Summary

आयनों एक्सचेंज राल का उपयोग कर एयरोसोल्स से वायरस का पता लगाने

Published: August 22, 2018
doi:

Summary

एक आयनों एक्सचेंज राल आधारित विधि, तरल भिडंत के लिए अनुकूलित-आधारित वायरस के एयरोसोल नमूना प्रदर्शित किया जाता है । बहाव आणविक पता लगाने के साथ युग्मित करते हैं, विधि सतही और संवेदनशील एयरोसोल्स से वायरस का पता लगाने के लिए अनुमति देता है ।

Abstract

इस प्रोटोकॉल वायरस के लिए एक स्वनिर्धारित एयरोसोल नमूना विधि दर्शाता है । इस प्रणाली में, आयनों एक्सचेंज राल तरल भिडंत के साथ युग्मित है-आधारित हवा नमूना उपकरणों के प्रभावोत्पादक एकाग्रता के लिए नकारात्मक-एयरोसोल्स से आरोप लगाया वायरस । इस प्रकार, राल में एक अतिरिक्त एकाग्रता कदम के रूप में कार्य करता है एयरोसोल नमूना कार्यप्रवाह. वायरल कणों की न्यूक्लिक एसिड निष्कर्षण तो आयनों एक्सचेंज राल से सीधे किया जाता है, जिसके परिणामस्वरूप नमूना आणविक विश्लेषण के लिए उपयुक्त के साथ. इसके अलावा, इस प्रोटोकॉल का वर्णन एक कस्टम निर्मित एयरोसोल पर्यावरण की स्थिति की एक किस्म के तहत वायरस से लदी एयरोसोल पैदा करने में सक्षम है और ऐसे तापमान, आर्द्रता के रूप में पर्यावरण चर की सतत निगरानी के लिए अनुमति हवा की गति, और एयरोसोल जन एकाग्रता । इस प्रोटोकॉल का उपयोग करने का मुख्य लाभ वायरल का पता लगाने की संवेदनशीलता बढ़ जाती है, के रूप में एक unmodified पारंपरिक तरल pinger के लिए प्रत्यक्ष तुलना के द्वारा मूल्यांकन । अंय लाभ के लिए विभिंन नकारात्मक-वायरस का आरोप लगाया, आयनों विनिमय राल की कम लागत (~ नमूना प्रति $०.१४), और उपयोग में आसानी ध्यान देने की क्षमता शामिल हैं । नुकसान इस प्रोटोकॉल की अक्षमता को राल के infectivity-adsorbed वायरल कणों का आकलन शामिल है, और संभावित तरल नमूना के अनुकूलन के लिए की जरूरत है unpinger के भीतर इस्तेमाल बफर ।

Introduction

इस विधि के प्रयोजन के लिए एक अति संवेदनशील एयरोसोल नमूना मंच प्रदान करने के लिए एक गैर-एयरोसोल्स से नकारात्मक आरोप लगाया वायरस का आणविक पता लगाने की सुविधा है । सूक्ष्मजीवों, वायरल कणों सहित, समय की विस्तारित अवधि के लिए1में जीवित रह सकते हैं । एयरोसोल अपेक्षाकृत लंबी दूरी पर यात्रा कर सकते है और व्यवहार्यता और infectivity बनाए रखने, के रूप में ‘ Legionnaires रोग है कि औद्योगिक ठंडा प्रभावित व्यक्तियों से 6 किमी की दूरी पर स्थित टावरों से उत्पंन के प्रकोप का सबूत है और परिणामस्वरूप 18 मौत2. मानव के लिए वायरस के अप्रत्यक्ष संचरण के लिए एक से अधिक की मध्यस्थता कर सकते हैं और कई सेटिंग्स में हो सकता है और स्कूलों और रेस्तरां में नोरोवायरस प्रकोपों के लिए प्रदर्शन किया गया है3,4. इसी प्रकार, विषाणुओं के एयरोसोल संचरण में ऐसी सूअर और पोल्ट्री फार्मों के रूप में कृषि सेटिंग्स में हो सकता है, इस संचरण मार्ग के साथ उत्पादन सुविधाओं के बीच वायरस की आवाजाही में एक प्रमुख कारक के रूप में माना जा रहा है5, 6 , 7 , 8 , 9.

वायरस से लदी एयरोसोल का प्रभावी नमूना तेजी से निदान और प्रकोप की रोकथाम के लिए तैयारियों में सुधार के लिए अनुमति देता है, के रूप में प्रदर्शनों में दिखाया जिसमें H5 इंफ्लूएंजा एक वायरस चीन में रहते पशु बाजारों में और एयरोसोल्स से पता लगाया गया संयुक्त राज्य अमेरिका10,11। मौजूदा एयरोसोल नमूना प्रौद्योगिकियों विभिंन कण पर कब्जा सिद्धांतों की एक संख्या शामिल है, और मोटे तौर पर, और चक्रवात, प्रभाव, और फिल्टर12में वर्गीकृत किया जा सकता है । यह इस प्रोटोकॉल के दायरे से बाहर है exhaustively सभी लाभों और इन प्लेटफार्मों के नुकसान के लिए एक एयरोसोल से वायरस के नमूने कवर; हालांकि, यह कहा जा सकता है कि इन नमूना उपकरणों के बहुमत वायरस और bacteriophages13के संग्रह के लिए अनुकूलित नहीं किया गया है । इसके अलावा, वायरल कणों की infectivity अक्सर नकारात्मक प्रभावित होता है, तरल के साथ वायरल infectivity को बनाए रखने के लिए माना जाता है और अधिक प्रभावी ढंग से ठोस प्रभाव या14फिल्टर के रूप में नमूने उपकरणों से । हालांकि, तरल भिडंत का एक नुकसान लक्ष्य कमजोर पड़ने प्रभाव है, जो होता है क्योंकि वायरस अपेक्षाकृत बड़ी मात्रा में एकत्र कर रहे हैं (आमतौर पर ≥ 20 एमएल) तरल के संग्रह पोत में. एक अंय महत्वपूर्ण नुकसान तरल pingers की उपइष्टतम क्षमता शामिल है कणों ध्यान केंद्रित करने के लिए < 0.5 µ m आकार15में । हालांकि, इन उपकरणों की दक्षता कैप्चर ठोस मैट्रिक्स पर स्थिरीकरण द्वारा सुधार किया जा सकता है, के रूप में स्थिरीकरण वायरल न्यूक्लिक एसिड और वायरल infectivity16,17के संरक्षण में वृद्धि कर सकते हैं ।

हम पहले से प्रदर्शित किया है कि आयनों एक्सचेंज राल कब्जा और तरल मैट्रिक्स से वायरस की एकाग्रता के लिए एक प्रभावी उपकरण है, जिसमें F-आरएनए bacteriophages, हेपेटाइटिस ए वायरस, मानव एडीनोवायरस, और रोटावायरस18,19 ,20. के रूप में निर्माता द्वारा परिभाषित, आयनों विनिमय राल इस काम में उपयोग एक macroreticular polystyrene मजबूत आधार आयनों विनिमय राल जिसमें कार्यात्मक चतुर्धातुक अमीन समूह मध्यस्थता आकर्षण और एक तरल मध्यम में ॠणायन का कब्जा21 . नतीजतन, आयनों एक्सचेंज राल के साथ वायरस पर कब्जा करने की उंमीद है नेट नकारात्मक सतह शुल्क, सहित कई प्रवेश वायरस, इंफ्लूएंजा वायरस और अंय सार्वजनिक और पशु स्वास्थ्य के लिए प्रासंगिक वायरस ।

वर्तमान प्रोटोकॉल एक तरल pinger के लिए आयनों विनिमय राल के अलावा शामिल है । इस प्रणाली में, राल वायरल के लिए एक द्वितीयक एकाग्रता कदम के रूप में कार्य करता है pinger तरल में कब्जा कर लिया कणों । न्यूक्लिक एसिड तो सीधे छोटी मात्रा में eluted, आणविक विश्लेषण के लिए एक केंद्रित नमूना प्रदान कर सकते हैं । इस प्रकार, इस विधि का मुख्य लाभ वायरल का पता लगाने संवेदनशीलता में सुधार है, मुख्य रूप से नमूना मात्रा में कमी के माध्यम से. इसके अतिरिक्त, नकारात्मक-आरोपित वायरस के अंतर्निहित गैर-विशिष्ट कैप्चर के कारण, विधि ब्याज के वायरस की एक बड़ी संख्या का पता लगाने के लिए लागू होने की संभावना है । यहां, विधि प्रकार एक और प्रकार बी इंफ्लूएंजा वायरस और FRNA coliphage MS2 (MS2) के टीके उपभेदों के लिए प्रदर्शन किया है । इन वायरस बाद में पहले वर्णित के रूप में22मानक qRT-पीसीआर परख का उपयोग कर पता चला रहे हैं । अंत बिंदु उपयोगकर्ता इस पद्धति के प्रदर्शन में कठिनाइयों का सामना करने की उंमीद नहीं करनी चाहिए, क्योंकि वर्तमान में मौजूदा उपकरणों के संशोधनों के लिए एक एयरोसोल नमूना और विश्लेषण के पारंपरिक प्रवाह के लिए प्रमुख व्यवधान का गठन नहीं है ।

Protocol

1. एयरोसोल चैंबर के सेटअप ( चित्रा 2देखें) पूर्व लोड ०.०१ एम फॉस्फेट के 20 मिलीलीटर के साथ तरल pings बफर खारा, पीएच ७.५ (पंजाब) । जोड़ें ०.५ आयनों एक्सचेंज राल के जी और एक तरल pingers के पंजाब के …

Representative Results

चित्रा 1 तरल आधारित pingers में राल के शामिल किए जाने के माध्यम से आरोप के पीछे सिद्धांत-एयरोसोल्स से वायरस के आधार पर कब्जा को दर्शाता है । चित्रा 2 कस्टम निर्मित एयरोसोल च…

Discussion

इस प्रोटोकॉल को संशोधित तरल pingers का उपयोग कर एयरोसोल्स से संवेदनशील वायरल पर कब्जा करने के लिए एक विधि रूपरेखा । विधि का पता लगाने और ठहराव में वायरल लोड के लिए अनुकूलित है । विशिष्ट संशोधन यहां का प्रदर?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

यह काम सीडीसी/NIOSH उच्च मैदानी कृषि स्वास्थ्य और सुरक्षा (5U54OH008085) और कोलोराडो विज्ञान डिस्कवरी मूल्यांकन अनुदान कार्यक्रम (14BGF-16) के लिए केंद्र से धन द्वारा समर्थित किया गया था ।

Materials

Escherichia coli bacteriophage MS2 (ATCC 15597-B1) American Type Culture Collection ATCC 15597-B1
FluMist Quadrivalent AstraZeneca Contact manufacturer Viral constitutents of this vaccine are subject to change on an annual basis
CFX96 Touch Real-Time PCR Detection System Bio-Rad 1855195
Primers and probes Integrated DNA Technologies NA
0.2 µM sterile filter NA NA
1 L pyrex bottles or equivalent NA NA
1 mL pipet tips NA NA
1 mL pipettor NA NA
50 mL serological pipet NA NA
PCR tubes NA NA
Pipet-aid or equivalent NA NA
QIAamp Viral RNA Mini Kit Qiagen 52904
QuantiTect Probe RT-PCR Kit Qiagen 204443
Amberlite IRA-900 chloride form Sigma-Aldrich 216585-500G
Phosphate buffered saline Sigma-Aldrich P5368-10PAK
Water (molecular biology grade) Sigma-Aldrich W4502-1L
Eppendorf DNA LoBind Microcentrifuge Tubes ThermoFisher 13-698-791
Falcon 50 mL Conical Centrifuge Tubes  ThermoFisher 14-432-22
Falcon Polypropylene Centrifuge Tubes ThermoFisher 05-538-62
SuperScript III Platinum One-Step qRT-PCR Kit w/ROX ThermoFisher 11745100
SKC Biosampler 20 mL, 3-piece glass set SKC Inc. 225-9593
Vac-u-Go sample pumps SKC Inc. 228-9695
Collison nebulizer (6-jet) BGI Inc. NA
HEPA capsule PALL 12144
Q-TRAK indoor air quality monitor 8554 TSI Inc. NA
Alnor velometer thermal anemometer AVM440-A TSI Inc. NA
SidePak AM510 personal aerosol monitor TSI Inc. NA
Bioaerosol chamber NA NA

References

  1. Pirtle, E. C., Beran, G. W. Virus survival in the environment. Revue scientifique et technique (International Office of Epizootics). 10 (3), 733-748 (1991).
  2. Nguyen, T. M., et al. A community-wide outbreak of legionnaires disease linked to industrial cooling towers–how far can contaminated aerosols spread?. The Journal of Infectious Diseases. 193 (1), 102-111 (2006).
  3. Marks, P. J., et al. Evidence for airborne transmission of Norwalk-like virus (NLV) in a hotel restaurant. Epidemiology and Infection. 124 (3), 481-487 (2000).
  4. Marks, P. J., et al. A school outbreak of Norwalk-like virus: Evidence for airborne transmission. Epidemiology and Infection. 131 (1), 727-736 (2003).
  5. Corzo, C. A., Culhane, M., Dee, S., Morrison, R. B., Torremorell, M. Airborne detection and quantification of swine influenza a virus in air samples collected inside, outside and downwind from swine barns. PLoS One. 8 (8), e71444 (2013).
  6. Anderson, B. D., et al. Bioaerosol sampling in modern agriculture: A novel approach for emerging pathogen surveillance. The Journal of Infectious Diseases. 214 (4), 537-545 (2016).
  7. Hietala, S. K., Hullinger, P. J., Crossley, B. M., Kinde, H., Ardans, A. A. Environmental air sampling to detect exotic Newcastle disease virus in two California commercial poultry flocks. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 17 (2), 198-200 (2005).
  8. Jonges, M., et al. Wind-mediated spread of low-pathogenic avian influenza virus into the environment during outbreaks at commercial poultry farms. PLoS One. 10 (5), e0125401 (2015).
  9. Otake, S., Dee, S. A., Jacobson, L., Torremorell, M., Pijoan, C. Evaluation of aerosol transmission of porcine reproductive and respiratory syndrome virus under controlled field conditions. The Veterinary Record. 150 (26), 804-808 (2002).
  10. Wu, Y., et al. Aerosolized avian influenza A (H5N6) virus isolated from a live poultry market, China. The Journal of Infection. 74 (1), 89-91 (2017).
  11. Choi, M. J., et al. Live animal markets in Minnesota: A potential source for emergence of novel influenza A viruses and interspecies transmission. Clinical Infectious Diseases. 61 (9), 1355-1362 (2015).
  12. Haig, C. W., Mackay, W. G., Walker, J. T., Williams, C. Bioaerosol sampling: Sampling mechanisms, bioefficiency and field studies. The Journal of Hospical Infection. 93 (3), 242-255 (2016).
  13. Anderson, B. D., Lednicky, J. A., Torremorell, M., Gray, G. C. The use of bioaerosol aampling for airborne virus surveillance in swine production facilities: A mini review. Frontiers in Veterinary Science. 4, 121 (2017).
  14. Verreault, D., Moineau, S., Duchaine, C. Methods for sampling of airborne viruses. Microbiology and Molecular Biology Reviews. 72 (3), 413-444 (2008).
  15. Hogan, C. J. Sampling methodologies and dosage assessment techniques for submicrometre and ultrafine virus aerosol particles. Journal of Applied Microbiology. 99 (6), 1422-1434 (2005).
  16. Yu, K. -. P., Chen, Y. -. P., Gong, J. -. Y., Chen, Y. -. C., Cheng, C. -. C. Improving the collection efficiency of the liquid impinger for ultrafine particles and viral aerosols by applying granular bed filtration. Journal of Aerosol Science. 101, 133-143 (2016).
  17. Perez-Mendez, A., et al. Evaluation of a simple and cost effective filter paper-based shipping and storage medium for environmental sampling of F-RNA coliphages. J Virol Methods. 194 (1-2), 60-66 (2013).
  18. Chandler, J. C., et al. Field-based evaluation of a male-specific (F+) RNA coliphage concentration method. Journal of Virological Methods. 239, 9-16 (2017).
  19. Perez-Mendez, A., Chandler, J. C., Bisha, B., Goodridge, L. D. Concentration of enteric viruses from tap water using an anion exchange resin-based method. Journal of Virological Methods. 206, 95-98 (2014).
  20. Perez-Mendez, A., Chandler, J. C., Bisha, B., Goodridge, L. D. Evaluation of an anion exchange resin-based method for concentration of F-RNA coliphages (enteric virus indicators) from water samples. Journal of Virological Methods. 204, 109-115 (2014).
  21. Kammerer, J., Carle, R., Kammerer, D. R. Adsorption and ion exchange: Basic principles and their application in food processing. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 59 (1), 22-42 (2011).
  22. Chandler, J. C., et al. A method for the improved detection of aerosolized influenza viruses and the male-specific (F+) RNA coliphage MS2. Journal of Virological Methods. 246, 38-41 (2017).
  23. Friedman, S. D., Cooper, E. M., Calci, K. R., Genthner, F. J. Design and assessment of a real time reverse transcription-PCR method to genotype single-stranded RNA male-specific coliphages (Family Leviviridae). Journal of Virological Methods. 173 (2), 196-202 (2011).
  24. Selvaraju, S. B., Selvarangan, R. Evaluation of three influenza A and B real-time reverse transcription-PCR assays and a new 2009 H1N1 assay for detection of influenza viruses. Journal of Clinical Microbiology. 48 (11), 3870-3875 (2010).
  25. Cademartiri, R., et al. Immobilization of bacteriophages on modified silica particles. Biomaterials. 31 (7), 1904-1910 (2010).
  26. Michen, B., Graule, T. Isoelectric points of viruses. Journal of Appled Microbiology. 109 (2), 388-397 (2010).
  27. Turgeon, N., Toulouse, M. J., Martel, B., Moineau, S., Duchaine, C. Comparison of five bacteriophages as models for viral aerosol studies. Applied and Environmental Microbiology. 80 (14), 4242-4250 (2014).
  28. Vergara, G. G., et al. Evaluation of FRNA coliphages as indicators of human enteric viruses in a tropical urban freshwater catchment. Water Research. 79, 39-47 (2015).
  29. Tung-Thompson, G., Libera, D. A., Koch, K. L., de Los Reyes, F. L., Jaykus, L. A. Aerosolization of a human norovirus surrogate, bacteriophage MS2, during simulated vomiting. PLoS One. 10 (8), e0134277 (2015).
check_url/58111?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Schaeffer, J. W., Chandler, J. C., Davidson, M., Magzamen, S. L., Pérez-Méndez, A., Reynolds, S. J., Goodridge, L. D., Volckens, J., Franklin, A. B., Shriner, S. A., Bisha, B. Detection of Viruses from Bioaerosols Using Anion Exchange Resin. J. Vis. Exp. (138), e58111, doi:10.3791/58111 (2018).

View Video