Summary

ניטור מושבת חיידקי ותחזוקה על השורשים האראדותזיס thaliana במערכת ידרופוני צף

Published: May 28, 2019
doi:

Summary

כאן אנו מתארים ידרופוני צמח שיטת הצמיחה כדי נוכחות המינים ככמת ולהמחיש את התפלגות מרחבית של חיידקים במהלך הקולוניזציה הראשונית של שורשי הצמח ולאחר העברתם לסביבות צמיחה שונות.

Abstract

חיידקים צורה מורכבת מיקרו-המוני microbiomes מעוצב על ידי חיידקים אינטראקציה, אורגניזמים גדולים יותר, הסביבה אביוטיים. בתנאי מעבדה, מושבת ריזוספירה באמצעות גידול בקטריה לקידום חיידקים (PGPB) יכול להגביר את הבריאות או פיתוח של צמחים מארחים ביחס לצמחים uncolonized. עם זאת, בהגדרות שדה, טיפולים חיידקיים עם PGPB לעתים קרובות לא מספקים יתרונות משמעותיים יבולים. הסבר אחד הוא כי זה עשוי להיות עקב אובדן של PGPB במהלך האינטראקציות עם חיידקים בקרקע אנדוגניים על תוחלת החיים של הצמח. אפשרות זו הייתה קשה לאישור, מכיוון שרוב המחקרים מתמקדים בקולוניזציה הראשונית ולא בתחזוקת PGPB בתוך קהילות הריון. היפותזה כאן היא כי האסיפה, דו-קיום, ותחזוקה של קהילות חיידקי מעוצבים על ידי תכונות דטרמיניסטיות של הסביבה מיקרוזוספירה, וכי אינטראקציות אלה עלולות להשפיע על הישרדות PGPB בהגדרות מקוריות. כדי ללמוד התנהגויות אלה, הידרופוני צמח-צמיחה ממוטבת באמצעות Arabidopsis thaliana לכמת ולהמחיש את ההתפלגות המרחבית של חיידקים במהלך הקולוניזציה הראשונית של שורשי הצמח ולאחר העברת צמיחה שונים סביבות. מערכת זו של המערכת ואת כלי השירות מאומתים אז עם היטב-למד PGPB פסאודומונס simiae. כדי לחקור כיצד נוכחות של מינים חיידקיים מרובים עשויים להשפיע על הקולוניזציה והדינמיקה תחזוקה על שורש הצמח, קהילה מודל משלושה זנים חיידקיים ( Arthrobacter, curtobacterium, ו microbacterium מינים) מבודדים במקור מתוך מבנה הבית . זה מראה כי הנוכחות של מינים אלה חיידקים מגוונים ניתן למדוד באמצעות זה ידרופוני צמח-maintanence שיטת, אשר מספק אלטרנטיבה מבוססי רצף לימודי הקהילה החיידקית. מחקרים עתידיים באמצעות מערכת זו עשויים לשפר את ההבנה של התנהגות חיידקית של microbiomes צמח רב מינים לאורך זמן, בתנאים סביבתיים שינוי.

Introduction

הרס יבול על ידי מחלות חיידקי ופטרייתי תוצאות הוריד מזון והוא יכול לשבש באופן חמור את היציבות הגלובלית1. מבוסס על גילוי כי חיידקים בקרקעות מדכאים אחראים על הגדלת בריאות הצמח2, מדענים שאלו אם מיקרובידום הצמח יכול להיות ממונף כדי לתמוך בצמיחה הצמח על ידי שינוי הנוכחות והשפע של מסוים מין חיידקי3. חיידקים שנמצאו כדי לסייע בצמיחה הצמח או פיתוח הם באופן קולקטיבי הצומח צמיחה-קידום חיידקים (PGPB). לאחרונה, מחקרים השתנו פשוט לזיהוי PGPB פוטנציאלי כדי להבין כיצד אינטראקציה בין הממלכה בקרקע, סביב שורשים, או בתוך הריון (האזור שמסביב ישירות וכולל משטח השורש) עשוי להשפיע PGPB פעילות4.

הקולוניזציה של ריזוספירה על ידי PGPB יכול להגביר את הבריאות או התפתחות של צמחים מארחים בתגובה לשעולים מגוונים ביחס הצמחים לבטל הכובש5. עם זאת, התוצאות הן לעתים קרובות יותר משתנה בתנאי הקרקע הילידים לעומת אלה שנצפו בחממה מבוקרת היטב הגדרות מעבדה6. השערה אחת להבדל זה היא כי הצמיחה או התנהגות של pgpb יכול להיות מעוכבים על ידי חיידקים הקרקע הילידים או פטריות בשדות7,8. השפעות מועילות על ידי חיידקים ריזוספירה תלויים בדרך כלל על היכולת של חיידקים 1) לאתר ולנוע לעבר השורש, 2) ליישב את השורש באמצעות היווצרות ביוilm, ו 3) אינטראקציה עם הצמח המארח או פתוגנים באמצעות ייצור של מולקולה קטנה מטבוליטים7,9. כל אחד מאותם התנהגויות מושבת עשוי להיות מושפע על ידי נוכחות ופעילות של חיידקים שכנים10.

עיצבנו מערכת לכמת ולהמחיש את שלבי הקולוניזציה החיידקית הנפרדים של הריזוספירה (איור 1). גישה זו תסייע למחקרים לחקור מדוע תחזוקה לטווח ארוך PGPB הוא לפעמים לא נצפתה לאחר העברת צמחים לסביבות חדשות, כגון במהלך השתילה של שתילים מחוסנת מראש. Arabidopsis thaliana כפי שנבחרו כמודל צמח בשל השימוש הנרחב שלה לימודי מעבדה, כמו גם נתונים מספיק זמין על אינטראקציות מיקרוביאלית שלה11. ישנם שלושה שלבים במערכת: 1 . thaliana צמיחה, 2) מושבת חיידקים, ו 3) שמירה חיידקית (ראה איור 1). מכיוון ש -thaliana היא צמח יבשתי, היה חשוב להבטיח כי זה לא סבל לחץ מים מופרז במערכת ידרופוני12. בהשראת השיטות בשימוש על ידי Haney et al.13, השתילים גדלים על רשת פלסטיק כדי להפריד את לירות מתוך מדיום הצמיחה נוזל. מערכת זו אינה מהווה פגיעה בבריאות ובפיתוח של מארח הצמח, והיא משפרת את צמיחת ה -thaliana בנוזל משנת11. כמו הצמח לירות צף מעל פני השטח, השורשים חשופים לחלוטין הקולוניזציה על ידי חיידקים מחוסן לתוך בינוני נוזלי הצמיחה חיידקי. זה מתיר חיידקים של עניין להיבדק עבור מושבת חומרים מזינים כי הם התורמת ביותר לצמיחה, בעוד אז הסטה תנאים כדי לאפשר לצמח להמשיך לצמוח במדיום מזינים שנועד לתמוך בצמיחה שלה. שני השלבים כוללים טלטול קבוע כדי למנוע אנאוקאיה של שורש13. חיידקים יכולים להיות מדמיינו או כימות מן השורשים הצמח לאחר העברת מתוך מדיום או מדיום תחזוקה. מערכת ידרופוני זו היא גמישה מאוד, המאפשר תנאים ניסיוניים ומלחצים שהוחלו להשתנות בקלות בהתאם לאינטרסים של החוקרים.

שיטה זו מתוארת חשובה בהקשר של גוף הספרות הגדול יותר על אינטראקציות של חיידק הצמח, משום שהיא מספקת מערכת חזקה לחקר אינטראקציות אלה במשטח השורש, בעוד שניתן להתאמה אישית להעדפות הצמיחה של חיידקים שונים. מעבדות ביולוגיה של הצמח לעתים קרובות ביצוע ניסויים מושבת חיידק המפעל על מוצק אגר, המאפשר תנועה מישורי בלבד (אם זה) של חיידקים תוך דרישה גם מניפולציה הרסנית פוטנציאלי של צמחים במהלך ההעברה הבאה. לעומת זאת, מעבדות מיקרוביולוגיה מעדיפות לעתים קרובות את בריאותם של החיידקים בתוך הניסויים שלהם, לרעת הצמחים14,15. סדרי עדיפויות שונים אלה של מעבדות צמחים ומיקרוביולוגיה ממוקדת היסטורית הפכו את זה קשה להשוות את התוצאות בין קבוצות אלה, מאז כל אחד בדרך כלל מייעל את התנאים הניסיוניים כדי לייעל את האורגניזם שלהם עניין15. מערכת צף-שינוי-צמח-הצמיחה המתואר כאן מונע שרידה צמח מלא, יתרון בולט למחקרים קודמים מונחה מיקרוביולוגיה, תוך שזמנית גם אופטימיזציה של הצמיחה והישרדות של חיידקים כדי להקל על הקולוניזציה. לפיכך, שיטת הטיפול שאנו מציגים כאן עשויה להתייחס לחששות משני הביולוגים של הצמח (על שחות יתר ומניפולציה מישוש של הצמח) תוך סיפוק הקריטריונים של מיקרוביולוגים (המאפשרים התפתחות שונה של הגידול בקטריאלי ומספר אינטראקציות של מינים)7. פרוטוקול זה נועד להיות ישימה לשימוש עם חיידקים שונים, צמחים, ותנאים סביבתיים.

Protocol

הערה: הכיוונון הנסיוני מתואר בבהירות ומשמש להפקת תוצאות הנציג הכלולות בדו ח זה, אך ניתן לשנות את התנאים כרצונך. כל השלבים יש לבצע באמצעות PPE ובעקבות מוסדיים והפדרלי מומלצים עבור בטיחות, על פי מצב BSL של החיידקים בשימוש. 1. אפיון חיידקים לקבוע את המבנה של חיידקים על בינונית…

Representative Results

PGPB מאופיין ב P. simiae WCS417r ידוע ליישב את שורשיו של א. thaliana בתרבות ידרופוני. זה חיידק פלורסנט באופן טבעי יכול בקלות להיות דמיינו באמצעות מיקרוסקופ על שורשי שתילים לאחר הקולוניזציה (איור 2). למרות שניתן לדמות את האורך המלא של אלה שתילים. thaliana (4 – 6 מ…

Discussion

צמחים בכל הסביבות אינטראקציה עם אלפים למיליוני חיידקים שונים ופטריות5,7. אינטראקציות אלה יכולות להשפיע בצורה שלילית וחיובית על בריאות הצמח, עם השפעות פוטנציאליות על תפוקת יבול וייצור מזון. העבודה האחרונה מרמזת גם כי התיישבות משתנה של יבולים על ידי PGPBs עשוי ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכת על ידי קרנות מחקר שסופקו על ידי המחלקה למחקר ביולוגי וסביבתי של אנרגיה (DOE-BER 0000217519 כדי E.A.S.), הקרן הלאומית למדע (השראה IOS-1343020 ל-E. A. S). SLH תמך גם על ידי תוכנית המלגות למחקר בוגרת קרן המדע הלאומית. אנו מודים לד ר ג’פריס דאדל על מתן זנים חיידקיים ותובנה לא יסולא בפז. אנו מודים לד ר אנדרו קליין ומת ג’יי פאוורס להצעות נסיוניות. לבסוף, SLH רוצה להודות לקשרים על מדיה חברתית על שהזכיר לנו כי הפצת המדע היא זכות ואחריות, במיוחד באמצעות אמצעים יצירתיים ונגישים.

Materials

Required Materials
1.5 mL eppendorf tubes any N/A
24-well plates BD Falcon 1801343
Aeraseal Excel Scientific BE255A2
Autoclave any N/A
Bacteria of Interest any N/A Stored at -80˚C in 40% glycerol preferred
BactoAgar BD 2306428; REF 214010
bleach any N/A
Conviron any N/A Short Day Light-Dark Cycles: 460-600 µmoles/m²/s set at 9/15 hours light/dark at 18/21˚C, with inner power outlet
Dessicator Jar: glass or heavy plastic any N/A
Ethanol any N/A
Flame any N/A
Forceps any N/A
Incubator any N/A At optimal temperature for growth of specified bacteria
Hydrochloric Acid any N/A
Lennox LB Broth RPI L24066-1000.0
Microcentrifuge any N/A
Micropipetters any N/A Volumes 5 µL to 1000 µL
Microscope (preferably fluorescence) any N/A Could be light if best definition not important
MS Salts + MES RPI M70300-50.0
Orbital Plate Shaker any N/A Capable of running at 220 rpm for at least 96 hours
Petri Dishes any N/A 50 mL total volume
Reservoirs any N/A
Spectrophotometer any N/A
Standard Hole Punch any N/A Approximately 7mm punch diameter
Sterile water any N/A
Surgical Tape 3M MMM1538-1
Teflon Mesh McMaster-Carr 1100t41
Ultrasonicator any N/A
Vortex Mixer any N/A
X-gal GoldBio x4281c other vendors available
Suggested Materials
24 Prong Ultrasonicator attachment any N/A For sonicating multiple samples at once. Can be done individually
Alumaseal II Excel Scientific FE124F
Glass beads any N/A
Multipetter/Repetter any N/A
Sterile 96-well plates any N/A For serial dilutions. Can be replaced by eppendorf tubes
Biological Materials Used
Arabidopsis thaliana seeds any N/A We recommend Arabidopsis Biological Resource Center for seed stocks
Arthrobacter nicotinovorans Levy, et al. 2018
Curtobacterium oceanosedimentum Levy, et al. 2018
Microbacterium oleivorans Levy, et al. 2018
Pseudomonas simiae WCS417r Published in a similar system in Haney, et al. 2015. Strain used developed in Cole, et al. 2017

References

  1. Strange, R. N., Scott, P. R. Plant disease: a threat to global food security. Annual Review of Phytopathology. 43, 83-116 (2005).
  2. Cook, A. M., Grossenbacher, H., Hütter, R. Isolation and cultivation of microbes with biodegradative potential. Experientia. 39 (11), 1191-1198 (1983).
  3. Vacheron, J., et al. Plant growth-promoting rhizobacteria and root system functioning. Fronteirs in Plant Science. 4, 356 (2013).
  4. Backer, R., et al. Plant Growth-Promoting Rhizobacteria: Context, Mechanisms of Action, and Roadmap to Commercialization of Biostimulants for Sustainable Agriculture. Fronteirs in Plant Science. 9, 1473 (2018).
  5. Zamioudis, C., Pieterse, C. M. Modulation of host immunity by beneficial microbes. Molecular Plant-Microbe Interactions. 25 (2), 139-150 (2012).
  6. Kröber, M., et al. Effect of the strain Bacillus amyloliquefaciens FZB42 on the microbial community in the rhizosphere of lettuce under field conditions analyzed by whole metagenome sequencing. Frontiers in Microbiology. 5, 252 (2014).
  7. Bulgarelli, D., Schlaeppi, K., Spaepen, S., Ver Loren van Themaat, E., Schulze-Lefert, P. Structure and functions of the bacterial microbiota of plants. Annual Review of Plant Biology. 64, 807-838 (2013).
  8. Niu, B., Paulson, J. N., Zheng, X., Kolter, R. Simplified and representative bacterial community of maize roots. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 114 (12), E2450-E2459 (2017).
  9. Richter-Heitmann, T., Eickhorst, T., Knauth, S., Friedrich, M. W., Schmidt, H. Evaluation of Strategies to Separate Root-Associated Microbial Communities: A Crucial Choice in Rhizobiome Research. Frontiers in Microbiology. 7, 773 (2016).
  10. Shank, E. A. Using coculture to detect chemically mediated interspecies interactions. Journal of Visual Experiments. (80), e50863 (2013).
  11. Woodward, A. W., Bartel, B. Biology in Bloom: A Primer on the Arabidopsis thaliana Model System. Genetics. 208 (4), 1337-1349 (2018).
  12. Alatorre-Cobos, F., et al. An improved, low-cost, hydroponic system for growing Arabidopsis and other plant species under aseptic conditions. BMC Plant Biology. 14, 69 (2014).
  13. Haney, C. H., Samuel, B. S., Bush, J., Ausubel, F. M. Associations with rhizosphere bacteria can confer an adaptive advantage to plants. Nature Plants. 1 (6), (2015).
  14. Massalha, H., Korenblum, E., Malitsky, S., Shapiro, O. H., Aharoni, A. Live imaging of root-bacteria interactions in a microfluidics setup. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 114 (17), 4549-4554 (2017).
  15. Townsley, L., Yannarell, S. M., Huynh, T. N., Woodward, J. J., Shank, E. A. Cyclic di-AMP Acts as an Extracellular Signal That Impacts. MBio. 9 (2), (2018).
  16. Beauregard, P. B., Chai, Y., Vlamakis, H., Losick, R., Kolter, R. Bacillus subtilis biofilm induction by plant polysaccharides. Proceedings of the National Academy of Sciences U S A. 110 (17), E1621-E1630 (2013).
  17. Matthysse, A. G. Adherence of Bacteria to Plant Surfaces Measured in the Laboratory. Journal of Visual Experiments. 136 (136), (2018).
  18. Garcia-Betancur, J. C., Yepes, A., Schneider, J., Lopez, D. Single-cell analysis of Bacillus subtilis biofilms using fluorescence microscopy and flow cytometry. Journal of Visual Experiments. (60), (2012).
  19. Cole, B. J., et al. Genome-wide identification of bacterial plant colonization genes. PLoS Biology. 15 (9), e2002860 (2017).
  20. Lundberg, D. S., et al. Defining the core Arabidopsis thaliana root microbiome. Nature. 488 (7409), 86-90 (2012).
  21. Grandchamp, G. M., Caro, L., Shank, E. A. Pirated Siderophores Promote Sporulation in Bacillus subtilis. Applied Environmental Microbiology. 83 (10), (2017).
  22. Gange, A. C., Gadhave, K. R. Plant growth-promoting rhizobacteria promote plant size inequality. Science Reports. 8 (1), 13828 (2018).
  23. Levy, A., et al. Genomic features of bacterial adaptation to plants. Nature Genetics. 50 (1), 138-150 (2018).
  24. Martínez-Hidalgo, P., Maymon, M., Pule-Meulenberg, F., Hirsch, A. M. Engineering root microbiomes for healthier crops and soils using beneficial, environmentally safe bacteria. Canada Journal of Microbiology. , 1-14 (2018).
  25. Niu, B., Kolter, R. Quantification of the Composition Dynamics of a Maize Root-associated Simplified Bacterial Community and Evaluation of Its Biological Control Effect. Bio Protocol. 8 (12), (2018).
check_url/59517?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Harris, S. L., Pelaez, C. A., Shank, E. A. Monitoring Bacterial Colonization and Maintenance on Arabidopsis thaliana Roots in a Floating Hydroponic System. J. Vis. Exp. (147), e59517, doi:10.3791/59517 (2019).

View Video