Summary

RNA 干渉法の活用: ゴキブリのリポソーム キャリアで二本鎖 RNA の経口デリバリー

Published: May 01, 2018
doi:

Summary

この原稿は、リポソームにカプセル化された二本鎖 RNA の経口摂取によってドイツのゴキブリの中腸における遺伝子発現の減少を示しています。

Abstract

RNA 干渉 (RNAi) 多数の遺伝子の生物学的機能を暴くため広く用いられてきた、重要な遺伝子発現の中断動作害虫コントロール ツールとして想定されました。二本鎖 RNA (dsRNA) を正常に配信のインジェクション、給餌と、浸漬など、さまざまな方法が報告されている dsRNA の経口デリバリーによる RNAi の効率は非常に異なる昆虫グループ間で可変。チャバネゴキブリチャバネゴキブリは、以前発表された多くの研究で示されている dsRNA の注入に非常に敏感。本研究では、リポソーム キャリアとカプセル化された dsRNA が腸ジュースで dsRNA の劣化を遅らせるに十分であることを示す方法について説明します。とりわけ、大幅リポソームによってカプセル化された dsRNA の連続的供給、中腸におけるチューブリンの発現を減少させる、ゴキブリの死をもたらした。結論としては、定式化と核酸に対して dsRNA を保護する dsRNA リポプレックスの利用かもしれない害虫制御のための RNAi の実用的な使用、将来的に。

Introduction

RNAi は、多くの真核生物1の dsRNA の分子によってトリガーされる転写後サイレンシング経路の機構を通じてノックダウン遺伝子発現する効果的な方法として実証されています。過去の研究では、RNAi オゾン注入を介して特定の遺伝子発現および/または昆虫2,3のさまざまな分類群の dsRNA の供給によって動作する開発から遺伝子の機能を研究するための有用なツールとなっています。特異性と破壊効果の頑健性のため、RNAi のアプリケーションは現在害虫制御管理45のための潜在的な戦略として検討されています。ただし、RNAi の効率は昆虫種間対象別の遺伝子と配信方法によって異なります。証拠の成長するボディは、リボヌクレアーゼによる劣化は、dsRNA の不安定性 RNAi5,6の限られた有効性の重要な要因であることを示唆しています。例えば、 Manduca sextaの RNAi の感度が低いは、体液混合 dsRNA が 1 時間7内ですぐに劣化したという事実によって説明されています。同様に、効率的に摂取された dsRNA が低下する、中腸でアルカリ性の核酸分解酵素の存在の異なる昆虫8,9,10で RNAi 効率が低い相関が強い。

DsRNA の口頭配達は害虫制御戦略の RNAi のアプリケーションの特に興味深いですが中腸における核酸による dsRNA の劣化を遅らせる方法はまだ開発されていない、有効なことを確認する可能性のあるだろうRNAi を介して供給します。ただし、dsRNA、カイコ例えば50 μ g の大量の餌やイナゴ種で 8 日間 (合計 8 dsRNA μ g)、継続的に供給で dsRNA の口頭配達する RNAi の応答が報告されています。チャバネゴキブリ germinicaチャバネゴキブリが dsRNA11,12,13,14、注入による RNAi に敏感を介して供給 dsRNA に敏感ではないです。最近では、林(2017) は dsRNA カプセルこと成功した rnai ノックダウンするリポソーム キャリア結果とα-チューブリン遺伝子発現15チャバネゴキブリの中腸とトリガー有意な死亡率を示しています。中腸における dsRNA の劣化は、口腔の RNAi のための制限要因は、リポソーム キャリア劣化は、腸内で強いヌクレアーゼ活動とその他の昆虫に適用が容易ですから dsRNA を保護する手段として役割を果たします。注特定のトランスフェクション試薬を選ぶ理由の現在のプロトコルのリポソーム キャリアはそれは毒性が少なく、昆虫の細胞ラインの transfection のためテストされていますを使いました (材料の表を参照) によると、節してください。Gharaviの異なるリポソーム トランスフェクション システムとの比較によって(2013)16、株小さい干渉の RNA (siRNA) の効率はおよそこれと他の昆虫の17,18 dsRNA 配信システムに使用されている他の市販システム間で同じ.さらに、私たちの供給法は各ゴキブリで dsRNA の適切な量を摂取し、結果が得られる堅牢で確認をように十分注意してください。要約すると、議定書と結果を示す、dsRNA リポプレックスを使用して dsRNA の安定性を向上させる将来的に害虫駆除のための有望なアプローチである、RNAi の戦略の口頭配達のデザインへの扉を開きます。

Protocol

1 合成と dsRNA の準備 標的遺伝子の 3′ 非翻訳領域の dsRNA のターゲット サイトを識別します。Α-チューブリン (浴槽) 遺伝子をターゲットに、dsTub を使用 (GenBank 受入番号: KX228233) と dsEGFP のシーケンスから否定的な dsRNA のコントロールは、強化された緑色蛍光タンパク質 (EGFP;GenBank の受入番号: LC311024)。 T7 プロモーター配列を含む遺伝子特定のプライマーで dsRNA テンプレートを?…

Representative Results

DsRNA の経口配信用プロトコルの簡易方式はで示した図 1、dsRNA リポプレックスの準備のため、主要な手順が表示されます。 チャバネゴキブリ、dsTub リポプレックス腸ジュースで培養を行った前のヴィヴォアッセイおよび dsRNA の整合性の中腸ジュースの dsRNA の劣化にリポソーム キャリア…

Discussion

このプロトコルは、ドイツのゴキブリの中腸ジュースのリボヌクレアーゼ消化に対する保護を含む dsRNA リポプレックスの口頭配達を通じて効果的な RNAi のメソッドを示します。様々 な昆虫の種の他の研究のように、dsRNA8,9,10の劣化による dsRNA の口頭配達を通じて貧しい RNAi 効果がほとんどを占めています。このプロトコ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

本研究は台湾 (省の科学と技術、最も 100-2923-B-002-002-MY3、H.J.L.、106-2313-B-002-011-MY3) からの助成金によって支えられたチェコ共和国 (南ボヘミア州庁大学 GAJU 付与 065/2017/P Y.H.L) 付与、およびスペイン (スペイン経済省と競争力、CGL2012 36251 と CGL2015 64727 P コドーピング、およびカタロニアの政府への許可を付与 2014 SGR 619 コドーピングに);それはまた経済と地域開発 (コドーピング フェダーイン ・資金) の欧州基金から助成を受けた。

Materials

GenJe Plus DNA in vitro Transfection reagent SignaGen SL100499 for lipoplexes preparation
Blend Taq plus TOYOBO  BTQ-201 for PCR
Fast SYBR Green Master Mix ABI  4385612 for qPCR
FirstChoice RLM-RACE Kit Invitrogen AM1700 for 3' UTR identification 
MEGAscript T7 Transcription Kit Invitrogen AMB13345 for dsRNA synthesis
TURBO DNase Invitrogen AM2239 remove DNA template from dsRNA
TRIzol Invitrogen 15596018 for dsRNA or total RNA extraction
RQ1 RNase-Free Dnase Promega M6101 remove DNA template from total RNA 
chloroform  Sigma-Aldrich C2432 for dsRNA or total RNA extraction
2-Propanol Sigma-Aldrich I9516 for dsRNA or total RNA extraction
ethanol Sigma-Aldrich 24102 for dsRNA or total RNA extraction
Diethyl pyrocarbonate, DEPC Sigma-Aldrich D5758 for RNase free water preparation
glucose solution Sigma-Aldrich G3285 for lipoplexes preparation
Sodium chloride, NaCl Sigma-Aldrich S7653 insect saline buffer formula
Potassium chloride, KCl Sigma-Aldrich P9333 insect saline buffer formula
Calcium chloride, CaCl2 Sigma-Aldrich C1016 insect saline buffer formula
Magnesium chloride hexahydrate, MgCl2.6H2O Sigma-Aldrich M2670 insect saline buffer formula
EGTA  Sigma-Aldrich E3889 enzyme inhibitor 
dissecting scissor F.S.T. cockroach dissection
fine tweezers F.S.T. cockroach dissection
flexible tweezer F.S.T. cockroach holding 
pipetman RAININ P10 sample preparation
microcentrifuge tube Axygen MCT175C, PCR02C sample preparation
pipette tip  Axygen sample preparation
vortexter Digisystem vm1000 sample preparation
Minispin centrifuge The Gruffin Group GMC 206 for liquid spin down 
Centrifuge ALC PK121R sample preparation
pH meter  JENCO 6071 for pH adjust
micro-volume spectrophotometer Quawell Q3000 nucleic acid quantitative
PCR Thermal cycler ABI  2720 for template PCR or  dsRNA synthesis incubation 
quantitative real-time PCR ABI  StepOne plus gene expression quantitative
Centrifugal Vacuum Concentrators eppendorf 5301 for dsRNA or total RNA extraction
Multipette  eppendorf xstream for real-time PCR sample loading 
Agarose I amresco 0710 for nucleic acid electrophoresis
tub gene specfifc forward preimer tri-I biotech GGG ACA AGC CGG AGT GCA GA
tub gene specfifc reverse preimer tri-I biotech TCC TGC TCC TGT CTC GCT GA
dsTub template forward primer tri-I biotech TAA TAC GAC TCA CTA TAG GGA CAA GCC GGA GTG CAG 
dsTub template reverse primer tri-I biotech TAA TAC GAC TCA CTA TAG GGT CCT GCT CCT GTC TCG CTG 
dsEGFP template forward preimer tri-I biotech TAA TAC GAC TCA CTA TAG GGT ATG GTG AGC AAG GGC GAG GAG
dsEGFP template reverse preimer tri-I biotech TAA TAC GAC TCA CTA TAG GGT GGC GGA TCT TGA AGT TCA CC
tub qPCR forward primer tri-I biotech GGA CCG CAT CAG GAA ACT GGC
tub qPCR reverse preimer tri-I biotech CCA CAG ACA GCC TCT CCA TGA GC
ef1 qPCR forward primer tri-I biotech CGC TTG AGG AAA TCA AGA AGG A
ef1 qPCRreverse preimer tri-I biotech CCT GCA GAG GAA GAC GAA G

References

  1. Hammond, S. M. Dicing and slicing: The core machinery of the RNA interference pathway. FEBS Lett. 579, 5822-5829 (2005).
  2. Bellés, X. Beyond drosophila: RNAi in vivo and functional genomics in insects. Annu. Rev. Entomol. 55, 111-128 (2010).
  3. Wynant, N., Santos, D., Vanden Broeck, J., Jeon, K. W. Chapter Five – Biological Mechanisms Determining the Success of RNA Interference in Insects. International Review of Cell and Molecular Biology. 312, 139-167 (2014).
  4. San Miguel, K., Scott, J. G. The next generation of insecticides: dsRNA is stable as a foliar-applied insecticide. Pest Manag. Sci. 72, 801-809 (2016).
  5. Scott, J. G., et al. Towards the elements of successful insect RNAi. J. Insect Physiol. 59, 1212-1221 (2013).
  6. Joga, M. R., Zotti, M. J., Smagghe, G., Christiaens, O. RNAi efficiency, systemic properties, and novel delivery methods for pest insect control: What we know so far. Front. Physiol. 7, (2016).
  7. Garbutt, J. S., Bellés, X., Richards, E. H., Reynolds, S. E. Persistence of double-stranded RNA in insect hemolymph as a potential determiner of RNA interference success: Evidence from Manduca sexta and Blattella germanica. J. Insect Physiol. 59, 171-178 (2013).
  8. Arimatsu, Y., Kotani, E., Sugimura, Y., Furusawa, T. Molecular characterization of a cDNA encoding extracellular dsRNase and its expression in the silkworm, Bombyx mori. Insect Biochem. Mol. Biol. 37, 176-183 (2007).
  9. Wang, K., et al. Variation in RNAi efficacy among insect species is attributable to dsRNA degradation in vivo. Insect Biochem. Mol. Biol. 77, 1-9 (2016).
  10. Wynant, N., et al. Identification, functional characterization and phylogenetic analysis of double stranded RNA degrading enzymes present in the gut of the desert locust, Schistocerca gregaria. Insect Biochem. Mol. Biol. 46, 1-8 (2014).
  11. Huang, J. -. H., Belles, X., Lee, H. -. J. Functional characterization of hypertrehalosemic hormone receptor in relation to hemolymph trehalose and to oxidative stress in the cockroach Blattella germanica. Exp. Endocrinol. 2, 114 (2012).
  12. Lin, Y. -. H., Lee, C. -. M., Huang, J. -. H., Lee, H. -. J. Circadian regulation of permethrin susceptibility by glutathione S-transferase (BgGSTD1) in the German cockroach (Blattella germanica). J. Insect Physiol. 65, 45-50 (2014).
  13. Lozano, J., Kayukawa, T., Shinoda, T., Belles, X. A role for taiman in insect metamorphosis. PLOS Genet. 10, 1004769 (2014).
  14. Lozano, J., Montañez, R., Belles, X. MiR-2 family regulates insect metamorphosis by controlling the juvenile hormone signaling pathway. Proc. Natl. Acad. Sci. 112, 3740-3745 (2015).
  15. Lin, Y. -. H., Huang, J. -. H., Liu, Y., Belles, X., Lee, H. -. J. Oral delivery of dsRNA lipoplexes to German cockroach protects dsRNA from degradation and induces RNAi response. Pest Manag. Sci. 73, 960-966 (2017).
  16. Gharavi, J., et al. Chiral cationic polyamines for chiral microcapsules and siRNA delivery. Bioorg. Med. Chem. Lett. 23, 5919-5922 (2013).
  17. Whyard, S., Singh, A. D., Wong, S. Ingested double-stranded RNAs can act as species-specific insecticides. Insect Biochem. Mol. Biol. 39, 824-832 (2009).
  18. Luo, Y., et al. Differential responses of migratory locusts to systemic RNA interference via double-stranded RNA injection and feeding. Insect Mol. Biol. 22, 574-583 (2013).
  19. Liu, J., Smagghe, G., Swevers, L. Transcriptional response of BmToll9-1 and RNAi machinery genes to exogenous dsRNA in the midgut of Bombyx mori. J. Insect Physiol. 59, 646-654 (2013).
  20. Airs, P. M., Bartholomay, L. C. RNA interference for mosquito and mosquito-borne disease control. Insects. 8, 4 (2017).
  21. Taning, C. N. T., et al. Oral RNAi to control Drosophila suzukii: Laboratory testing against larval and adult stages. J. Pest Sci. 89, 803-814 (2016).
  22. Wu, S. Y., McMillan, N. A. J. Lipidic systems for in vivo siRNA delivery. AAPS J. 11, 639-652 (2009).
  23. Tam, Y. Y. C., Chen, S., Cullis, P. R. Advances in lipid nanoparticles for siRNA delivery. Pharmaceutics. 5, 498-507 (2013).
  24. Xia, Y., Tian, J., Chen, X. Effect of surface properties on liposomal siRNA delivery. Biomaterials. 79, 56-68 (2016).
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Huang, J., Liu, Y., Lin, Y., Belles, X., Lee, H. Practical Use of RNA Interference: Oral Delivery of Double-stranded RNA in Liposome Carriers for Cockroaches. J. Vis. Exp. (135), e57385, doi:10.3791/57385 (2018).

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