Summary

Assemblage rapide, évolutive et dans divers Nanocarriers synthétique Via Flash nanoprécipitation apport de protéines bioactives et Immunostimulants

Published: August 11, 2018
doi:

Summary

Nanomatériaux fournit des mécanismes polyvalents des livraisons surveillées de thérapeutiques pour les sciences fondamentales et applications translationnelles, mais souvent, leur fabrication nécessite une expertise qui n’est pas disponible dans les laboratoires biomédicaux plus. Nous présentons ici les protocoles pour la fabrication évolutive et thérapeutique chargement de divers nanocarriers auto-assemblés en utilisant flash nanoprécipitation.

Abstract

Nanomatériaux présente un large éventail d’options pour personnaliser l’administration CONTROLEE de charges moléculaires simples et combinés pour des applications thérapeutiques et d’imagerie. Cette spécificité accrue peut avoir des implications cliniques importantes, y compris une diminution des effets secondaires et les doses inférieures avec la plus grande puissance. En outre, le in situ ciblant modulation contrôlée des sous-ensembles spécifiques de cellules peut améliorer les études in vitro et in vivo des phénomènes biologiques fondamentaux et sonder la fonction des cellules. Malheureusement, les compétences requises en nanoscale science, chimie et génie souvent interdire sans expérience dans ces domaines, les laboratoires de fabrication et la personnalisation des nanomatériaux comme outils pour leurs recherches ou de véhicules pour leur stratégies thérapeutiques. Ici, nous fournissons des protocoles pour la synthèse et l’Assemblée évolutive d’un système de copolymère polyvalent non-toxiques bloc se prêtent à la formation facile et chargement des véhicules nanométriques pour applications biomédicales. Flash nanoprécipitation est présentée comme une méthodologie pour la fabrication rapide de diverses nanocarriers de poly(ethylene glycol) –bl-copolymères poly (sulfure de propylène). Ces protocoles permettra de laboratoires avec un large éventail d’expertise et de ressources à facilement et reproductible fabriquer nanocarrier avancée vecteurs pour leurs applications. Processus de conception et construction d’un instrument automatisé qui utilise une pompe à seringue à grande vitesse pour faciliter la nanoprécipitation flash et pour permettre un contrôle amélioré sur l’homogénéité, la taille, la morphologie et le chargement de nanocarriers de polymersome est décrit.

Introduction

Nanocarriers permettant la livraison surveillée du fret petit et macromoléculaire, entités actives y comprises qui, si non encapsulés, serait soit hautement dégradable et/ou trop hydrophobe pour l’administration in vivo. Des morphologies nanocarrier régulièrement fabriqués, vésicules polymériques analogues aux liposomes (également appelés polymersomes) offrent la possibilité de charger simultanément cargaison hydrophile et hydrophobe1,2. Malgré leurs avantages prometteurs, polymersomes sont encore rares dans les applications cliniques, en partie, à plusieurs grands défis dans leur fabrication. Pour l’usage clinique, des formulations de polymersome il faut faire par lots à grande échelle, stériles et cohérentes.

Un certain nombre de techniques peut être utilisé pour la forme polymersomes d’un copolymère à deux blocs, tels que poly(ethylene glycol) –bloc-poly (sulfure de propylène) (PEG –bl– PPS), qui incluent des solvants dispersion3, film mince réhydratation1 , 4, microfluidique 5,6et hydratation direct7. Dispersion de solvant implique fois longue incubation en présence de solvants organiques, ce qui peuvent dénaturer certaines charges bioactifs, comme les protéines. Réhydratation minces n’offre pas de contrôle sur la polydispersité de le polymersomes formé, nécessitant souvent des techniques d’extrusion et coûteux pour atteindre monodispersion acceptable. En outre, tant microfluidique et hydratation directe sont difficiles à échelle pour les plus gros volumes de production. Les méthodes de fabrication différentes nanocarrier, flash nanoprécipitation (FNP) offre la possibilité de faire des formulations à grande échelle et reproductibles8,9,10. Alors que les FNP était précédemment réservé pour la formulation des nanoparticules de base solide, notre laboratoire a récemment élargi l’utilisation des FNP d’inclure la formation uniforme de divers PEG –bl– PPS nanostructure morphologies11, 12, dont polymersomes11 et bicontinues nanosphères12. Nous avons constaté que FNP était capable de former des formulations monodisperses de polymersomes sans la nécessité pour l’extrusion, ayant pour résultat les valeurs d’index de polydispersité supérieure par rapport aux non extrudé polymersomes formé par dispersion de réhydratation et solvant de film mince 11. bicontinues nanosphères, avec leurs vastes domaines hydrophobes, n’ont pas pu être formé par réhydratation minces, malgré la formation sous certaines conditions de solvants avec FNP12.

Ici, nous fournir une description détaillée pour la synthèse de la PEG – copolymère à deux blocsbl– PPS utilisé dans la formation de polymersome, le batteur de jets (CIJ) impingement confiné utilisé pour les FNP, le FNP Protocole lui-même et la mise en œuvre d’un système automatisé de réduire la variabilité de l’utilisateur. Informations sur la façon de stériliser le système suffisamment pour produire des formulations exemptes d’endotoxines pour utilisation in vivoet les données représentatives concernant la caractérisation des polymersomes formé par les FNP est inclus. Avec cette information, les lecteurs avec intérêt en utilisant polymersomes pour travaux in vitro et in vivo seront en mesure de fabriquer leurs propres formulations monodispersés stérile. Lecteurs ayant une expérience dans les formulations de nanocarrier et avec l’expertise de la synthèse de polymère sera en mesure de rapidement tester leurs propres systèmes de polymère utilisant des FNP comme une alternative possible à leurs techniques de formulation actuelle. En outre, les protocoles décrits dans les présentes peuvent servir comme outils pédagogiques pour la formulation de nanocarriers en cours de laboratoire de nanotechnologie.

Protocol

1. synthèse du Poly(ethylene glycol) -bloc-poly (sulfure de propylène)-Thiol Synthétiser de mésylate de méthoxy-poly(ethylene glycol) (Mn : 750) (MeO-PEG17-Ms, j’ai). Dissoudre 10 g de MeO-PEG17-OH dans 200 mL de toluène 100 % dans un ballon à fond rond de 3-cou (RBF) sous agitation magnétique à 600 tr/min. Raccorder le RBF 3-cou à un appareil de Dean-Stark, elle-même attaché à un condenseur, garder l’ensemble du système sous …

Representative Results

Ici, nous avons présenté un protocole simple pour la formulation de nanocarriers capable de charger la cargaison hydrophile et hydrophobe qui sont sans danger pour les souris in vivo et de primates non humains administration11,13. Nous avons également inclus un protocole détaillé pour la synthèse du polymère utilisé dans nos résultats représentatifs, ainsi qu’une description pour la fabrication d’un instrume…

Discussion

Nous fournissons des instructions détaillées pour la fabrication rapide de polymersomes à l’aide de PEG17bl– PPS35-SH comme le copolymère à deux blocs. Polymersomes vésiculaires sont la morphologie globale primaire Assemblée à ce ratio PEG hydrophile et hydrophobes PPS bloc de poids moléculaire. Lorsque empiété plusieurs fois, ils ont un diamètre et polydispersité qui correspond polymersomes extrudée à travers une membrane nm 200 après avoir été formé par hydr…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous reconnaissons que le personnel et instrumentation prennent en charge de l’installation de biologie structurale à la Northwestern University. Le soutien de la R.H. Lurie complète Cancer Center de l’Université Northwestern et les installations de biologie structurelle Northwestern University est reconnu. Le détecteur d’électrons direct Gatan K2 a été acheté avec des fonds fournis par le Consortium de recherche biomédicale de Chicago avec l’appui des fonds Searle à The Chicago Community Trust. Nous remercions également les équipements suivants à la Northwestern University : l’installation interdisciplinaire des sciences Surface Keck, l’installation de biologie structurale, l’installation d’imagerie biologique, du Center for Advanced Molecular Imaging et l’analytique Bionanotechnologie équipement Core. Cette recherche a été financée par la subvention de la Fondation nationale des sciences 1453576, instituts nationaux de santé directeur New Innovator Award 1DP2HL132390-01, le Center for Regenerative nanomédecine Catalyst Award et le prix de catalyseur de McCormick de 2014. SDA a été en partie soutenue par les NIH pré-doctoral biotechnologie formation Grant T32GM008449.

Materials

CanaKit Raspberry Pi 3 Ultimate Starter Kit – 32 GB Edition CanaKit UPC 682710991511
Linear Bearing Platform (Small) – 8mm Diameter Adafruit 1179
Linear Motion 8 mm Shaft, 330 mm Length, Chrome Plated, Case Hardened, Metric VXB kit11868
Linear Rail Shaft Guide/Support – 8 mm Diameter Adafruit 1182
Manual-Position Precision Slide 4.5" Stroke, 15 lb load capacity McMaster-Carr 5236A16
MTPM-P10-1JK43 Iron Horse DC motor Iron Horse MTPM-P10-1JK43
Official Raspberry Pi Foundation 7" Touchscreen LCD Display Raspberry Pi B0153R2A9I (ASIN)
PicoBorg Reverse – Advanced motor control for Raspberry Pi PiBorg BURN-0011
Pololu Carrier with Sharp GP2Y0D810Z0F Digital Distance Sensor 10cm Pololu 1134
Ruland PSR16-5-4-A Set Screw Beam Coupling, Polished Aluminum, Inch, 5/16" Bore A Diameter, 1/4" Bore B Diameter, 1" OD, 1-1/4" Length, 44 lb-in Nominal Torque Ruland PSR16-5-4-A
Polyethylene glycol monomethyl ether Sigma Aldrich 202495
Methanesulfonyl chloride Sigma Aldrich 471259
Toluene Sigma Aldrich 179418
Toluene, Anhydrous Sigma Aldrich 244511
Triethylamine Sigma Aldrich T0886
Celite 545 (Diatomaceous Earth) Sigma Aldrich 419931
Dichloromethane Sigma Aldrich 320269
Diethyl ether Sigma Aldrich 296082
N,N-Dimethylformamide, anhydrous Sigma Aldrich 227056
Potassium carbonate Sigma Aldrich 791776
Thioacetic acid Sigma Aldrich T30805
Tetrahydrofuran Sigma Aldrich 360589
Aluminum oxide, neutral, activated, Brockmann I Sigma Aldrich 199974
Sodium methoxide solution, 0.5 M in methanol Sigma Aldrich 403067
Propylene sulfide Sigma Aldrich P53209
Acetic acid Sigma Aldrich A6283
Methanol Sigma Aldrich 320390
Sodium hydroxide solution 1.0 N Sigma Aldrich S2770
Endotoxin-free water GE Healthcare Life Sciences SH30529.01
Paper pH strips Fisher Scientific 13-640-508
Endotoxin-free Dulbecco's PBS Sigma Aldrich TMS-012
Borosilicate glass scintillation vials Fisher Scientific 03-337-4
1 mL all-plastic syringe Thermo Scientific S75101
Sepharose CL-6B Sigma Aldrich CL6B200
Liquid chromatography column Sigma Aldrich C4169
CIJ mixer, HDPE Custom
Triton X-100 Sigma Aldrich X100
Hydrogen peroxide solution Sigma Aldrich 216763
HEK-Blue hTLR4 InvivoGen hkb-htlr4
RAW-Blue Cells InvivoGen raw-sp
QUANTI-Blue InvivoGen rep-qb1
PYROGENT Gel Clot LAL Assays Lonza N183-125

References

  1. Stano, A., Scott, E. A., Dane, K. Y., Swartz, M. A., Hubbell, J. A. Tunable T cell immunity towards a protein antigen using polymersomes vs. solid-core nanoparticles. Biomaterials. 34 (17), 4339-4346 (2013).
  2. Discher, B. M., et al. Polymersomes: tough vesicles made from diblock copolymers. Science. 284 (5417), 1143-1146 (1999).
  3. Vasdekis, A. E., Scott, E. A., O’Neil, C. P., Psaltis, D., Hubbell, J. A. Precision intracellular delivery based on optofluidic polymersome rupture. ACS Nano. 6 (9), 7850-7857 (2012).
  4. Yi, S., et al. Tailoring Nanostructure Morphology for Enhanced Targeting of Dendritic Cells in Atherosclerosis. ACS Nano. 10 (12), 11290-11303 (2016).
  5. Shum, H. C., Kim, J. W., Weitz, D. A. Microfluidic fabrication of monodisperse biocompatible and biodegradable polymersomes with controlled permeability. Journal of the American Chemical Society. 130 (29), 9543-9549 (2008).
  6. Pessi, J., et al. Microfluidics-assisted engineering of polymeric microcapsules with high encapsulation efficiency for protein drug delivery. International Journal of Pharmaceutics. 472 (1-2), 82-87 (2014).
  7. O’Neil, C. P., Suzuki, T., Demurtas, D., Finka, A., Hubbell, J. A. A novel method for the encapsulation of biomolecules into polymersomes via direct hydration. Langmuir. 25 (16), 9025-9029 (2009).
  8. Saad, W. S., Prud’homme, R. K. Principles of nanoparticle formation by flash nanoprecipitation. Nano Today. 11 (2), 212-227 (2016).
  9. Johnson, B. K., Prud’homme, R. K. Mechanism for rapid self-assembly of block copolymer nanoparticles. Physical Review Letters. 91 (11), 118302 (2003).
  10. Han, J., et al. A simple confined impingement jets mixer for flash nanoprecipitation. Journal of Pharmaceutical Sciences. 101 (10), 4018-4023 (2012).
  11. Allen, S., Osorio, O., Liu, Y. G., Scott, E. Facile assembly and loading of theranostic polymersomes via multi-impingement flash nanoprecipitation. Journal of Controlled Release. 262, 91-103 (2017).
  12. Bobbala, S., Allen, S. D., Scott, E. A. Flash nanoprecipitation permits versatile assembly and loading of polymeric bicontinuous cubic nanospheres. Nanoscale. 10 (11), 5078-5088 (2018).
  13. Allen, S. D., et al. Polymersomes scalably fabricated via flash nanoprecipitation are non-toxic in non-human primates and associate with leukocytes in the spleen and kidney following intravenous administration. Nano Research. , (2018).
  14. Karabin, N. B., et al. Sustained micellar delivery via inducible transitions in nanostructure morphology. Nature Communications. 9 (1), 624 (2018).
  15. Mascoli, C. C., Weary, M. E. Limulus amebocyte lysate (LAL) test for detecting pyrogens in parenteral injectable products and medical devices: advantages to manufacturers and regulatory officials. Journal of the Parenteral Drug Association. 33 (2), 81-95 (1979).
  16. Pustulka, K. M., et al. Flash nanoprecipitation: particle structure and stability. Molecular Pharmaceutics. 10 (11), 4367-4377 (2013).
  17. Tang, C., Amin, D., Messersmith, P. B., Anthony, J. E., Prud’homme, R. K. Polymer directed self-assembly of pH-responsive antioxidant nanoparticles. Langmuir. 31 (12), 3612-3620 (2015).
  18. Gindy, M. E., Panagiotopoulos, A. Z., Prud’homme, R. K. Composite block copolymer stabilized nanoparticles: simultaneous encapsulation of organic actives and inorganic nanostructures. Langmuir. 24 (1), 83-90 (2008).
check_url/57793?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Allen, S., Vincent, M., Scott, E. Rapid, Scalable Assembly and Loading of Bioactive Proteins and Immunostimulants into Diverse Synthetic Nanocarriers Via Flash Nanoprecipitation. J. Vis. Exp. (138), e57793, doi:10.3791/57793 (2018).

View Video