تصف هذه الطريقة إعداد مزمن يسمح بالوصول البصري إلى الحصين من الفئران الحية. ويمكن استخدام هذا الإعداد لأداء التصوير البصري الطولي من اللدونة الهيكلية العصبية واللدونة الخلوية التي تثير النشاط على مدى عدة أسابيع.
يعتبر الفحص المجهري ثنائي الفوتون أداة أساسية لعلوم الأعصاب لأنه يسمح بالتحقيق في دماغ الحيوانات الحية على نطاقات مكانية تتراوح بين مستويات دون الخلية إلى مستويات الشبكة وعلى نطاقات زمنية من مللي ثانية إلى أسابيع. بالإضافة إلى ذلك، يمكن الجمع بين التصوير بالفوتونين مع مجموعة متنوعة من المهام السلوكية لاستكشاف العلاقات السببية بين وظيفة الدماغ والسلوك. ومع ذلك، في الثدييات، والاختراق المحدود وتشتت الضوء محدودة اثنين من الفوتون التصوير داخل الحيوية في الغالب إلى مناطق الدماغ السطحية، وبالتالي منع التحقيق الطولي من مناطق الدماغ العميق مثل الحصين. يشارك الحصين في الملاحة المكانية والذاكرة العرضية وهو نموذج طويل الأمد يستخدم لدراسة العمليات الخلوية وكذلك المعرفية الهامة للتعلم والتذكير، سواء في الصحة أو المرض. هنا، يتم تفصيل إعداد التي تمكن الوصول البصري المزمن إلى الحصين الظهري في الفئران الحية. ويمكن الجمع بين هذا الإعداد مع التصوير البصري اثنين من الفوتون في دقة الخلوية ودون الخلوية في الرأس ثابتة، والتخدير الفئران الحية على مدى عدة أسابيع. هذه التقنيات تمكين التصوير المتكرر للبنية العصبية أو اللدونة التي تثيرها الأنشطة في عشرات إلى مئات من الخلايا العصبية في CA1 فرس النهر الظهري. وعلاوة على ذلك، يمكن استخدام هذا الإعداد المزمن جنبا إلى جنب مع تقنيات أخرى مثل التنظير المجهري الدقيق، والفحص المجهري الميداني الواسع المثبت على الرأس أو الفحص المجهري ثلاثي الفوتون، وبالتالي توسيع نطاق الأدوات بشكل كبير لدراسة العمليات الخلوية والشبكة المعنية في التعلم والذاكرة.
في الثدييات، والحصين هو منطقة الدماغ الرئيسية لترميز واستدعاء الذكريات العرضيةوكذلك للملاحة المكانية 1،2،3،4. لهذا السبب، كان الحصين – ولا يزال – نموذجا هاما جدا لدراسة الآليات الأساسية التي تسمح للدماغ لترميز واستدعاء الذكريات5و6و7 أو للتنقل في بيئة8 ،9 جمع المكافآت وتجنب المخاطر. وبالإضافة إلى ذلك، فإن تشكيل فرس النهر هي واحدة من مناطق الدماغ حيث يتم توليد الخلايا العصبية الجديدة في جميع أنحاء حياة القوارض10،11 ، وربما ، من البشر12،13. وأخيرا، يرتبط انحطاط أو ضعف تشكيل فرس النهر مع الاضطرابات العصبية والنفسية، بما في ذلك مرض الزهايمر14.
في الفئران، ويقع الحصين ما يقرب من 1 ملم تحت سطح الدماغ15. وقد منع موقعها الوصول البصري في الدماغ سليمة، وبالتالي، اعتمدت الدراسات الطولية لديناميات فرس النهر في الغالب على التصوير بالرنين المغناطيسي (MR)، والفيزيولوجيا الكهربائية، وتحليلات التصوير في الجسم الحي السابق. طرق التصوير بالرنين المغناطيسي تسمح تتبع العمليات البيولوجية (على سبيل المثال، تغيير التعبير الجيني16)في نفس الحيوان على مدى عدة أيام، ولكن تفتقر إلى القرار المكاني للتمييز الخلايا العصبية واحدة. الكلاسيكية في التقنيات الكهرولوجية الجسم توفر دقة زمنية عالية جدا وحساسية رائعة للتغيرات في إمكانات الغشاء. ومع ذلك، لديهم دقة مكانية محدودة، وأنها تفتقر إلى القدرة على تتبع موثوق بها نفس الخلايا على مدى فترات زمنية أطول. يسمح التصوير البصري بدراسة العمليات الأكثر تنوعاً بفضل استبانتها الزمنية والمكانية العالية. ومع ذلك، فإن التصوير في الجسم الحي السابق لا يوفر سوى لقطات من العمليات الجارية، وبالتالي فإنه ليس مناسبا للدراسات الطولية التي تتعلم الحيوانات المعلومات وتستدعيها.
في التصوير البصري في الجسم الحي يجمع بين بعض مزايا التصوير بالرنين المغناطيسي والفيزيولوجيا الكهربائية مع مزايا التصوير البصري. ولذلك، فهي مناسبة بشكل جيد جدا للتحليلات الطولية والمترابطة لديناميات الدماغ الماوس والسلوك. وهذا أمر مهم في دراسات العمليات البيولوجية مع جداول زمنية سريعة جدا (مللي ثانية إلى ثانية) أو بطيئة جدا (أيام إلى أسابيع). أمثلة لمثل هذه العمليات ذات الصلة لعلوم الأعصاب هي ديناميات الجهد الغشاء، Ca2+ العابرين، اللدونة الخلوية والتغيرات الهيكلية، والتي يعتقد أن جميعها مهمة جدا لتكوين الذاكرة وأذكر. وقد امتدت أساليب مختلفة في التصوير الحي إلى الحصين الظهري18،19،20،21،22. وقد سمحت الاستعدادات الحادة تتبع نشاط الخلايا العصبية الهرمية (PN) وكذلك dendrites والعمود الفقري الددريل لعدة ساعات20،22. غير أن هذا الإطار الزمني الزمني لا يسمح بدراسة التغييرات الهيكلية الطويلة الأجل، التي قد تكون وراء التعلم التدريجي. الاستعدادات المزمنة – جنبا إلى جنب مع المناظير الدقيقة23،24 أو مع أهداف المجهر القياسية لمسافات طويلة (WD)21 – مكنت التصوير المتكرر للالحصين الظهري على مدى عدة اسابيع.
هنا، نقوم بوصف إعداد مزمن يوفر الوصول البصري المتكرر إلى المجال الفرعي CA1 من الحصين الظهري للفئران الحية باستخدام قنية التصوير المدرجة بشكل دائم. يسمح هذا الإعداد بالوصول المتكرر إلى CA1 دون اضطراب وظيفي وهو مناسب لتصوير الفوتون ثنائي الفوتون (2P) أو اللاإحتام الواسع المجال. وهناك مثالان على التصوير المزمن في الدماغ العميق 2P في CA1 الظهرية للفئران الحية مفصلة: التصوير الطولي للبنية التقشرية وديناميات العمود الفقري الددرية والتصوير الطولي لللدونة التي تثير النشاط. وتناقش المزايا البارزة والقيود البارزة لهذه التقنية.
هنا، يتم وصف إجراء للتصوير المتكرر 2P من CA1 الظهرية في الفئران الحية. بعد الجراحة، يتعافى الماوس عادة في غضون يومين. الإجراء يحفز الحد الأدنى من الغليوس الفلكية 26،43. عادة ما يتم إعادة امتصاص النزيف والوذمة التي قد تتبع الجراحة في غضون 10 إلى 14 يومًا. عموما، من 14 يوما بعد الزرع فصاعدا إعداد واضح بما فيه الكفاية لأداء التصوير داخل الحيوية. نجاح الجراحة لا يعتمد على العمل في بيئة معقمة. ومع ذلك، فمن الأهمية بمكان الحفاظ على مستوى عال من النظافة، لتجنب المضاعفات الناجمة عن العدوى المرتبطة بالجراحة. ويتم الحصول على ذلك عن طريق التنظيف الدقيق للأدوات الجراحية قبل وبعد الجراحة وعن طريق تعقيمها بالحرارة مباشرة قبل كل استخدام (الخطوة 2.1.1). يتم الاحتفاظ قنية البصرية في حاوية نظيفة ومعقمة وشطفها مع المالحة المعقمة قبل الزرع مباشرة. أداء الممارسات الجراحية الشائعة لتطهير اليدين وتنظيف المحطة الجراحية هو أيضا مهم جدا. التحضير لا يزال مستقرا ويسمح التصوير الدقة الخلوية ودون الخلوية لعدة أسابيع26،35.
الخطوات الهامة والتعديلات واستكشاف الأخطاء وإصلاحها.
من المهم تقشير الكبسولة الخارجية حتى يتم الكشف عن أعمق الألياف. قد يؤدي الفشل في الكشف عن الفيس إلى عدم القدرة على التركيز على ورم الـ PNs، أو في انخفاض دقة تصوير العمود الفقري الددري، عند استخدام الأهداف التجارية مع WD 3-أو 4 مم. لهذا الهدف، فمن المفيد أن تشطب القشرة الجديدة ببطء شديد باستخدام إبرة قطرها 0.9 ملم ومن ثم التبديل إلى إبرة قطرها 0.3-0.5 ملم (قياس 24-29) للسيطرة الدقيقة على الشفط عند إزالة الألياف الظهرية. بدلا من ذلك، يمكن استخدام ملقط غرامة لإزالة القشرة المتبقية بعد التعرض للألياف36.
يمكن أن يكون النزيف أثناء الجراحة مشكلة، حيث أن الدم يعيق الرؤية. في انتظار أن تتشكل الجلطة ثم تُصفّى بمحلول ملحي لغسل الدم المتبقي. كرر حسب الضرورة.
تناسب دافئ بين قنية واستئصال الجمجمة يساعد على زيادة استقرار التحضير عن طريق الحفاظ على قنية في مكان قبل تطبيق الاسمنت، وخاصة إذا كان الحافة الخارجية للقنية هو دافق مع الجمجمة. منذ أحجام الحفر trephine والقنانة متطابقة، يمكن أن تنشأ نوبة فضفاضة بسبب المخالفات على جانب قنية – التي تتطلب استئصال الجمجمة أكبر قليلا لتناسب (انظر الخطوة 2.3.14) – أو من استئصال الجمجمة غير النظامية. ويجب رفع أي مخالفات في القنية (الخطوتان 1-3 و1-12) ويجب أن يُعقد الترفين عمودياً على الجمجمة إلى أن يكتمل استئصال الجمجمة (الخطوة 2-3-12). قد تؤدي إزالة الربين من الجمجمة قبل اكتمال استئصال الجمجمة إلى استئصال الجمجمة بشكل غير منتظم.
القيود – الغازية والاستقرار في الإعداد.
ومن الصعب تقييم أثر الاستئصال القشري لأنه من الشاق تحديد المناطق المتأثرة بصورة مباشرة وغير مباشرة تحديدا دقيقا. بشكل عام، تزيل الجراحة جزءًا من القشرة الجدارية وجزءًا من القشرة الحسية البصرية والخلفية21. القشرة الاستئصالية لا تُعرض مباشرة على الحصين والأنسجة الحصينية لا يتم لمسها ولا إصابتها. الأهم من ذلك، وقد تبين أن زرع قنية التصوير لا يغير بشكل صارخ وظيفة فرس النهر وعلى وجه التحديد فرس النهر تعتمد على التعلم21،36،37،38، 39. ومع ذلك، سيكون من المهم تحديد مدى كل من قنية والجزء الخارجي من زرع (لوحة حامل الرأس وغطاء الاكريليك الأسنان) هي عوامل الإجهاد المزمنة من خلال تقييم مستويات الدم الكورتيكوستيوستيرون ووزن الغدة الكظرية بالمقارنة مع الفئران غير المزروعة.
الإعداد عموما لا يزال مستقرا من أسابيع إلى أشهر26. على المدى الطويل، ونمو الجلد والعظام تميل إلى إزاحة غطاء الاكريليك وزيادة عدم الاستقرار في إعداد التصوير.
القيود البصرية.
الفحص المجهري التقليدي 2P يسمح التصوير تصل إلى حوالي 1 ملم في عمق الأنسجة القشريةالجديدة 40،41. وتماشياً مع ذلك، من الممكن تصوير الدندريتس والعمود الفقري الددريالموجود في SR (الشكل2D-F)أو SLM36. ومع ذلك، التصوير من خلال قنية يضع قيودا على NA فعالة. لتحقيق الحد الأقصى للدقة، يجب أن يتطابق قطر وعمق قنية التصوير مع التصوير NA، حيث أن أقطار أصغر وأعماق أطول سوف مقطع ضوء من أهداف NA عالية. على سبيل المثال، عند التصوير مع 1.0 NA هدف الغمر المياه من خلال قنية 1.6 ملم طويلة، هناك حاجة إلى قطر داخلي 3.65 ملم للحفاظ على NA كامل. ومع ذلك، فإن استخدام قنية من هذا القطر زيادة الضغط على الحصين، ويمكن أن تؤثر على صحة الأنسجة، لهذا السبب، ونحن نستخدم قنية مع قطر أصغر. عند التصوير مع 0.8 NA هدف غمر المياه من خلال قنية 1.6 ملم طويلة، وقطر داخلي من 2.5 ملم سيكون كافيا للحفاظ على NA كامل. ومع ذلك، 0.8 أهداف الغمر المياه NA لديها WD أقصر (3 ملم في حالتنا)، والتي يمكن أن تمنع من التركيز في SP.
تنطبق هذه الحسابات على مركز مجال الرؤية في الجزء السفلي من القنية. ومع ذلك، فإن تحريك مجال التصوير من الرؤية جنبا إلى جنب – أقرب إلى حواف قنية – أو التركيز أعمق في الأنسجة – أبعد من السطح الزجاجي للقنية – يقلل من NA فعالة في المستوى البؤري وبالتالي يقلل من القرار. وهذا سيؤدي إلى دقة غير متجانسة عبر أحجام مختلفة من الأنسجة المصورة ويمكن أن يكون مصدر قلق للتصوير الكمي في دقة دون الخلوية، وخاصة عند استخدام تقنيات فائقة الدقة مثل 2P-STED المجهرية42. هذه المشكلات أقل أهمية عند التصوير بدقة خلوية.
حركة الأنسجة.
الحركة داخل الأنسجة – الناشئة من التنفس وضربات القلب في الحيوانات التخدير – يميل إلى أن تصبح أكثر شدة مع زيادة المسافة من قنية التصوير. هذا ربما لأن قنية التصوير يطبق الضغط الميكانيكي على الدماغ وبالتالي مواجهة بعض الحركة في محيط قنية (على غرار الاستعدادات القشرية الجديدة). وهكذا، على الرغم من أن تصوير العمود الفقري الددري ة ممكن في SR وSLM، في أيدينا، فمن أقوى الظهرية إلى SO تصل إلى 200 ميكرومتر من سطح قنية. للتعويض عن الحركة، ونحن نستخدم الماسحات الضوئية الرنانة ومتوسط حاليا. يتم الحصول على عدة صور (4 إلى 6 تكرارات) لكل مستوى صورة من مكدس z بأقصى سرعة متاحة (30 إطار/ث). ثم يتم deconvolved جميع التكرارات لكل طائرة z (باستخدام البرنامج التجاري، أوتوكوانت)، مسجلة (باستخدام ImageJ) ومتوسط في صورة واحدة26. لتصوير سوماتا، وغالبا ما تكون الحركة لا تذكر عند التخدير35 ومتوسطين غالبا ما تكون كافية للتعويض عن التحف الحركة.
التطبيقات المستقبلية أو الاتجاهات للطريقة .
ويمكن الجمع بين إعداد مع المناظير الدقيقة26،43. المناظير الدقيقة هي تحقيقات بصرية جامدة التي تستخدم العدسات الدقيقة مؤشر الانكسار التدرج (GRIN) لتوجيه الضوء من وإلى الأنسجة العميقة18. استخدام المناظير الدقيقة يسمح قنية من أقطار أصغر أو حتى لا قنية على الإطلاق. ومع ذلك، فإن المناظير الصغيرة التجارية أقل تصحيحاً للانحرافات البصرية ولها أقل من الأهداف التجارية. تصل المسبارات الحالية إلى الدقة الجانبية والمحورية من 0.6-1 ميكرومتر، 10-12 ميكرومتر، على التوالي17،18،44. كما أن استخدام المناظير الدقيقة يمكّن من الجمع بين هذا الإعداد مع المجاهر المتكاملة المثبتة على الرأس45و46و47.
الطريقة تصلح أيضا لاستخدامها في الفئران غير التخدير، وقد تم استخدامه للتحقيق في النشاط الخلوي باستخدام أجهزة الاستشعار Ca2 + في الفئران مستيقظا رئيس ثابت21،37،48،49. في هذه الحالات، بسبب الجداول الزمنية السريعة للتغيرات الفلورية، فمن المستحسن لتنفيذ خط التسجيل50. ومن الممكن أيضا تكييف التحضير لتصوير المناطق الفرعية فرس النهر الأخرى مثل سايروس dentate (DG)39،51،52. الجمع بين هذا الإعداد مع 3P الإثارة53،54 مع 1 ميغاهيرتز تردد الليزر النبض ضبطها إلى 1400 نانومتر ، كنا قادرين على صورة أعمق في تشكيل فرس النهر تصل إلى الطبقة الجزيئية ، طبقة الخلية الحبيبية و من المديرية العامة(الشكل 4) دون إزالة CA1 تراكب.
في الختام، نقدم طريقة توفر الوصول البصري إلى الحصين الظهري ويسمح الدراسات الطولية والنسبية لديناميات بنية فرس النهر والنشاط. هذه التقنية توسع إمكانيات تحليل وظيفة فرس النهر في ظل الظروف الفسيولوجية والمرضية.
The authors have nothing to disclose.
U. A. F. بدعم من مؤسسة شرام; C.-W. T. P. و W. G. تدعمها جمعية ماكس بلانك; L.Y. وR.Y. بدعم من جمعية ماكس بلانك والمعهد الوطني للصحة (R01MH080047, 1DP1NS096787); A. C. بدعم من منحة FP7 من المجلس الأوروبي للبحوث، وERANET وبرامج I-CORE، ومكتب كبير العلماء في وزارة الصحة الإسرائيلية، ووزارة التعليم والبحوث الاتحادية، روبرتو وريناتا روهمان، برونو وسيمون ليش، مركز نيلا وليون بينوزيو للأمراض العصبية، معهد هنري شانوش كرينتر للتصوير الطبي الحيوي وعلم الجينوم، مؤسسة العلوم الإسرائيلية عائلة بيرلمان، أديليس، مارك بيسين، برات وإيرفينغ أ. موسكوفيتز؛ A. A. بدعم من جمعية ماكس بلانك، ومؤسسة شرام والألمانية Forschungsgemeinschaft (DFG). تم الحصول على الصور 3P خلال الدورة المتقدمة على تقنيات التصوير العصبي في معهد ماكس بلانك فلوريدا لعلم الأعصاب. ويدعم الدورة المتقدمة في تقنيات التصوير العصبي من قبل جمعية ماكس بلانك، وبرنامج زمالة ماكس بلانك العلمية في ولاية فلوريدا، وبرنامج شراكة مؤسسة معهد ماكس بلانك فلوريدا. نود أن نشكر ثورلابس، متماسكة وSpectraPhysics لتقديم الدعم والمعدات لنظام التصوير 2P / 3P خلال الدورة. كما أننا ممتنون لهنري هابيرل وميليسا إيبيرل على مساعدتهما في النظام خلال الدورة.
Professional drill/grinder IBS/E | Proxxon GmbH | 28481 | Pecision drill |
MICROMOT drill stand MB 200 | Proxxon GmbH | 28600 | Movable ruler table |
MICRO compound table KT 70 | Proxxon GmbH | 27100 | Movable ruler table |
Machine vice MS 4 | Proxxon GmbH | 28132 | Movable ruler table |
Stainless steel tube Ø 3,0 x 0,25 mm (Inner Ø 2,5 mm ) L = 500 mm | Sawade | R00303 | Stainless steel tube for the cannula metal ring |
Microscope Cover glass (4 mm round) | Engelbrecht Medizin and Labortechnik | Glass coverslips for the cannula glass | |
Schlusselfeilensatz 6-tgl. Im Blechetui | Hoffmann Group | 713750 160 | Manual files |
Präzisions-Nadelfeile Gesamtlänge 140 mm 4 | Hoffmann Group | 527230 4 | Manual files |
UV-Curing Optical Adhesives | Thorlabs | NOA81 | UV-curing adhesive |
UV Curing LED System, 365 nm | Thorlabs | CS2010 | UV-curing LED driver unit |
Stemi 305 | Zeiss | Stereoscope | |
Presto II | NSK-Nakanishi Germany | Z307015 | Dental drill |
Diamantbohrer FG (5 St.), Zylinder flach, 837-014 fein | MF Dental | F837.014.FG | Files for the dental drill |
Diamantbohrer FG (5 St.), Zylinder flach, 837-014 grob | MF Dental | G837.014.FG | Files for the dental drill |
Graefe Forceps – Straight / Serrated | Fine Science Tools | 11050-10 | Forceps for the surgery |
Burrs for Micro Drill | Fine Science Tools | 19008-05 | 0.5 mm width burr for the micro-drill |
Burrs for Micro Drill | Fine Science Tools | 19008-09 | 0.9 mm width burr for the micro-drill |
MicroMotor mit Handstück | DentaTec | MM11 | Micro-drill for the craniotomy |
Dumont #3 Forceps | Fine Science Tools | 11231-30 | Dumont forceps for the surgery |
Fine Scissors – ToughCut | Fine Science Tools | 14058-09 | Scissors for the surgery |
Trephine | MW Dental | 229-020 | Trephine drill – 3.0 mm diameter; for the micro-drill |
Stainless Steel Self-Tapping Bone Screws | Fine Science Tools | 19010-10 | 0.86 mm width bone screws |
Stereotaxic apparatus | Kopf | Stereotaxic apparatus | |
3-D-Gelenkarm | Hoffmann Group | 442114 | Stereotaxic arm and plate holder |
Aufnahme 2SM | Hoffmann Group | 442100 2SM | Stereotaxic arm and plate holder |
Hot Bead Sterilizers | Fine Science Tools | 18000-45 | Glass beads sterilizer |
Isofluran CP, Flasche 250 ml | Henry Schein VET GmbH | 798932 | Liquid isoflurane for anesthesia |
Harvard Apparatus Isoflurane Funnel-Fill Vaporizer | Harvard Apparatus GmbH | 34-1040 | Isoflurane vaporizer |
Lab Active Scavenger | Gropper Medizintechnik | UV17014 | Isoflurane scavenger system |
Metacam 0,5% Injektionslsg. (Hund / Katze), Flasche 20 ml | Henry Schein VET GmbH | 798566 | Meloxicam, anti-inflammatory |
Vetalgin 500 mg/ml | MSD Tiergesundheit | Vetalgin, pain killer | |
CMA 450 Temperature Controller | Hugo Sachs Elektronik – Harvard Apparatus GmbH | 8003770 | Heating blanket |
Bepanthen Augen- und Nasensalbe | Bayer AG | Ophtalmic ointment | |
KL 1500 LCD | Schott | Fiber optic light source | |
Xylocain Pumpspray | AstraZeneca GmbH | Lidocain, local anesthetic | |
Absorption Triangles – Unmounted | Fine Science Tools | 18105-03 | Absorption triangles for the surgery |
Parkell C&B Metabond clear powder L | Hofmeester dental | 013622 | Quick adhesive cement |
Parkell C&B Metabond Quick Base B | Hofmeester dental | 013621 | Quick adhesive cement |
Parkell C&B Metabond Universal Catalyst C | Hofmeester dental | 013620 | Quick adhesive cement |
Adjustable Precision Applicator Brushes | Parkell | S379 | Precision applicators for the surgery |
Blunt needles 0.9×23 mm | Dentina | 0441324 | Blunt needles |
Blunt needles 0.5×42 mm | Dentina | 0452155 | Blunt needles |
Blunt needles 0.3×23 mm | Dentina | 0553532 | Blunt needles |
Kallocryl A/C | Speiko | 1615 | Acrylic liquid component |
Kallocryl | Speiko | 1609 | Acrylic powder |
Hydrofilm transparent roll | Hartmann | Adhesive film | |
Head plates | Custom made | 30 mm x 10 mm size; 8 mm diameter hole, titanium | |
Head plate clamp | Custom made | Head plate holder | |
Pedestal post holders | Thorlabs | PH20E/M | Head plate holder |
Stainless steel post | Thorlabs | TR30/M | Head plate holder |
Stainless steel post | Thorlabs | TR75/M | Head plate holder |
Stainless steel post | Thorlabs | TR150/M | Head plate holder |
Post connector clamps | Custom made | Head plate holder | |
Aluminum Breadboard, 300 mm x 450 mm x 12.7 mm, M6 Taps | Thorlabs | MB3045/M | Microscope stage |
7" x 4" Lab Jack | Thorlabs | L490/M | Microscope stage |
Low profile face mask small mice | Emka Technologies | VetFlo-0801 | Anesthesia facemask holder |
RS4000 Tuned Damped Top Performance Optical Table | Newport | Floating table | |
S-2000A Top Performance Pneumatic Vibration Isolators with Automatic Re-Leveling | Newport | Floating table | |
Power Meter Model 1918-R | Newport | Power meter | |
X-Cite 120Q | Excelitas Technologies | Fluorescence lamp | |
Two-photon microscope | Bruker | Ultima IV | Two-photon microscopes |
Two-photon microscope | Thorlabs | Bergamo | Two-photon microscopes |
Plan N 4x/0.10 ∞/-/FN22 | Olympus | Objectives | |
Plan N 10x/0.25 ∞/-/FN22 | Olympus | Objectives | |
LMPlan FLN 20x/0.40 ∞/-/FN26.5 | Olympus | Objectives | |
XLPlan N 25x/1.00 SVMP ∞/0-0.23/FN18 | Olympus | Objectives | |
Ultafast tunable laser for 2P excitation | Spectraphysics | Mai Tai Deep See | Excitaiton lasers |
Ultafast tunable laser for 2P excitation | Spectraphysics | InSight DS+ Dual beam | Excitaiton lasers |
Ultafast tunable laser for 3P excitation | Coherent | Monaco | Excitaiton lasers |