Summary

Alvleesklier Islet insluiten voor paraffine secties

Published: June 29, 2018
doi:

Summary

Ex vivo alvleesklier islet studies zijn belangrijk voor onderzoek naar diabetes. Bestaande technieken om te studeren van gekweekte eilandjes in hun oorspronkelijke 3-dimensionale architectuur zijn zelden gebruikte, tijdrovend en inefficiënt. Dit werk beschrijft een nieuwe, eenvoudige en efficiënte methode voor het genereren van kwalitatief hoogwaardige paraffine secties van hele gekweekte eilandjes.

Abstract

Experimenten met behulp van geïsoleerde alvleesklier eilandjes zijn belangrijk voor onderzoek naar diabetes, maar eilandjes zijn duur en van beperkte overvloed. Eilandjes bevatten een gemengde celpopulatie in een gestructureerde architectuur invloed op functie en menselijke eilandjes zijn wijd variabele in cel type samenstelling. Huidige veelgebruikte methoden om te studeren van gekweekte eilandjes omvatten moleculaire onderzoeken uitgevoerd op hele eilandjes, eerste ongelijksoortige islet celtypes samen, of microscopie moleculaire studies over verspreide eilandjecellen, verstoren het eilandje platform. Voor in vivo islet studies is paraffine-ingebedde alvleesklier segmenteren een krachtige techniek om te beoordelen van cel-specifieke resultaten in de oorsprong van de alvleesklier. Studeren na cultuur eilandjes door paraffine afdelen zou bieden verschillende voordelen: detectie van meerdere resultaten op de dezelfde eilandjes (mogelijk zelfs de exacte dezelfde eilandjes, met behulp van seriële secties), cel-type-specifieke metingen en handhaving native eilandje cel-cel en cel-substraat interacties tijdens de experimentele blootstelling zowel voor analyse. Maar geïsoleerde bestaande technieken voor het insluiten van eilandjes na cultuur zijn inefficiënt, tijdrovend en gevoelig voor verlies van materiaal, en in het algemeen produceren secties met onvoldoende islet nummers nuttig voor het kwantificeren van de resultaten. Klinische pathologie laboratoriumfaciliteiten cel blok voorbereiding zijn ontoegankelijk en onpraktisch voor fundamenteel onderzoekslaboratoria. We hebben een betere, vereenvoudigde methode van bench-top dat secties met robuuste opbrengst en verdeling van de eilandjes genereert ontwikkeld. Vaste eilandjes zijn geresuspendeerde in warme histologische agarose gel en afgepipetteerde in een platte schijf op een standaard glasplaatje, zodanig dat de eilandjes worden gedistribueerd in een vliegtuig. Na standaard uitdroging en insluiten, kunnen meerdere (10 +) 4-5 µm secties worden gesneden uit hetzelfde islet blok. Met deze methode kunnen histologische en immunefluorescentie analyses worden uitgevoerd op de muis, rat en menselijke eilandjes. Dit is een effectieve, goedkope, tijdbesparende aanpak om te beoordelen van de resultaten van de cel-type-specifieke, intact-architectuur van gekweekte eilandjes.

Introduction

Pancreas: eilandjes van Langerhans, de enige bron van het Circulerend insuline, zijn een kritische weefsel voor onderzoekers bestuderen van diabetes mellitus. Van een bepaald organisme hebben eilandjes variabele grootte, cel type frequentie en het platform1,2,3. De conventionele strategie om te studeren in vivo structuur en samenstelling van de endocriene cellen van de alvleesklier eilandjes is door de alvleesklier weefsel4,5te segmenteren. Aangezien de eilandjes vormen slechts een klein deel van de alvleesklier cellulaire totaalgehalte, worden moleculaire studies uitgevoerd op geïsoleerde eilandjes. Ex vivo islet cultuur experimenten, testen van de reactie op de voedingsstoffen, bieden gene modulatie (transfectie, transductie) of experimentele behandelingen belangrijk inzicht verschaffen in de mechanismen moduleren van overleving van de endocriene cel proliferatie en functie 5 , 6.

Ex vivo islet experimenten worden vaak geanalyseerd met behulp van moleculaire studies van hele eilandjes of histologische of moleculaire studies van verspreide eilandjecellen gegroeid in enkelgelaagde5,6. Moleculaire analyse van hele eilandjes introduceert de ernstige waarschuwing van vermenging celtypes, die vals-negatieve of vals-positieve resultaten wanneer geëxtrapoleerd naar elk afzonderlijke celtype kan produceren. Cel dispersie op coverslips voor microscopie na cultuur staat van cel-type-specifieke resultaten meting, maar verstoort islet architectuur, die reactie op interventie kan wijzigen en zich verzet tegen de identificatie van het platform-gerelateerde resultaten. Daarnaast, worden in het algemeen slechts een enkel resultaat uitgedrukt; bijvoorbeeld, voor het meten van beta celproliferatie en beta celdood onder dezelfde voorwaarden, twee aparte experimenten moeten worden uitgevoerd. Deze benaderingen zijn ook blind voor inter islet variabiliteit, een ruimte van toenemende belangstelling voor het veld. Sorteer eilandjecellen door stroom cytometry voor cel-type-specifieke moleculaire studies of eencellige RNA studies zijn elegant maar duur, tijdrovend, beperkt door weefsel overvloed, uitroeiing van het platform, en niet geschikt zijn voor routinematige cel cultuur analyses 5 , 7. confocal beeldvorming van geheel-mount immunostained eilandjes levert kwalitatief hoogwaardige intact-architectuur gegevens, maar is arbeidsintensief, en gegevens die zijn verkregen van elk monster is beperkt tot resultaten identificeerbare in een enkele immunokleuring8.

De mogelijkheid voor het genereren van kwalitatief hoogwaardige paraffine secties van de hele eilandjes na cultuur zou kunnen veel van deze zorgen worden aangepakt. Hoge kosten, lage-overvloed islet weefsel van unieke genetische modellen of uit menselijke orgaandonoren of eilandjes status bericht in vivo of in vitro experimentele manipulatie, zijn kostbaar. Verkrijgen van meerdere paraffine secties van de dezelfde eilandjes zou meerdere cel-type-specifieke, intact-architectuur analyses van hetzelfde experiment.

Bestaande technieken voor het genereren van islet pellets voor afdelen zijn onvolmaakt. Histologie-geoptimaliseerde agarose is een waterige laag smeltpunt gel die veel gebruikt wordt bij de verwerking van histologische en cytologische specimens, met inbegrip van kleine en gefragmenteerde weefselsteekproeven die moeilijk te proces9. Een eilandje aanpak te embedding is naar de eilandjes in de agarose in de buis van een microcentrifuge op te schorten, centrifugeer pellet van het materiaal, ophalen van de agar stekker, dan verwerken en embed voor afdelen10,11. Het uitpakken van het gestolde monster uit de onderkant van de buis is tijdrovend en moeilijk, wat leidt tot occasionele fragmentatie van het monster en risico van lichamelijk letsel. De eilandjes zijn geconcentreerd in het uiteinde van de stekker, leiden tot onvoldoende islet verdeling in secties die deze methode verkregen. De ronde onderkant van de stekker compliceert insluiten zodat een eilandje-arme regio kan worden aangeboden voor het segmenteren. Globaal, is deze methode leidt tot lage rendement en geklonterd islet distributie in de resulterende secties.

Deze nieuwe methode is een vereenvoudigde en verbeterde aanpak voor de voorbereiding van de secties van het eilandje. Eilandjes zijn geconcentreerd in een klein volume en vervolgens geplaatst op het gladde oppervlak van een microscoopglaasje vormen een kleine schijf, met de eilandjes in een enkel vliegtuig. De Histogel-islet schijf wordt vervolgens verwerkt voor paraffine insluiten in een verkorte uitdroging en xyleen infiltratie protocol. De vorige benadering, die zich de eilandjes in de bodem van een microfuge buis concentreert, wordt ook uitgevoerd als een vergelijking. Deze nieuwe techniek verbetert het rendement van eilandjes per sectie, de verdeling van de eilandjes in elke sectie en kost minder tijd om de islet blokken naar cassettes. Deze techniek is handig voor islet biologen of andere wetenschappers bestuderen van kleine stukjes weefsel productieve willen maximaliseren van het gebruik van een lage-overvloed weefsel door het meten van meerdere resultaten op een monster in de architectuur van het oorspronkelijke weefsel.

Protocol

Alle procedures waarbij dieren zijn door de UMass Medical School institutionele Animal Care en gebruik Comité goedgekeurd. Menselijke islet studies waren door de UMass institutionele Review Board vastbesloten niet in aanmerking voor IRB review of vrijstelling omdat zij niet hebben betrekking op het gebruik van menselijke proefpersonen. 1. islet isolatie en cultuur Isoleren van eilandjes en scheiden van contaminerende exocrine en ductaal weefsel met behulp van de methode van uw keuze…

Representative Results

Een geïllustreerde schematische voorstelling van de stappen ter voorbereiding van de gel-schijf wordt weergegeven in Figuur 1. Deze gel disc methode resulteert in paraffine secties met een voldoende aantal eilandjes verspreid in een enkel vliegtuig dat zinvolle kwantificering van resultaten. Figuur 2 toont beelden van de lage-vergroting van de resulterende secties om te illustreren het aantal eilandjes gevangen per sectie. In he…

Discussion

Deze gewijzigde gel schijf-gebaseerde insluiten methode biedt een eenvoudige, goedkope en efficiënte manier voor het genereren van een hoog rendement van eilandjes per sectie. Bouw van de gel-schijf op een plat glazen oppervlak vergemakkelijkt verspreiden eilandjes in een gelijkmatige verdeling over een welomschreven gebied. Verspreiding van de eilandjes in een platte schijf biedt het voordeel van het plaatsen van de vele eilandjes in het langsvlak van deel, optimaliseren van rendement en waardoor minder eilandjes worde…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wij erkennen dankbaar de bèta cel biologie-groep bij de UMass Diabetes Center of Excellence voor nuttige adviezen en discussies. Menselijke alvleesklier eilandjes werden verstrekt door de NIDDK gefinancierde geïntegreerde Islet distributie programma (IIDP) bij stad van hoop. Dit werk werd gefinancierd door de NIH/NIDDK: R01-DK114686 (LCA), R01-DK105837 (CY), 2UC4DK098085 (IIDP) en door de American Diabetes Association verleent #1-15-BS-003 (LCA) in samenwerking met de volgorde van de Amarant.

Materials

1.5 mL Eppendorf tube Norgen Bioteck Corp P/N 10113 
Ranin Classic Starter Kit ShopRanin 17008708
Ranin ClassicPipette PR-2 ShopRanin 17008648
Low Binding Tip (1000 μL) Genesee Scientific 24-430
Low Binding Tip (200 μL) Genesee Scientific 24-412
Low Binding Tip (20 μL) Genesee Scientific 24-404
Low Binding Tip (10 μL) Genesee Scientific 24-401
10% Formalin solution Sigma HT501128
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15710-S
Heatblock VWR 949312
HistoGel Thermo Scientific HG-4000-012
Agarose blue beads- Affi-gel Bio-Rad 153-7301
Dulbecco's PBS Life technologies 14190-144
Tissue processing cassette Simport M492-10
Bio-Wraps Leica-Surgipath 3801090
Citadel 2000 tissue processor Thermo-Shandon LLC
Ethanol 200 proof Decon Laboratories, INC 2701
Xylene Fisher Chemical X5SK-4
Paraffin McCormick Scientific 39503002
Microtome Thermo-Shandon LLC Finesse ME+
Insulin antibody DAKO A0564
Glucagon antibody Sigma G2654
Fluoroshield with DAPI Sigma F6057
Alex fluor 594 secondary antibodies Life technologies A11076
Alex fluor 488 secondary antibodies Life technologies A11001

References

  1. Kim, A., Miller, K., Jo, J., Kilimnik, G., Wojcik, P., Hara, M. Islet architecture: A comparative study. Islets. 1 (2), 129-136 (2009).
  2. Steiner, D. J., Kim, A., Miller, K., Hara, M. Pancreatic islet plasticity: Interspecies comparison of islet architecture and composition. Islets. 2 (3), 135-145 (2010).
  3. Campbell-Thompson, M. L., Heiple, T., Montgomery, E., Zhang, L., Schneider, L. Staining protocols for human pancreatic islets. Journal of Visualized Experiments. (63), (2012).
  4. Da Silva Xavier, G. The Cells of the Islets of Langerhans. Journal of Clinical Medicine. 7 (3), (2018).
  5. Sharma, R. B., et al. Insulin demand regulates β cell number via the unfolded protein response. The Journal of Clinical Investigation. 125 (10), 3831-3846 (2015).
  6. Stamateris, R. E., et al. Glucose Induces Mouse β-Cell Proliferation via IRS2, MTOR, and Cyclin D2 but Not the Insulin Receptor. Diabetes. 65 (4), 981-995 (2016).
  7. Blodgett, D. M., et al. Novel observations from next-generation rna sequencing of highly purified human adult and fetal islet cell subsets. Diabetes. 64 (9), 3172-3181 (2015).
  8. Brissova, M., et al. Assessment of human pancreatic islet architecture and composition by laser scanning confocal microscopy. Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 53 (9), 1087-1097 (2005).
  9. Joiner, K. S., Spangler, E. A. Evaluation of HistoGelTM-embedded specimens for use in veterinary diagnostic pathology. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation: Official Publication of the American Association of Veterinary Laboratory Diagnosticians, Inc. 24 (4), 710-715 (2012).
  10. Cozar-Castellano, I., Takane, K. K., Bottino, R., Balamurugan, A. N., Stewart, A. F. Induction of beta-cell proliferation and retinoblastoma protein phosphorylation in rat and human islets using adenovirus-mediated transfer of cyclin-dependent kinase-4 and cyclin D1. Diabetes. 53 (1), 149-159 (2004).
  11. La Fortune, K. A., Randolph, M. L., Wu, H. H., Cramer, H. M. Improvements in cell block processing: The Cell-Gel method. Cancer Cytopathology. 125 (4), 267-276 (2017).
  12. Alonso, L. C., et al. Glucose infusion in mice: A new model to induce beta-cell replication. Diabetes. 56 (7), 1792-1801 (2007).
check_url/57931?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Kong, Y., Ebrahimpour, P., Liu, Y., Yang, C., Alonso, L. C. Pancreatic Islet Embedding for Paraffin Sections. J. Vis. Exp. (136), e57931, doi:10.3791/57931 (2018).

View Video