Summary

Desthiobiotin-streptividin-affinitet medierad rening av RNA-interagera proteiner i mesoteliom celler

Published: April 25, 2018
doi:

Summary

Desthiobiotin märkning av en syntetisk 25-nukleotid RNA oligo, som innehåller en adenin-rika element (är) motiv, tillåter specifika bindningen av cytosoliska är-bindande protein.

Abstract

I in vitro- RNA-pulldown används fortfarande i stor utsträckning i de första stegen av protokoll som syftar till att identifiera RNA-bindande proteiner som känner igen specifika RNA strukturer och motiv. I detta RNA-pulldown protokoll, kommersiellt syntetiskt RNA sonder är märkta med en modifierad form av biotin, desthiobiotin, på 3′ terminus av RNA strandar, som reversibelt binder till streptividin och därmed tillåter eluering av proteiner under mer fysiologiska villkor. Den RNA-desthiobiotin är orörlig genom interaktion med streptividin på magnetiska pärlor, som används för att dra ner proteiner som specifikt interagerar med RNA av intresse. Icke-denaturerat och aktiva proteiner den cytosoliska delen av mesoteliom celler används som källa för proteiner. Den metod som beskrivs här kan användas för att upptäcka samspelet mellan kända RNA-bindande proteiner och en 25-nukleotid (nt) lång RNA sond som innehåller en sekvens av intresse. Detta är användbart att slutföra funktionell karakterisering av stabiliserande eller destabiliserande element i RNA-molekyler som uppnåtts med en reporter vector analys.

Introduction

Genuttryck och den slutliga nivån av produktens genen kan tätt regleras som påverkar mRNA-stabilitet och mRNA översättning hastighet1. Dessa post-transcriptional regleringsmekanismer utövas genom samspelet mellan icke-kodande RNA och/eller RNA-bindande proteiner (RBPs) med riktade mRNA. Det är oftast 3′ oöversatta regionen av mRNA (3′ UTR – som hör till den icke-kodande delen av genomet2) som innehåller specifika cis-reglerande element (CRE), som erkänns av trans-agerar faktorer såsom miRNA eller RBPs 3. de bäst studerade cis-element inom den 3′ UTR, är adenin-rika element (är) motivet, som är erkänd av specifika AU-bindande proteiner (AUBP), och, i sin tur, inducerar antingen mRNA nedbrytning/deadenylation (är-medierad decay) eller mRNA stabilisering4.

Storleken av de 3′ UTR av calretinin mRNA (CALB2) är 573 bp lång och innehåller en förmodad AUUUA pentamer, som förutspådde av AREsite2, en bioinformatiska verktyg5. Konsekvent med förekomsten av en förmodad är motiv, pmirGLO vector-reporter analysen visade en stabilisering roll av detta element inom CALB2 mRNA6. Slutligen den in vitro- RNA-pulldown användes för att identifiera de AUBP som stabiliserar calretinin mRNA genom är motivet.

Eftersom alla icke-kodande RNAs interagerar med proteiner7, är av in vitro- RNA-pulldown ett bra sätt och första-av-val analys för att identifiera RNA-interactmedlemmar till stöd i dechiffrera molekylära mekanismer. I denna RNA-pulldown metod användes kommersiellt syntetiskt RNA-sonder, som var märkt med en modifierad form av biotin (desthiobiotin) på 3′ terminus av RNA strandar. Den RNA-desthiobiotin är orörlig genom interaktion med streptividin på magnetiska pärlor, som används för att dra ner proteiner som specifikt interagerar med bundna-RNA av intresse. Icke-denaturerat och aktiva proteiner den cytosoliska delen av mesoteliom celler används som källa för proteiner. Sådant RNA-bundna proteiner elueras från de magnetiska pärlor, kör genom en gel med 12% i SDS-PAGE, överförs till ett membran och utforskad med olika antikroppar.

I förfarandet standard streptividin-biotin affinitet rening, hårda denaturering villkor krävs för att störa den starka irreversibel biotin-streptividin obligationen för att eluera den bundna proteiner8, vilket kan leda till dissociationen av proteinkomplex. Till skillnad från biotin, desthiobiotin reversibelt binder till streptividin och förflyttas konkurrenskraftigt med en buffrad lösning av biotin, möjliggör den milda elueringen av proteiner, och undvika isolering av naturligt biotinylerade molekyler9, tyder på att tekniken är idealisk för att isolera infödda proteinkomplex under inhemska förhållanden.

In vitro bindande villkor och stringens, vilka bestäms av salt koncentration, reduktionsmedel och tvättmedel procentandel, bör vara nära de närvarande i cellulära samband för att identifiera sant i vivo interaktioner. De bindande villkor genomförts häri har tidigare påvisats lämpligt för identifiering av HuR som en AU-bindande protein10. Detta synsätt skulle kunna spara tid, eftersom optimering av ordentlig bindande villkor kan vara tidskrävande och utmanande. Dessutom, denna metod skulle kunna användas som ett start protokoll för alla RNA-pulldown experiment och gradvis kan optimeras genom att ändra koncentrationen av salter och rengöringsmedel, ändra procentandelen glycerol och lägga till andra salter. Dessutom har vi visat att även en kort 25-nukleotid RNA-probe härbärgerat en pentamer är-motiv kunde användas att demonstrera interaktion med en specifik AUBP.

Protocol

1. beredning av cytosoliska och nukleära proteinfraktion Plåt 4 x 106 ACC-MESO-4 celler i en T150 cell kultur kolv odlas i RPMI – 1640 medium kompletteras med 10% FBS, 1 x penicillin/streptomycin (100 x) och 2 mM L-glutamin (200 mM). När celler når en sammanflödet av 80-90% (~5-5.5 x 106 celler), Fortsätt med protein utvinning av kärn- och cytosoliska bråkdel.Obs: ACC-MESO-4 cell fodrar erhölls från RIKEN BioResource centrum11. Aspirera mediu…

Representative Results

I detta experiment användes ett 25-nt långt fragment av calretinin 3′ UTR hysande är motiv (CALB2 3′ UTR (är) 25-nt) för att testa om det binder specifikt till proteinet mänskliga-antigen R (HuR), en känd mRNA-stabilisator. För att testa specificiteten av elementet är, en 25-nt-RNA var sonden CALB2 3′ UTR (mtARE) som innehåller en mutation som är-motiv, som tidigare visades att avskaffa stabilisering effekten av är motivet, används6. Den tredje RNA pro…

Discussion

3′ utr hör till den icke-kodande genom3, och alla icke-kodande RNAs kan interagera med proteiner för att utöva sin funktion7. När däggdjur genomet befanns pervasively transkriberas och produceras en betydande del av långa icke-kodande RNAs16, visat framväxande bevis att dessa lång-kodande RNAs fungera i reglerar genuttryck som de interagerar med kromatin-remodeling komplex17. Denna kunskap fick utnyttja RNA-pulldown an…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av schweiziska National Science Foundation Sinergia bidraget CRSII3 147697, Stiftung für Angewandte Krebsforschung och Zürich Krebsliga.

Materials

NE-PER Nuclear and cytoplasmic extraction kit Thermo Fisher Scientific  78833
Pierce Protease Inhibitor Tablets, EDTA-free Thermo Fisher Scientific A32965
Pierce BCA Protein Assay Kit Thermo Fisher Scientific 23225
Pierce Magnetic RNA-protein Pull-Down Kit  Thermo Fisher Scientific 20164 Includes magnetic beads and therefore the kit need to be stored at 4 °C
Pierce RNA 3’ End Desthiobiotinylation Kit  Thermo Fisher Scientific 20163 The kit is a part of the "Pierce Magnetic RNA-protein Pull-Down Kit", and needs to be stored at -20 °C unlike the pull-down kit (4 °C).
DynaMag-2,  magnetic stand Thermo Fisher Scientific 12321D
Anti – HuR (MOUSE) monoclonal antibody Thermo Fisher Scientific The antibody is included in the Pierce Magnetic RNA-protein Pull-Down Kit  – 1:1000 in 5% BSA 1x TTBS – rabbit anti-mouse secondary antibody 1:10,000 in 5% BSA 1x TTBS
Anti – α – tubulin (MOUSE) monoclonal antibody Santa Cruz 8035 1:1000 in 5% BSA 1x TTBS – rabbit anti-mouse secondary antibody 1:10,000 in 5% BSA 1x TTBS
Anti – PARP (RABBIT) Polyclonal antibody Cell Signaling 9542 1:1000 in 5% BSA 1x TTBS – goat anti-rabbit secondary antibody 1:10,000 in 5% BSA 1x TTBS
Anti – Mesothelin (MOUSE) Monoclonal Antibody  Rockland 200-301-A87
Secondary goat anti-rabbit antibody Cell Signaling 7074
Secondary rabbit anti-mouse antibody Sigma-Aldrich A-9044
RPMI – 1640 medium Sigma-Aldrich R8758
FBS – Filtrated Bovine Serum Pan Biotech  P40-37500
Penicillin – streptomycin (100x) Sigma-Aldrich  P4333
L-Glutamine solution (200 mM) Sigma-Aldrich  G7513
0.25% Trypsin-EDTA (1x) Gibco by Life technologies  25200-056
Mini-PROTEAN 3 Cell Bio-Rad 1653301
Mini Protean System Glass Plates  Bio-Rad 1653308
Mini-PROTEAN Spacer Plates with 1.5 mm integrated spacer Bio-Rad 1653312
Mini-PROTEAN Comb, 10-well, 1.5 mm, 66 µL Bio-Rad 1653365
Mini-PROTEAN Tetra Cell Casting Modules Bio-Rad 1658050
RNaseZap RNase Decontamination Solution Thermo Fisher Scientific AM9780
Rotiphorese gel 30 – aqueous 30% acrylamide and bisacrylamide stock solution at a ration of 37.5:1 Roth 3029
20% SDS  PanReac AppliChem A3942
PVDF transfer membrane  Perkin Elmer NEF1002 Need to be activated by incubating in pure methanol for 1 min followed by washing in water for 2 min 
Trans-Blot SD semi-dry transfer cell  Bio-Rad 1703940
Clarity Western ECL Substrate Bio-Rad 1705061
FusionFX  Digital Imager Vilber
RNA oligo synthesis Mycrosynth AG, Switzerland the synthesis scale – 0.04 µmol – HPLC purified
Bovine serum albumin Sigma-Aldrich A7030
Hydrochloric Acid (HCl) 6 M PanReac AppliChem 182883.1211
Ultra Pure 1 M Tris, pH 7.5  Thermo Fisher Scientific 15567027
Glycerol  Thermo Fisher Scientific 17904 50% sterile aliquots to be stored at -20°C
Pierce Streptavidin magnetic beads  Thermo Fisher Scientific 88817 Please note that these magnetic beads have an average diameter of 1 µm (range from 0.5 – 1.5 µm). Furthermore, Dynabeads-M280 Streptavidin, which are beads of homogenouse size 2.8 µm, are also used in RNA-pulldown but be aware that this may affect purification process.
TEMED Sigma-Aldrich T9281
Ammonium persulfate  Sigma-Aldrich A3678
Coomassie G-250 Applichem A3480
Aluminiumsulfate-(14-18)-hydrate  Sigma-Aldrich 368458
ortho-phosphoric acid  Applichem A0637

References

  1. Glisovic, T., Bachorik, J. L., Yong, J., Dreyfuss, G. RNA-binding proteins and post-transcriptional gene regulation. FEBS Letters. 582 (14), 1977-1986 (2008).
  2. Mayr, C. Evolution and biological roles of alternative 3’UTRs. Trends in Cell Biology. 26 (3), 227-237 (2016).
  3. Matoulkova, E., Michalova, E., Vojtesek, B., Hrstka, R. The role of the 3′ untranslated region in post-transcriptional regulation of protein expression in mammalian cells. RNA Biology. 9 (5), 563-576 (2012).
  4. von Roretz, C., Di Marco, S., Mazroui, R., Gallouzi, I. E. Turnover of AU-rich-containing mRNAs during stress: a matter of survival. Wiley Interdisciplinary Reviews: RNA. 2 (3), 336-347 (2011).
  5. Fallmann, J., Sedlyarov, V., Tanzer, A., Kovarik, P., Hofacker, I. L. AREsite2: An enhanced database for the comprehensive investigation of AU/GU/U-rich elements. Nucleic Acids Research. 44, D90-D95 (2016).
  6. Kresoja-Rakic, J., et al. Posttranscriptional regulation controls calretinin expression in malignant pleural mesothelioma. Frontiers in Genetics. 8 (70), (2017).
  7. Chu, C., Spitale, R. C., Chang, H. Y. Technologies to probe functions and mechanisms of long noncoding RNAs. Nature Structural & Molecular Biology. 22 (1), 29-35 (2015).
  8. Diamandis, E. P., Christopoulos, T. K. The biotin-(strept)avidin system: principles and applications in biotechnology. Clinical Chemistry. 37 (5), 625-636 (1991).
  9. Hirsch, J. D., et al. Easily reversible desthiobiotin binding to streptavidin, avidin, and other biotin-binding proteins: Uses for protein labeling, detection, and isolation. Analytical Biochemistry. 308 (2), 343-357 (2002).
  10. . Magnetic bead technology for better assay development Available from: https://assets.thermofisher.com/TFS-Assets/LSG/brochures/1602577-Magnetic-Bead-Technology-Brochure.pdf (2013)
  11. Usami, N., et al. Establishment and characterization of four malignant pleural mesothelioma cell lines from Japanese patients. Cancer Science. 97 (5), 387-394 (2006).
  12. Laemmli, U. K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 227 (5259), 680-685 (1970).
  13. Coulson, R. M., Cleveland, D. W. Ferritin synthesis is controlled by iron-dependent translational derepression and by changes in synthesis/transport of nuclear ferritin RNAs. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 90 (16), 7613-7617 (1993).
  14. Leibold, E. A., Munro, H. N. Cytoplasmic protein binds in vitro to a highly conserved sequence in the 5′ untranslated region of ferritin heavy- and light-subunit mRNAs. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 85 (7), 2171-2175 (1988).
  15. Srikantan, S., Gorospe, M. HuR function in disease. Frontiers in Bioscience (Landmark Edition). 17, 189-205 (2012).
  16. Morris, K. V., Mattick, J. S. The rise of regulatory RNA. Nature Reviews: Genetics. 15 (6), 423-437 (2014).
  17. Rinn, J. L., et al. Functional demarcation of active and silent chromatin domains in human HOX loci by noncoding RNAs. Cell. 129 (7), 1311-1323 (2007).
  18. Zhao, J., Sun, B. K., Erwin, J. A., Song, J. J., Lee, J. T. Polycomb proteins targeted by a short repeat RNA to the mouse X chromosome. Science. 322 (5902), 750-756 (2008).
  19. McHugh, C. A., et al. The Xist lncRNA interacts directly with SHARP to silence transcription through HDAC3. Nature. 521 (7551), 232-236 (2015).

Play Video

Cite This Article
Kresoja-Rakic, J., Felley-Bosco, E. Desthiobiotin-Streptavidin-Affinity Mediated Purification of RNA-Interacting Proteins in Mesothelioma Cells. J. Vis. Exp. (134), e57516, doi:10.3791/57516 (2018).

View Video