Summary

一种改进的高通量呼吸道合胞病毒 (rsv) 微中和检测方法

Published: January 26, 2019
doi:

Summary

本研究描述了一种高吞吐量 、基于图像的微中和方法, 以确定呼吸合胞病毒 (rsv) 特异性中和抗体的滴度。这种检测格式已在不同的样品类型上进行了测试。

Abstract

呼吸道合胞病毒特异性中和抗体 (rsv nabs) 是预防 rsv 的重要标志。目前全球有许多不同的检测格式在使用, 因此需要一种精确、高吞吐量的方法来测量 rsv nabs。我们在这里描述了一种基于图像的微中和试验, 该方法已在 rsv a 亚群上进行了测试, 也可适用于 rsv b 亚群和不同的样本类型。该方法具有高度重现性, 参考抗血清的测定变化小于10%。我们相信, 这种检测方法可以很容易地在全球许多实验室以相对较低的成本建立。开发一种测量 rsv nabs 的改进的高通量检测方法, 是在国际上实现 rsv nabs 标准化的一个重要步骤, 也是今后评价新型 rsv 疫苗候选疫苗的关键。

Introduction

呼吸道合胞病毒 (rsv) 是全世界儿科人群下呼吸道感染的主要原因1。尽管负担很重, 但仍然没有疫苗或治疗方法。自2013年以来, 世界卫生组织 (世卫组织) 已宣布 rsv 疫苗的开发为主要研究优先事项, 世卫组织年度协商会议为 23.世卫组织已同意使用 rsv 中和抗体 (nab) 测量来监测疫苗的免疫原性, 因为这被认为是保护主要血清学标志4。nab 已被证明可以防止严重的 rsv 感染在一些研究以及临床试验的抗 rsv 单克隆抗体 palizumab, 目前唯一的预防策略可用4。

世界各地的实验室使用多种 nab 检测格式, 包括基于细胞和分子的检测, 这使得标准化工作对 5678具有挑战性。然而, 传统的减少斑块中和 (prn) 方法仍然是金标准 9, 该方法通过存在 rsv 特异性抗体来测量减少的斑块形成单元 (pfu)的数量。在这里, 我们报告了一个改进、简化和高通量的 prn 协议, 该协议可用于多种细胞系, 适用于不同的 rsv 菌株, 并提高了检测吞吐量。该方案已使用来自不同环境的临床样本以及动物模型实验的样本进行了测试。

Protocol

请注意:所有步骤都必须在 bsl2 引擎盖中执行, 除非另有说明。病毒滴定是需要在 prn 检测之前, 以确定在 prn 检测中使用的最佳 rsv 浓度。建议将病毒库存小批量, 将解冻一次, 并用于每次 nab 检测。还建议对一项研究中的所有样本进行的所有 nab 检测使用相同的病毒库存。在添加细胞板之前, 请确保培养基和磷酸盐缓冲盐水 (pbs) 在37°c 加热。 1. rsv 病毒滴定 <p class="…

Representative Results

病毒库存的滴定从1:10 到 1:10 8 稀释, 以确定 prn 检测前的病毒库存浓度 (图5所示的代表性结果)。从图 5中, 在稀释量为 1:10 4 和 1:10 5时, 可以可靠地计算 pfu。计算了同一稀释情况下三井的 pfu 平均数量。由于 1:10 5 稀释时的平均斑点数为 14, 因此确定了这种病毒库存的病毒滴度如下: <p class="jove_c…

Discussion

我们开发和优化了一种简单高效的 rsv 微中和检测方法, 可在大多数实验室轻松应用。该方法能够测量病毒感染能力, 并通过计算机扫描在细胞层面测量 nab 对病毒感染的抑制。与传统的斑块检测方法 67相比, 基于图像的平台和特定抗体系统的使用提高了点检测的特异性和敏感性。这使得 rsv 菌株的特征具有较低的传染性, 并提供了准确的定量 rsv 浓度之?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

作者感谢所有相关参与者。我们感谢维多利亚州政府的运营基础设施支持计划。pvl 是 nhmrc 职业发展奖学金获得者。

Materials

Cell line
A549 ATCC CCL-185 provided by Dr Keith Chappell, University of Queensland
Viral strains
RSV A2 ATCC VR-1540 lot number 60430286
Reagents
Acetone Merck 1000142511
Alexa-Fluor donkey anti-goat IgG (stored at 4 °C) Life Technologies A11055
CMC sodium salt powder Sigma-Aldrich C5678-500G
DMEM (no serum, 3.7 g/L NaHC, P/S) (stored at 4 °C) Scientific Services – Tissue Culture MCRI in house supply
Foetal calf Serum (stored in 50ml aliquots at -20 °C) Interpath SFBS-F
Goat X RSV antibody Merck AB1128
human polyclonal antiserum to respiratory syncytial virus (RSV) (stored in 45 µL aliquots at -20 °C) BEI Resources NR-4022 Free order through BEI Resources upon registration. This serum belong to a panel of human antiserum and immune globulin to RSV (NR-32832)
M199 powder Life Technologies 31100035
Milk diluent blocking solution (stored at 4 °C) Australian Biosearch 50-82-01
Penicillin/Streptomycin (stored in 6mL aliquots at -20 °C) Life Technologies 15140122
s.d.H2O from Milli-Q dispenser Merck In-house dispensation
Sterile 1X PBS for culture (stored at 4°C) Scientific Services – Tissue Culture MCRI in house supply
Tween 20 polysorbate Sigma-Aldrich 9005-64-5
General Consumables
Conical Falcon tubes (50 mL) Invitro Technologies FAL352070
Filter unit 0.22um (500 mL) Thermo Fisher NAL5660020
Sterile Eppendorf tubes (1.5 mL) Australia PL AM12400
Sterile flat-bottom plates (96-well with lid) Interpath 655180
Sterile U-bottom plates (96-well with lid) Interpath 650180
5ml serological pipette Sigma-Aldrich CLS4487-200EA
10 mL serological pipette Interpath 607180
25 mL serological pipette Sigma-Aldrich CLS4251-200EA
Tip Pipette 1-200 µL Clear Maxymum Recovery Racked Pre-sterilized 10RACKS x 96TIPS PKG960 Fisher Biotec TF-200-L-R-S
Tip Pipette 5-20 µL Clear Maxymum Recovery Racked Pre-sterilized 10RACKS x 96TIPS PKG960 Fisher Biotec TF-20-L-R-S
Tip Pipette 100-1000 µLClear Maxymum Recovery Racked Pre-sterilized 10RACKS x 100TIPS PKG1000 Fisher Biotec TF-1000-L-R-S
Tip Pipette 1-10 µL Clear Maxymum Recovery Racked Pre-sterilized 10RACKS x 100TIPS PKG1001 Fisher Biotec TXLF-10-L-R-S
Equipments and softwares
ELISpot reader system AID iSpot, Autoimmun Diagnostika GmbH, Strasburg, Germany
AID ELISpot software version 5.0 AID iSpot, Autoimmun Diagnostika GmbH, Strasburg, Germany
Microsoft Excel 2007

References

  1. Shi, T., et al. Global, regional, and national disease burden estimates of acute lower respiratory infections due to respiratory syncytial virus in young children in 2015: a systematic review and modelling study. Lancet. 390 (10098), 946-958 (2017).
  2. Modjarrad, K., et al. WHO consultation on Respiratory Syncytial Virus Vaccine Development Report from a World Health Organization Meeting held on 23-24 March 2015. Vaccine. 34 (2), 190-197 (2016).
  3. Giersing, B. K., Karron, R. A., Vekemans, J., Kaslow, D. C., Moorthy, V. S. Meeting report: WHO consultation on Respiratory Syncytial Virus (RSV) vaccine development, Geneva, 25-26 April 2016. Vaccine. , (2017).
  4. Mazur, N. I., et al. The respiratory syncytial virus vaccine landscape: lessons from the graveyard and promising candidates. Lancet Infect Diseases. 18 (10), e295-e311 (2018).
  5. Hosken, N., et al. A multi-laboratory study of diverse RSV neutralization assays indicates feasibility for harmonization with an international standard. Vaccine. 35 (23), 3082-3088 (2017).
  6. Zielinska, E., et al. Development of an improved microneutralization assay for respiratory syncytial virus by automated plaque counting using imaging analysis. Virology Journal. 2, 84 (2005).
  7. van Remmerden, Y., et al. An improved respiratory syncytial virus neutralization assay based on the detection of green fluorescent protein expression and automated plaque counting. Virology Journal. 9, 253 (2012).
  8. Varada, J. C., et al. A neutralization assay for respiratory syncytial virus using a quantitative PCR-based endpoint assessment. Virology Journal. 10, 195 (2013).
  9. Tripp, R. A., Jorquera, P. A. . Human respiratory syncytial virus: methods and protocols. , (2016).
  10. Suara, R. O., et al. Prevalence of neutralizing antibody to respiratory syncytial virus in sera from mothers and newborns residing in the Gambia and in The United States. Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology. 3 (4), 477-479 (1996).
  11. Wang, J. W., et al. Measurement of neutralizing serum antibodies of patients vaccinated with human papillomavirus L1 or L2-based immunogens using furin-cleaved HPV Pseudovirions. PLoS One. 9 (7), e101576 (2014).
  12. Magnus, C., Reh, L., Trkola, A. HIV-1 resistance to neutralizing antibodies: Determination of antibody concentrations leading to escape mutant evolution. Virus Research. 218, 57-70 (2016).
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Cite This Article
Do, L. A. H., Tse, R., Nathanielsz, J., Anderson, J., Ong, D. S., Chappell, K., Mulholland, K., Licciardi, P. V. An Improved and High Throughput Respiratory Syncytial Virus (RSV) Micro-neutralization Assay. J. Vis. Exp. (143), e59025, doi:10.3791/59025 (2019).

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