).
  5. Jansson, J. K., Baker, E. S. A multi-omic future for microbiome studies. Nat Microbiol. 1, (2016).
  6. Domon, B., Aebersold, R. Options and considerations when selecting a quantitative proteomics strategy. Nat Biotechnol. 28, 710-721 (2010).
  7. Marx, V. Targeted proteomics. Nat Methods. 10, 19-22 (2013).
  8. Roberts, L. D., Souza, A. L., Gerszten, R. E., Clish, C. B. Targeted metabolomics. Curr Protoc Mol Biol. , (2012).
  9. Folch, J., Lees, M., Sloane Stanley, G. H. A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues. J Biol Chem. 226, 497-509 (1957).
  10. Nakayasu, E. S., et al. MPLEx: a Robust and Universal Protocol for Single-Sample Integrative Proteomic, Metabolomic, and Lipidomic Analyses. mSystems. 1, (2016).
  11. Bligh, E. G., Dyer, W. J. A rapid method of total lipid extraction and purification. Can J Biochem Physiol. 37, 911-917 (1959).
  12. Pomraning, K. R., et al. Multi-omics analysis reveals regulators of the response to nitrogen limitation in Yarrowia lipolytica. BMC Genomics. 17, 138 (2016).
  13. Tisoncik-Go, J., et al. Integrated Omics Analysis of Pathogenic Host Responses during Pandemic H1N1 Influenza Virus Infection: The Crucial Role of Lipid Metabolism. Cell Host Microbe. 19, 254-266 (2016).
  14. Kyle, J. E., et al. Uncovering biologically significant lipid isomers with liquid chromatography, ion mobility spectrometry and mass spectrometry. Analyst. 141, 1649-1659 (2016).
  15. Lovelace, E. S., et al. Silymarin Suppresses Cellular inflammation by inducing reparative stress signaling. J Nat Prod. 78, 1990-2000 (1990).
  16. Kim, Y. M., et al. Diel metabolomics analysis of a hot spring chlorophototrophic microbial mat leads to new hypotheses of community member metabolisms. Front Microbiol. 6, 209 (2015).
  17. Pomraning, K. R., et al. Comprehensive Metabolomic, Lipidomic and microscopic profiling of Yarrowia lipolytica during lipid accumulation identifies targets for increased lipogenesis. PLoS One. 10, e0123188 (2015).
  18. Huang, E. L., et al. The fungus gardens of leaf-cutter ants undergo a distinct physiological transition during biomass degradation. Environ Microbiol Rep. 6, 389-395 (2014).
  19. Deatherage Kaiser, B. L., et al. A Multi-Omic View of Host-Pathogen-Commensal Interplay in Salmonella-Mediated Intestinal Infection. PLoS One. 8, e67155 (2013).
  20. Kim, Y. M., et al. Salmonella modulates metabolism during growth under conditions that induce expression of virulence genes. Mol Biosyst. 9, 1522-1534 (2013).
  21. Ansong, C., et al. A multi-omic systems approach to elucidating Yersinia virulence mechanisms. Mol Biosyst. 9, 44-54 (2013).
  22. Bordbar, A., et al. Model-driven multi-omic data analysis elucidates metabolic immunomodulators of macrophage activation. Mol Syst Biol. 8, 558 (2012).
  23. Hu, Z. P., et al. Metabolomic response of human skin tissue to low dose ionizing radiation. Mol Biosyst. 8, 1979-1986 (2012).
  24. Perera, R., et al. Dengue virus infection perturbs lipid homeostasis in infected mosquito cells. PLoS Pathog. 8, e1002584 (2012).
  25. Gao, X., et al. A reversed-phase capillary ultra-performance liquid chromatography-mass spectrometry (UPLC-MS) method for comprehensive top-down/bottom-up lipid profiling. Anal Bioanal Chem. 402, 2923-2933 (2012).
  26. Sorensen, C. M., et al. Perturbations in the lipid profile of individuals with newly diagnosed type 1 diabetes mellitus: Lipidomics analysis of a Diabetes Antibody Standardization Program sample subset. Clin Biochem. 43, 948-956 (2010).
  27. Diamond, D. L., et al. Temporal proteome and lipidome profiles reveal hepatitis C virus-associated reprogramming of hepatocellular metabolism and bioenergetics. PLoS Pathog. 6, e1000719 (2010).
  28. Alquier, T., et al. Deletion of GPR40 impairs glucose-induced insulin secretion in vivo in mice without affecting intracellular fuel metabolism in islets. Diabetes. 58, 2607-2615 (2009).
  29. Ding, J., et al. Application of the accurate mass and time tag approach in studies of the human blood lipidome. J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci. 871, 243-252 (2008).
  30. Rasmussen, A. L., et al. Systems virology identifies a mitochondrial fatty acid oxidation enzyme, dodecenoyl coenzyme A delta isomerase, required for hepatitis C virus replication and likely pathogenesis. J Virol. 85, 11646-11654 (2011).
  31. Manza, L. L., Stamer, S. L., Ham, A. J., Codreanu, S. G., Liebler, D. C. Sample preparation and digestion for proteomic analyses using spin filters. Proteomics. 5, 1742-1745 (2005).
  32. Wisniewski, J. R., Zougman, A., Nagaraj, N., Mann, M. Universal sample preparation method for proteome analysis. Nat Methods. 6, 359-362 (2009).
  33. Zhou, J. Y., et al. Simple sodium dodecyl sulfate-assisted sample preparation method for LC-MS-based proteomics applications. Anal Chem. 84, 2862-2867 (2012).
  34. Anderson, J. C., et al. Decreased abundance of type III secretion system-inducing signals in Arabidopsis mkp1 enhances resistance against Pseudomonas syringae. Proc Natl Acad Sci U S A. 111, 6846-6851 (2014).
  35. Chourey, K., et al. Direct cellular lysis/protein extraction protocol for soil metaproteomics. J Proteome Res. 9, 6615-6622 (2010).
  36. Kim, S., Gupta, N., Pevzner, P. A. Spectral probabilities and generating functions of tandem mass spectra: a strike against decoy databases. J Proteome Res. 7, 3354-3363 (2008).
  37. Kim, S., Pevzner, P. A. MS-GF+ makes progress towards a universal database search tool for proteomics. Nat Commun. 5, 5277 (2014).
  38. Cole, J. K., et al. Phototrophic biofilm assembly in microbial-mat-derived unicyanobacterial consortia: Model systems for the study of autotroph-heterotroph interactions. Front Microbiol. 5, (2014).
  39. Isaacson, T., et al. Sample extraction techniques for enhanced proteomic analysis of plant tissues. Nat Protoc. 1, 769-774 (2006).
check_url/57343?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Nicora, C. D., Burnum-Johnson, K. E., Nakayasu, E. S., Casey, C. P., White III, R. A., Roy Chowdhury, T., Kyle, J. E., Kim, Y., Smith, R. D., Metz, T. O., Jansson, J. K., Baker, E. S. The MPLEx Protocol for Multi-omic Analyses of Soil Samples. J. Vis. Exp. (135), e57343, doi:10.3791/57343 (2018).

View Video