Summary

In Vitro модель для изучения воздействия 5-аминолевулиновой кислоты-опосредованной фотодинамической терапии на золотистый стафилококк биопленки

Published: April 16, 2018
doi:

Summary

Эта рукопись описывает протокол для изучения Антимикробный эффект 5-аминолевулиновой кислоты опосредованной фотодинамической терапии (ALA-PDT) на золотистый стафилококк биопленки. Этот протокол может использоваться для разработки в vitro модель для изучения в будущем лечении бактериальных биопленок с PDT.

Abstract

Золотистый стафилококк (S. aureus) является общей человеческой возбудителя, который вызывает гноеродной и системных инфекций. S. aureus инфекции трудно искоренить не только из-за появления устойчивых к антибиотикам штаммов, но и ее способность формы биопленки. Недавно фотодинамическая терапия (PDT) указан как один из потенциальных методов лечения для контроля инфекции биопленки. Однако чтобы улучшить наши знания о его влиянии на бактериальных биопленок, а также основных механизмов необходимы дальнейшие исследования. Эта рукопись описывает модель в vitro ФДТ с 5-аминолевулиновой кислоты (5-ALA), предшественник фактической фотосенсибилизатора, протопорфирин IX (PpIX). Вкратце, Зрелые S. aureus биоплёнки были инкубировали с Ала и затем подвергаются света. Впоследствии антибактериальный эффект ALA-PDT на S. aureus биопленки был количественно путем расчета колонии, образуя единиц (CFUs) и визуализированное жизнеспособности флуоресцентные окрашивание через Конфокальная лазерная сканирующая микроскопия (CLSM). Представитель результаты показали сильный антибактериальный эффект ALA-PDT на S. aureus биопленки. Этот протокол является простой и могут быть использованы для разработки в vitro модель для изучения обращения S. aureus биоплёнки с ALA-PDT. В будущем она может также ссылаться на PDT исследований с использованием других фотосенсибилизаторов для различных штаммов бактерий с минимальными изменениями.

Introduction

S. aureus является важным грамположительных возбудителя, который колонизирует кожу и слизистую оболочку человека хостов. Его способность формы биоплёнки считается важным аспектом его патогенез1. Бактериальные биопленки – сообщество бактерий, внедренные в матрицу собственного производства, которая состоит из внеклеточного полимерных веществ, включая полисахарид, ДНК и белка. Эта матрица играет значительную роль в сохранении бактериальных инфекций, способствует высокая степень сопротивления для иммунной системы человека и текущих антимикробной терапии2. Антибиотики являются по-прежнему основных лечения для инфекции биопленки, хотя влияние антибиотиков на биоплёнки ограничены. Ранее показано, что клетки в биопленки 10 – 1000 раз более устойчивы к антибиотикам, по сравнению с их планктонных коллегами3. Таким образом чтобы завоевать этот вопрос необходимы альтернативные стратегии.

PDT, альтернативное лечение для лечения бактериальных инфекций, использует свет соответствующей длины волны для того чтобы активировать фотосенсибилизаторов. Это приводит к производству реактивнооксигенных видов (ров), которые являются смертельным для клеток-мишеней, нарушения клеточной стенки, инактивируют ферменты и повреждения ДНК4. Эта характеристика многолетних целевых делает его трудным для бактерий развивается устойчивость к лечению PDT.

Антимикробный эффект PDT на бактериальных и грибковых биопленки, с несколькими фотосенсибилизаторов, например толуидиновый синий, зеленый малахит, метиленовый синий, хлора e6 и порфиринов, был изучен в предыдущих докладах5,6, 7,8,9,10,11,12,13. 5-ALA, пролекарство фактической фотосенсибилизатора, PpIX, характеризуется своей небольшой молекулярной массой и быстрое разминирование12,14. Эти преимущества дают ALA-PDT огромный потенциал в качестве терапевтического применения. Хотя многие группы12исследовано влияние ALA-PDT на планктонные бактерий, Антимикробный эффект ALA-PDT на бактериальных биопленок еще не выяснены. Между тем трудно сравнить результаты предыдущих исследований. Одной из причин является, что различные протоколы используются различными группами. Таким образом этот протокол описывает в vitro модель ALA-PDT системы, основанной на нашей предыдущей работы15. Влияние этой модели была подтверждена CFU расчет и жизнеспособности, окрашивание с CLSM.

Protocol

1. биопленки Биопленки в 96-луночных планшетов Получения штамма S. aureus USA300 и 3 биопленки формирование клинических штаммов (C1 – C3) хранятся при температуре-80 ° C.Примечание: Способность клинических штаммов к форме, которую биоплёнки определяется микротитровальных…

Representative Results

Жизнеспособность бактерий в биопленке уменьшилась после ALA-PDT лечения по сравнению с элементами управления (Ала – LED-, Ала + LED – и Ала-LED +) в USA300 и три клинических штаммов (рис. 1). Подтвердить результаты кое пробирного и наблю…

Discussion

PDT был хорошо изученных терапии для лечения рака, поскольку он был изобретен более чем 100 лет назад18. За последнее десятилетие PDT применялся в качестве антимикробного стратегии и показал эффективность против некоторых устойчивых к антибиотикам болезнетворных бактерий<sup cla…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа финансировалась национальный характер науки фонд Китая для молодых ученых (№ 81300810), Шанхай молодой доктор учебной программы (№ 20141057) и национальные естественные науки фонд Китая (81671982, 81271791 и 81571955). Мы хотели бы поблагодарить LetPub (www.letpub.com) для обеспечения языковой помощи в ходе подготовки этой рукописи.

Materials

Tryptone Soya Broth (TSB) OXOID CM0129B
Tryptone Soya Agar (TSA) OXOID CM0131
SYTO9 Thermo Fisher Scientific L7012 The LIVE/DEAD BacLight Bacterial Viability Kits 
Propidium iodide (PI) Thermo Fisher Scientific L7012 The LIVE/DEAD BacLight Bacterial Viability Kits 
Pancreatin Sigma-Aldrich P3292
5-aminolevulinic acid (ALA) Fudan Zhangjiang Bio-Pharm 3.1
Staphylococcus aureus strain USA300 / / The source of USA 300 references “Tenover FC, Goering RV. J Antimicrob Chemother. 2009 Sep; 64(3):441-6”.
Staphylococcus aureus clinical strains (C1-C3) / / All clinical strains were isolated from patients with chronic rhinosinusitis in the Department of Otorhinolaryngology-Head and Neck Surgery, Eye and ENT Hospital of Fudan University [Zhang QZ, Zhao KQ, Wu Y, et al. PLoS One. 2017 Mar; 12(3): e0174627].
96-well microplate Corning Inc 3599 Clear Flat Bottom Polystyrene TC-Treated Microplates, Individually Wrapped, with Lid, Sterile
Fluorodish NEST Biotechnology 801001 Glass bottom, Non-pyrogenic
Eppendorf Safe-Lock Tubes, 1.5 mL Eppendorf 0030120086
Eppendorf microcentrifuge 5417 Eppendorf Z365998 | SIGMA
Incubator Thermo Fisher Scientific SHKE4000 MaxQ 4000 Benchtop Orbital Shakers
Light emitting diode (LED) Wuhan Yage Optic and Electronic Technique CO LED-IB
Leica TCS SP8 confocal laser-scanning microscope Leica Microsystems
Leica LAS AF software Leica Microsystems
IMARIS software Bitplane

References

  1. Lewis, K. Riddle of biofilm resistance. Antimicrob Agents Chemother. 45 (4), 999-1007 (2001).
  2. Rabin, N., et al. Biofilm formation mechanisms and targets for developing antibiofilm agents. Future Med Chem. 7 (4), 493-512 (2015).
  3. Mah, T. F., O’Toole, G. A. Mechanisms of biofilm resistance to antimicrobial agents. Trends Microbiol. 9 (1), 34-39 (2001).
  4. Sharma, M., et al. Toluidine blue-mediated photodynamic effects on staphylococcal biofilms. Antimicrob Agents Chemother. 52 (1), 299-305 (2008).
  5. Rosa, L. P., da Silva, F. C., Nader, S. A., Meira, G. A., Viana, M. S. In vitro effectiveness of antimicrobial photodynamic therapy (APDT) using a 660 nm laser and malachite green dye in Staphylococcus aureus biofilms arranged on compact and cancellous bone specimens. Lasers Med Sci. 29 (6), 1959-1965 (2014).
  6. Rosa, L. P., Silva, F. C., Nader, S. A., Meira, G. A., Viana, M. S. Effectiveness of antimicrobial photodynamic therapy using a 660 nm laser and methyline blue dye for inactivating Staphylococcus aureus biofilms in compact and cancellous bones: An in vitro study. Photodiagnosis Photodyn Ther. 12 (2), 276-281 (2015).
  7. Mai, B., et al. The antibacterial effect of sinoporphyrin sodium photodynamic therapy on Staphylococcus aureus planktonic and biofilm cultures. Lasers Surg Med. 48 (4), 400-408 (2016).
  8. Gandara, L., Mamone, L., Bohm, G. C., Buzzola, F., Casas, A. Enhancement of photodynamic inactivation of Staphylococcus aureus biofilms by disruptive strategies. Lasers Med Sci. 32 (8), 1757-1767 (2017).
  9. Baltazar, L. M., et al. Antimicrobial photodynamic therapy: an effective alternative approach to control fungal infections. Front Microbiol. 6, 202 (2015).
  10. Fernandes, T., Bhavsar, C., Sawarkar, S., D’Souza, A. Current and novel approaches for control of dental biofilm. Int J Pharm. 536 (1), 199-210 (2017).
  11. De Sordi, L., et al. Development of Photodynamic Antimicrobial Chemotherapy (PACT) for Clostridium difficile. PLoS One. 10 (8), e0135039 (2015).
  12. Harris, F., Pierpoint, L. Photodynamic therapy based on 5-aminolevulinic acid and its use as an antimicrobial agent. Med Res Rev. 32 (6), 1292-1327 (2012).
  13. Donnelly, R. F., McCarron, P. A., Tunney, M. M. Antifungal photodynamic therapy. Microbiol Res. 163 (1), 1-12 (2008).
  14. Shi, H., Li, J., Zhang, H., Zhang, J., Sun, H. Effect of 5-aminolevulinic acid photodynamic therapy on Candida albicans biofilms: An in vitro study. Photodiagnosis Photodyn Ther. 15, 40-45 (2016).
  15. Zhang, Q. Z., et al. 5-aminolevulinic acid-mediated photodynamic therapy and its strain-dependent combined effect with antibiotics on Staphylococcus aureus biofilm. PLoS One. 12 (3), 0174627 (2017).
  16. Chang, Y. C., et al. Rapid single cell detection of Staphylococcus aureus by aptamer-conjugated gold nanoparticles. Sci Rep. 3, 1863 (2013).
  17. Barra, F., et al. Photodynamic and Antibiotic Therapy in Combination to Fight Biofilms and Resistant Surface Bacterial Infections. Int J Mol Sci. 16 (9), 20417-20430 (2015).
  18. St Denis, T. G., et al. All you need is light: antimicrobial photoinactivation as an evolving and emerging discovery strategy against infectious disease. Virulence. 2 (6), 509-520 (2011).
  19. O’Neill, J. F., Hope, C. K., Wilson, M. Oral bacteria in multi-species biofilms can be killed by red light in the presence of toluidine blue. Lasers Surg Med. 31 (2), 86-90 (2002).
  20. Li, X., et al. Effects of 5-aminolevulinic acid-mediated photodynamic therapy on antibiotic-resistant staphylococcal biofilm: an in vitro study. J Surg Res. 184 (2), 1013-1021 (2013).
  21. Hall-Stoodley, L., Costerton, J. W., Stoodley, P. Bacterial biofilms: from the natural environment to infectious diseases. Nat Rev Microbiol. 2 (2), 95-108 (2004).
  22. Elias, S., Banin, E. Multi-species biofilms: living with friendly neighbors. FEMS Microbiol Rev. 36 (5), 990-1004 (2012).
  23. Wu, J., et al. Design and Proof of Programmed 5-Aminolevulinic Acid Prodrug Nanocarriers for Targeted Photodynamic Cancer Therapy. ACS Appl Mater Interfaces. 9 (17), 14596-14605 (2017).
check_url/57604?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zhao, K., Wu, Y., Yi, Y., Feng, S., Wei, R., Ma, Y., Zheng, C., Qu, D. An In Vitro Model to Study the Effect of 5-Aminolevulinic Acid-mediated Photodynamic Therapy on Staphylococcus aureus Biofilm. J. Vis. Exp. (134), e57604, doi:10.3791/57604 (2018).

View Video