Summary

陰イオン交換樹脂を用いるバイオエアロゾルからのウイルスの検出

Published: August 22, 2018
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Summary

陰イオン交換樹脂ベース方法、ウイルスのバイオエアロゾルの衝突によるサンプリングを示した液体に適応します。下流分子の検出と相まって、メソッドはバイオエアロゾルからのウイルスの簡便かつ高感度検出できます。

Abstract

このプロトコルは、ウイルスのカスタマイズされたバイオエアロゾル サンプリング メソッドを示します。このシステムでは、負荷電のウイルスの効果的な濃度の液体の衝突に基づく空気サンプリング装置をバイオエアロゾルから陰イオン交換樹脂が結合されます。したがって、樹脂はバイオエアロゾル サンプリング ワークフローの添加濃度ステップとして機能します。ウイルス粒子の核酸抽出が陰イオン交換樹脂、分子解析に適した結果サンプルから直接実行されます。さらに、このプロトコル記述特注バイオエアロゾルの商工会議所の様々 な環境条件や温度、湿度などの環境変数の連続的な監視を可能にするの下でウイルスを含んだバイオエアロゾルを生成する能力が風の速度、およびエアロゾル質量濃度。このプロトコルを使用しての主な利点は、そのまま従来液体リンカーンインピン ジャーへの直接比較によって評価ウイルス検出の感度の向上です。その他の利点には、多様な負荷電ウイルス、陰イオン交換樹脂 (サンプルあたり ~$0.14)、使いやすさと低コストを集中する可能性があります。デメリットがこのプロトコルの樹脂に吸着したウイルス粒子の感染性を評価できないと液体サンプリング バッファーの最適化の必要性が、インピン内で使用される可能性があります。

Introduction

このメソッドの目的は、バイオエアロゾルからのウイルスの負荷電の分子の検出を容易にする高感度バイオエアロゾル サンプリング プラットフォームを提供することです。微生物、ウイルス粒子を含むバイオエアロゾルの時間1の長時間生き残ることができます。バイオエアロゾル比較的長距離移動し、冷却塔の影響を受けた個人から 6 km の距離に位置する工業に由来するレジオネラ症の発生によって証明されるように発芽力と感染力を維持し、18 死亡者2で起因しました。人間バイオエアロゾルを介したウイルスの間接感染は複数の設定で発生することができ、学校やレストランの3,4におけるノロウイルス感染アウトブレイクの実証されています。同様に、ウイルスのバイオエアロゾル伝送生産設備5,間のウイルスの動きの主要な要因と見なされているこの経路で豚や家禽農場で農業設定で発生する可能性6,7,8,9

どの h5 型インフルエンザ ウイルスが検出された生きている動物のバイオエアロゾル市場中国でのデモで示すように、迅速な診断と発生防止のための対策の改善のためウイルスを含んだバイオエアロゾルの効果的なサンプリングを可能とアメリカ合衆国の1011。現在バイオエアロゾル サンプリング技術は異なるパーティクル キャプチャ原則の数を含む、インピン、サイクロン、インパクター、およびフィルター12に広く分類することができます。それはこのプロトコルのすべての利点を余すところなくカバーするの範囲とバイオエアロゾル; からウイルスのサンプリングのためのこれらのプラットフォームのデメリットを超えてただし、これらのサンプリング デバイスの大半がウイルスやバクテリオファージ13コレクションの最適化されていない記述できます。さらに、液体のインピン固体インパクターやフィルター14などのデバイスのサンプリングよりもより効果的にウイルスの感染性を維持するために考えと、ウイルス粒子の感染はしばしば否定的影響します。液体の衝突の 1 つの欠点はターゲットの希釈効果、ウイルスにコレクションの容器内の液体の比較的大きなボリューム (通常 ≥20 mL) で収集するために発生します。もう一つの重要な欠点を含む粒子を濃縮する液体インピンの最適効率 < サイズ150.5 μ M。ただし、固定は、ウイルス核酸とウイルス感染16,17の保存を高めることができるとこれらの装置の捕集効率を固体マトリックスに固定化によって改善できます。

我々 は以前陰イオン交換樹脂がキャプチャと F RNA バクテリオファージ、A 型肝炎ウイルス、ヒト アデノ ウイルスやロタウイルス18,19 を含む液体の行列からのウイルスの集中のための効果的なツールであることを示しています。 ,20。製造元によって定義された、本研究で陰イオン交換樹脂は機能性第四紀アミン グループの仲介する魅力と21液中の陰イオンのキャプチャ用いたポリスチレン強基本陰イオン交換樹脂.その結果、陰イオン交換樹脂は、net 負の表面電荷、多く腸管系ウイルス、インフルエンザ ウイルス、公共と動物の健康に関連するその他のウイルスなどのウイルスをキャプチャする予定です。

現在のプロトコルは、液体インピンに陰イオン交換樹脂の付加を含みます。このシステムでは、樹脂はインピン液体で捕獲したウイルス粒子のセカンダリ濃度ステップとして機能します。核酸は、小さなボリューム、分子解析の集中のサンプルを提供することで直接溶出することができます。したがって、このメソッドの主な利点は、主にサンプル量の削減を通じて、ウイルス検出感度の改善です。さらに、ウイルスの負荷電の固有の非特異的キャプチャ、ためメソッドは可能性があります興味のあるウイルスの大規模な数の検出のために適当。ここでは、メソッドは、ワクチン株の A 型と B 型のインフルエンザ ウイルスと FRNA ファージ MS2 (MS2) に示されています。これらのウイルスでは、前述の22として標準 qRT PCR の試金を使用して検出されます後。エンドポイント ユーザーは困難に遭遇、このメソッドを実行するために期待しないでください現在既存の修正装置はバイオエアロゾル サンプリング及び分析の従来の流れに大きな混乱を構成しません。

Protocol

1. バイオエアロゾルの部屋のセットアップ (図 2参照) 20 ml の 0.01 M リン酸緩衝生理食塩水、pH 7.5 (PBS) の液体のインピンのスプリングプリ ロードします。 陰イオン交換樹脂の 0.5 g を追加し、1 つのコントロールとして別の液体インピンに液体のインピン PBS 中に一時停止します。 クランプ スタンドを用いたネブライザーに直…

Representative Results

図 1は、インピンの液状樹脂の含有によりバイオエアロゾルからウイルスのキャプチャを充電ベースの背後にある原理を示しています。図 2は、特注のバイオエアロゾルの部屋のセットアップを示しています。図 3では、エアロゾル化実験と措置の設定品質管理を確保するために必要な手順について説?…

Discussion

このプロトコルは、使用変更された液体インピン バイオエアロゾルから機密のウイルス キャプチャする方法をについて説明します。メソッドは、バイオエアロゾルのウイルス負荷の検出と定量に最適です。ここに示す特定の変更は、一般的な液体インピンに含まれる液体を陰イオン交換樹脂の付加を含みます。このメソッドは、遠心分離、ろ過、沈殿法などサンプル加工技術は、このよう?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作業は、農業の保健及び安全性 (5U54OH008085) の CDC/NIOSH 高平原 Intermountain センターとコロラド州バイオ検出評価助成プログラム (14BGF 16) からの資金によって支えられました。

Materials

Escherichia coli bacteriophage MS2 (ATCC 15597-B1) American Type Culture Collection ATCC 15597-B1
FluMist Quadrivalent AstraZeneca Contact manufacturer Viral constitutents of this vaccine are subject to change on an annual basis
CFX96 Touch Real-Time PCR Detection System Bio-Rad 1855195
Primers and probes Integrated DNA Technologies NA
0.2 µM sterile filter NA NA
1 L pyrex bottles or equivalent NA NA
1 mL pipet tips NA NA
1 mL pipettor NA NA
50 mL serological pipet NA NA
PCR tubes NA NA
Pipet-aid or equivalent NA NA
QIAamp Viral RNA Mini Kit Qiagen 52904
QuantiTect Probe RT-PCR Kit Qiagen 204443
Amberlite IRA-900 chloride form Sigma-Aldrich 216585-500G
Phosphate buffered saline Sigma-Aldrich P5368-10PAK
Water (molecular biology grade) Sigma-Aldrich W4502-1L
Eppendorf DNA LoBind Microcentrifuge Tubes ThermoFisher 13-698-791
Falcon 50 mL Conical Centrifuge Tubes  ThermoFisher 14-432-22
Falcon Polypropylene Centrifuge Tubes ThermoFisher 05-538-62
SuperScript III Platinum One-Step qRT-PCR Kit w/ROX ThermoFisher 11745100
SKC Biosampler 20 mL, 3-piece glass set SKC Inc. 225-9593
Vac-u-Go sample pumps SKC Inc. 228-9695
Collison nebulizer (6-jet) BGI Inc. NA
HEPA capsule PALL 12144
Q-TRAK indoor air quality monitor 8554 TSI Inc. NA
Alnor velometer thermal anemometer AVM440-A TSI Inc. NA
SidePak AM510 personal aerosol monitor TSI Inc. NA
Bioaerosol chamber NA NA

References

  1. Pirtle, E. C., Beran, G. W. Virus survival in the environment. Revue scientifique et technique (International Office of Epizootics). 10 (3), 733-748 (1991).
  2. Nguyen, T. M., et al. A community-wide outbreak of legionnaires disease linked to industrial cooling towers–how far can contaminated aerosols spread?. The Journal of Infectious Diseases. 193 (1), 102-111 (2006).
  3. Marks, P. J., et al. Evidence for airborne transmission of Norwalk-like virus (NLV) in a hotel restaurant. Epidemiology and Infection. 124 (3), 481-487 (2000).
  4. Marks, P. J., et al. A school outbreak of Norwalk-like virus: Evidence for airborne transmission. Epidemiology and Infection. 131 (1), 727-736 (2003).
  5. Corzo, C. A., Culhane, M., Dee, S., Morrison, R. B., Torremorell, M. Airborne detection and quantification of swine influenza a virus in air samples collected inside, outside and downwind from swine barns. PLoS One. 8 (8), e71444 (2013).
  6. Anderson, B. D., et al. Bioaerosol sampling in modern agriculture: A novel approach for emerging pathogen surveillance. The Journal of Infectious Diseases. 214 (4), 537-545 (2016).
  7. Hietala, S. K., Hullinger, P. J., Crossley, B. M., Kinde, H., Ardans, A. A. Environmental air sampling to detect exotic Newcastle disease virus in two California commercial poultry flocks. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 17 (2), 198-200 (2005).
  8. Jonges, M., et al. Wind-mediated spread of low-pathogenic avian influenza virus into the environment during outbreaks at commercial poultry farms. PLoS One. 10 (5), e0125401 (2015).
  9. Otake, S., Dee, S. A., Jacobson, L., Torremorell, M., Pijoan, C. Evaluation of aerosol transmission of porcine reproductive and respiratory syndrome virus under controlled field conditions. The Veterinary Record. 150 (26), 804-808 (2002).
  10. Wu, Y., et al. Aerosolized avian influenza A (H5N6) virus isolated from a live poultry market, China. The Journal of Infection. 74 (1), 89-91 (2017).
  11. Choi, M. J., et al. Live animal markets in Minnesota: A potential source for emergence of novel influenza A viruses and interspecies transmission. Clinical Infectious Diseases. 61 (9), 1355-1362 (2015).
  12. Haig, C. W., Mackay, W. G., Walker, J. T., Williams, C. Bioaerosol sampling: Sampling mechanisms, bioefficiency and field studies. The Journal of Hospical Infection. 93 (3), 242-255 (2016).
  13. Anderson, B. D., Lednicky, J. A., Torremorell, M., Gray, G. C. The use of bioaerosol aampling for airborne virus surveillance in swine production facilities: A mini review. Frontiers in Veterinary Science. 4, 121 (2017).
  14. Verreault, D., Moineau, S., Duchaine, C. Methods for sampling of airborne viruses. Microbiology and Molecular Biology Reviews. 72 (3), 413-444 (2008).
  15. Hogan, C. J. Sampling methodologies and dosage assessment techniques for submicrometre and ultrafine virus aerosol particles. Journal of Applied Microbiology. 99 (6), 1422-1434 (2005).
  16. Yu, K. -. P., Chen, Y. -. P., Gong, J. -. Y., Chen, Y. -. C., Cheng, C. -. C. Improving the collection efficiency of the liquid impinger for ultrafine particles and viral aerosols by applying granular bed filtration. Journal of Aerosol Science. 101, 133-143 (2016).
  17. Perez-Mendez, A., et al. Evaluation of a simple and cost effective filter paper-based shipping and storage medium for environmental sampling of F-RNA coliphages. J Virol Methods. 194 (1-2), 60-66 (2013).
  18. Chandler, J. C., et al. Field-based evaluation of a male-specific (F+) RNA coliphage concentration method. Journal of Virological Methods. 239, 9-16 (2017).
  19. Perez-Mendez, A., Chandler, J. C., Bisha, B., Goodridge, L. D. Concentration of enteric viruses from tap water using an anion exchange resin-based method. Journal of Virological Methods. 206, 95-98 (2014).
  20. Perez-Mendez, A., Chandler, J. C., Bisha, B., Goodridge, L. D. Evaluation of an anion exchange resin-based method for concentration of F-RNA coliphages (enteric virus indicators) from water samples. Journal of Virological Methods. 204, 109-115 (2014).
  21. Kammerer, J., Carle, R., Kammerer, D. R. Adsorption and ion exchange: Basic principles and their application in food processing. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 59 (1), 22-42 (2011).
  22. Chandler, J. C., et al. A method for the improved detection of aerosolized influenza viruses and the male-specific (F+) RNA coliphage MS2. Journal of Virological Methods. 246, 38-41 (2017).
  23. Friedman, S. D., Cooper, E. M., Calci, K. R., Genthner, F. J. Design and assessment of a real time reverse transcription-PCR method to genotype single-stranded RNA male-specific coliphages (Family Leviviridae). Journal of Virological Methods. 173 (2), 196-202 (2011).
  24. Selvaraju, S. B., Selvarangan, R. Evaluation of three influenza A and B real-time reverse transcription-PCR assays and a new 2009 H1N1 assay for detection of influenza viruses. Journal of Clinical Microbiology. 48 (11), 3870-3875 (2010).
  25. Cademartiri, R., et al. Immobilization of bacteriophages on modified silica particles. Biomaterials. 31 (7), 1904-1910 (2010).
  26. Michen, B., Graule, T. Isoelectric points of viruses. Journal of Appled Microbiology. 109 (2), 388-397 (2010).
  27. Turgeon, N., Toulouse, M. J., Martel, B., Moineau, S., Duchaine, C. Comparison of five bacteriophages as models for viral aerosol studies. Applied and Environmental Microbiology. 80 (14), 4242-4250 (2014).
  28. Vergara, G. G., et al. Evaluation of FRNA coliphages as indicators of human enteric viruses in a tropical urban freshwater catchment. Water Research. 79, 39-47 (2015).
  29. Tung-Thompson, G., Libera, D. A., Koch, K. L., de Los Reyes, F. L., Jaykus, L. A. Aerosolization of a human norovirus surrogate, bacteriophage MS2, during simulated vomiting. PLoS One. 10 (8), e0134277 (2015).
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Schaeffer, J. W., Chandler, J. C., Davidson, M., Magzamen, S. L., Pérez-Méndez, A., Reynolds, S. J., Goodridge, L. D., Volckens, J., Franklin, A. B., Shriner, S. A., Bisha, B. Detection of Viruses from Bioaerosols Using Anion Exchange Resin. J. Vis. Exp. (138), e58111, doi:10.3791/58111 (2018).

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