Summary

피부에 있는 유전으로 표를 붙인 기자 세포의 Vivo 2 색 2-광자 화상 진찰에서

Published: July 11, 2019
doi:

Summary

형태학적 변화는 활성화 다음 면역 반응 섬유 아세포 세포에서 발생하고 세포 모집에 변경을 촉진. 유전자 조작섬유아세포 특이적 단백질 1(FSP1)-cre와 함께 2광자 이미징을 활용; tdTomato floxed-stop-floxed (TB/TB) 마우스 라인과 녹색 형광 태그 lipopolysaccharide-FITC, 우리는 진피 섬유아세포와 생체 내 형태학적 변화에 있는 lipopolysaccharide의 고도로 특정 한 섭취를 설명할 수 있습니다.

Abstract

섬유아세포는 활성화 시 형태를 변화시키는 중간엽 세포이며, 궁극적으로 그들이 위치한 조직의 미세 환경에 영향을 미칩니다. 전통적인 화상 진찰 기술은 고정된 조직에 있는 단백질 상호 작용 그리고 형태학을 확인하는 에서 유용하더라도, 그(것)들은 세포가 단백질을 결합하고 장악할 수 있는 얼마나 빨리에 관해서는 통찰력을 줄 수 없습니다, 그리고 일단 활성화된 그들의 형태가 어떻게 변경되는지 Vivo. 본 연구에서, 우리는 2 개의 중요한 질문을 합니다: 1) 톨-유사 수용체-4 (TLR4) 및 리포폴리사카라이드 (LPS) 상호 작용을 통해 섬유아세포 활성화의 시간 과정은 무엇이며 2) 이 세포는 한 번 활성화되면 어떻게 행동합니까? 2 광자 화상 진찰을 사용하여, 우리는 그것의 동체 수용체, TLR4에 결합하는 LPS-FITC의 기능을 평가하는 새로운 기술을 개발했습니다, 유전 기자 마우스 라인에 있는 말초 섬유아세포에 표현된; FSP1cre; tdTomato록스 스톱 록스 생체 내. 이 독특한 접근을 허용하는 이 독특한 접근은 연구원이 단백질이 세포 행동을 바꿀 수 있는 방법 이해에 있는 세분성의 증가한 수준을 가질 수 있게 하는 살아있는 세포와 상호 작용하는 단백질의 심층적인, 시간 경과 비디오 및/또는 사진을 만들 수 있습니다.

Introduction

리포폴리사카라이드(LPS)는 그람 음성 박테리아의 외막에서 발견되는 내독소1. LPS는 톨형 수용체 4(TLR4)/CD14/MD2 수용체 복합체 2에대해 높은 결합 친화도를 가지는다. TLR4는 광범위한 면역 세포, 중간엽 세포 및 감각 뉴런의 서브세트3,4,5의외부막에서 흔하게 발견되는 패턴 인식 수용체이다. 면역 세포에 발현되는 TLR4의 활성화는 MyD88 의존적이고 독립적인 제2 메신저 시스템으로 이어지며, 세포의 핵으로의 핵인자 카파 베타(NFθB) 전좌로 끝납니다. 이것은 프로토티면역세포가 인터류킨(IL)-1β, IL-6 및 TNF-α6과 같은 염증성 사이토카인을생성하고 방출하게 한다. 그러나, 다른 세포 유형이 TLR4 자극에 반응하는 방식은 명확하지 않다. 섬유아세포는 암 및 낭포성 섬유증과 같은 광범위한 병리학에 연루되어 있으며 최근에는 단핵구 화학적 매력및 염증 촉진 7,8,9.  우리 실험실은 급성 및 만성 통증의 발달에 섬유 아세포의 역할에 관심이, 초기 증거는 섬유 아세포에 의해 발표 된 요인 (매트릭스 금속 종로 단백질 효소 (MMPs), 금속 종단 단백질 효소의 조직 억제제 (TIMPs), 및 섬유 아세포 성장 인자 (FGFs))는 신경 병성 통증10에관여합니다.

세포의 활성화 상태는 다음과 같은 다양한 인자에 의해 결정될 수 있다: 즉각적인 초기 유전자의 유도, 변경된 단백질 발현, 세포 증식, 및 형태학적 변화11,12,13. 세포의 활성화가 병리학에 기여하는 방법에 관하여 우리가 가질 수 있는 질문에 대답하기 위하여 존재하는 많은 기술이 있습니다, 그러나 그(것)들은 모두 그들의 한계가 있습니다. 프로토타입 면역조직화학은 형광성 으로 태그가 부착된 항체를 사용하여 고정 된 조직에 관심있는 단백질을 라벨링하며, 이는 비특이적일 수 있으며 종종 유익한 결과를 산출하기 전에 상당한 문제 해결이 필요할 수 있습니다14. 서양 블로팅은 사후 조직에서 단백질 발현 수준을 비교할 때 유용한 기술입니다. 그러나, 조직학 분대는 이 기술에 결여되고 연구원은 형태학15에있는 어떤 변경든지 확인할 수 없습니다. RNA-Seq는 많은 경우에 통찰력있는 데이터를 산출하는 견본에 있는 메신저 RNA의 존재를 정량화하는 것을 허용합니다; 그러나, 전사와 번역 사이의 간격은 자극16후에 시간적 분해를 갖기 어렵게 만든다. 공초점 화상 진찰은 조직의 단면에 존재하는 단백질의 발현 및 공동 국소화를 결정하는 데 유용하다17. 종종 이것은 조직 샘플 전체를 대표하지 않습니다. 대조적으로, 다중 광자 현미경은 사용자가 포괄적인 3차원 표현18을만드는 견본에 대략 1 mm 깊이를 심층으로 심을 수 있습니다. 따라서, 우리는 생체 내, 2 광자 이미징 준비에 초점을 선택, 이러한 실험에서 수집 된 데이터는 살아있는 조직의 높은 플라스틱 및 상호 연결된 미세 환경에 더 직접적으로 관련되어 있기 때문에.

생체 내에서 단백질 수용체 상호작용을 연구하는 장점은 세포가 사후 조직 추출의 유해하고 예측할 수 없는 영향 없이 그들의 모국 환경에서실시간으로 자극에 반응하는 방법을 명확하게 포착할 수 있다는 것이다 19. 또한, 종방향 연구는 활성화로 인해 발생할 수 있는 세포 가소성과 프라이밍을 평가하기 위해 수행될 수 있다.  2 광자 이미징을 사용하여 외부 자극이 적용될 때 존재하는 미세 환경의 무결성을 보존합니다. 이 프로토콜은 생체 내에서 몇 시간 동안 형광 태그가 붙은 LPS의 말초 주입 후 섬유아세포에서 분자의 섭취를 식별하는 방법과 섬유아세포 활성화에서 TLR4의 역할을 제공한다.

Protocol

동물 절차는 달라스 기관 동물 관리 및 사용 위원회에서 텍사스 대학에 의해 승인되었고 건강의 국가 학회 지침에 따라 있었습니다.  모든 실험은 C57BL/6 배경에서 사내에서 사육된 8-12주 된 수컷 및 암컷 마우스를 사용하여 수행하였다. 섬유아세포 특이적 단백질-1 프로모터에 의해 구동되는 cre-recombinase를 가진 형질전환 마우스는 상업적으로 구입하였다(Jackson, 012641) (FSP1cre)+/-tdTomato ?…

Representative Results

처음에, 우리는 발의 진피 층에 존재하는 모든 세포 유형에서 LPS-FITC의 섭취를 시각화하기 위해 야생 형 마우스의 뒷발에 LPS-FITC를 주입했습니다. 야생형 마우스에서 뒤발 의 진피 층에서 무수한 세포를 관찰한 결과, 야생형 마우스에서 형광태그가 붙은 LPS(영상1,2)에서 섬유아세포를 구체적으로 표적으로 삼으려고 노력했다. LPS-FITC로 주입된 동물의 발을 이미징하기 전에 우리는 진피 …

Discussion

틀림없이 생체 내 2 광자 이미징의 가장 중요한 단계는 다음과 같습니다 : 1) 다중 광자 설정 및 실험 요구에 적합한 유전 기자 마우스 및 형광 태그 단백질을 선택21,22; 2) 조직(23)에 있는 세포의 집단의 정확한 표현을갖도록 정확한 초점 평면을 이미징; 3) 부적절하게 고정된 동물(24)으로인한 이동 최소화; 4) 정량적으?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 작업은 교부금 NS096030(MDB)에 의해 지원됩니다. 우리는 또한 이미징 코어 매니저 Ved Prakash에 감사드립니다. 또한 UT 달라스의 올림푸스 디스커버리 센터/이미징 코어 시설에 장비와 지원을 제공한 것에 대해 감사드립니다.

Materials

10x PBS, 4 L Fisherbrand BP3994
700 Series MICROLITER Syringes, Hamilton, Model 705 LT Syringe Hamilton 80501
BD Precision Glide Needle 30G VWR 305106
Blue Pad Fisherbrand 1420665
Filter Cube: Green/Red (BP 495-540 DM570 BP 575-645) Olympus FV30-FGR
Isoflurane, USP 250 mL Vedco 50989-150-15
Lipopolysaccharides from Escherichia Coli O111:B4 – FITC conjugate Sigma-Aldrich F3665-1MG
Main scanner laser: Spectra Physics INSIGHT DS+ -OL pulsed IR LASER, tunable from 680 nm to 1300 nm, 120 fs pulse width at specimen plane Spectra Physics
Micro Centrifuge Tubes, 1.5 mL VWR 20170-333
Multiphoton Microscope: Olympus MPE-RS TWIN Olympus MPE-RS TWIN
Objective: Ultra 25x MPE water-immersion objective 1.05 NA, 2 mm WD Olympus XLPLN25XWMP2
Personal Lubricant Jelly (Gel) equate ZH727 2E F1
SGM-4 Stereotaxic Apparatus Narishige 16030
SomnoSuite Low-Flow Anesthesia System Kent Scientific Corporation SS-01
Stimulation laser: Olympus-specific SPECTRA PHYSICS MAI TAI HP DEEP SEE-OL pulsed IR LASER, tunable from 690 nm to 1040 nm, 100 fs pulse width at specimen plane Spectra Physics

References

  1. Ulevitch, R. J., Tobias, P. S. Recognition of gram-negative bacteria and endotoxin by the innate immune system. Current Opinion in Immunology. 11 (1), 19-22 (1999).
  2. Poltorak, A., et al. Defective LPS signaling in C3H/HeJ and C57BL/10ScCr mice: mutations in Tlr4 gene. Science. 282 (5396), 2085-2088 (1998).
  3. Bhattacharyya, S., Midwood, K. S., Yin, H., Varga, J. Toll-Like Receptor-4 Signaling Drives Persistent Fibroblast Activation and Prevents Fibrosis Resolution in Scleroderma. Advances in Wound Care. 6 (10), 356-369 (2017).
  4. Wadachi, R., Hargreaves, K. M. Trigeminal nociceptors express TLR-4 and CD14: a mechanism for pain due to infection. Journal of Dental Research. 85 (1), 49-53 (2006).
  5. Janssens, S., Beyaert, R. Role of Toll-like receptors in pathogen recognition. Clinical Microbiology Reviews. 16 (4), 637-646 (2003).
  6. Barratt, D. T., Klepstad, P., Dale, O., Kaasa, S., Somogyi, A. A. Innate Immune Signalling Genetics of Pain, Cognitive Dysfunction and Sickness Symptoms in Cancer Pain Patients Treated with Transdermal Fentanyl. PLoS One. 10 (9), 0137179 (2015).
  7. Paish, H. L., et al. Fibroblasts Promote Inflammation and Pain via IL-1alpha Induction of the Monocyte Chemoattractant Chemokine (C-C Motif) Ligand 2. American Journal of Pathology. 188 (3), 696-714 (2018).
  8. Turner, C. A., Eren-Kocak, E., Inui, E. G., Watson, S. J., Akil, H. Dysregulated fibroblast growth factor (FGF) signaling in neurological and psychiatric disorders. Seminars in Cell and Developmental Biology. 53, 136-143 (2016).
  9. Rommens, J. M., et al. Identification of the cystic fibrosis gene: chromosome walking and jumping. Science. 245 (4922), 1059-1065 (1989).
  10. Madiai, F., et al. Anti-fibroblast growth factor-2 antibodies attenuate mechanical allodynia in a rat model of neuropathic pain. Journal of Molecular Neuroscience. 27 (3), 315-324 (2005).
  11. Hoffman, G. E., Smith, M. S., Verbalis, J. G. c-Fos and related immediate early gene products as markers of activity in neuroendocrine systems. Frontiers in Neuroendocrinology. 14 (3), 173-213 (1993).
  12. Ieni, A., et al. Morphological and Cellular Features of Innate Immune Reaction in Helicobacter pylori Gastritis: A Brief Review. International Journal of Molecular Sciences. 17 (1), (2016).
  13. Brennen, W. N., Isaacs, J. T., Denmeade, S. R. Rationale behind targeting fibroblast activation protein-expressing carcinoma-associated fibroblasts as a novel chemotherapeutic strategy. Molecular Cancer Therapeutics. 11 (2), 257-266 (2012).
  14. Matos, L. L., Trufelli, D. C., de Matos, M. G., da Silva Pinhal, M. A. Immunohistochemistry as an important tool in biomarkers detection and clinical practice. Biomark Insights. 5, 9-20 (2010).
  15. Mahmood, T., Yang, P. C. Western blot: technique, theory, and trouble shooting. North American Journal of Medicine & Science. 4 (9), 429-434 (2012).
  16. Wang, Z., Gerstein, M., Snyder, M. RNA-Seq: a revolutionary tool for transcriptomics. Nature Reviews Genetics. 10 (1), 57-63 (2009).
  17. Jonkman, J., Brown, C. M. Any Way You Slice It-A Comparison of Confocal Microscopy Techniques. Journal of Biomolecular Techniques. 26 (2), 54-65 (2015).
  18. Denk, W., Strickler, J. H., Webb, W. W. Two-photon laser scanning fluorescence microscopy. Science. 248 (4951), 73-76 (1990).
  19. Srinivasan, M., Sedmak, D., Jewell, S. Effect of fixatives and tissue processing on the content and integrity of nucleic acids. American Journal of Pathology. 161 (6), 1961-1971 (2002).
  20. Tsutsumi, R., et al. PGE2 signaling through the EP4 receptor on fibroblasts upregulates RANKL and stimulates osteolysis. Journal of Bone and Mineral Research. 24 (10), 1753-1762 (2009).
  21. Golzio, M., Rols, M. P., Gabriel, B., Teissie, J. Optical imaging of in vivo gene expression: a critical assessment of the methodology and associated technologies. Gene Therapy. 11, 85-91 (2004).
  22. Victora, G. D., et al. Germinal center dynamics revealed by multiphoton microscopy with a photoactivatable fluorescent reporter. Cell. 143 (4), 592-605 (2010).
  23. Duemani Reddy, G., Kelleher, K., Fink, R., Saggau, P. Three-dimensional random access multiphoton microscopy for functional imaging of neuronal activity. Nature Neuroscience. 11 (6), 713-720 (2008).
  24. Kolesnikov, M., Farache, J., Shakhar, G. Intravital two-photon imaging of the gastrointestinal tract. Journal of Immunological Methods. 421, 73-80 (2015).
  25. Ruthazer, E. S., Cline, H. T. Multiphoton imaging of neurons in living tissue: Acquisition and analysis of time-lapse morphological data. Real-Time Imaging. 8 (3), 175-188 (2002).
  26. Liu, K., et al. In vivo Analysis of Dendritic Cell Development and Homeostasis. Science. 324 (5925), 392-397 (2009).
  27. Barber, P. R., et al. Multiphoton time-domain fluorescence lifetime imaging microscopy: practical application to protein-protein interactions using global analysis. Journal of the Royal Society Interface. 6, 93-105 (2009).
  28. Dunn, K. W., Kamocka, M. M., McDonald, J. H. A practical guide to evaluating colocalization in biological microscopy. American Journal of Physiology-Cell Physiology. 300 (4), 723-742 (2011).
  29. Gaigalas, A. K., et al. The Development of Fluorescence Intensity Standards. Journal of Research of the National Institute of Standards and Technology. 106 (2), 381-389 (2001).
  30. Tian, T., Wang, Y., Wang, H., Zhu, Z., Xiao, Z. Visualizing of the cellular uptake and intracellular trafficking of exosomes by live-cell microscopy. Journal of Cellular Biochemistry. 111 (2), 488-496 (2010).
  31. Buckers, J., Wildanger, D., Vicidomini, G., Kastrup, L., Hell, S. W. Simultaneous multi-lifetime multi-color STED imaging for colocalization analyses. Optics Express. 19 (4), 3130-3143 (2011).
  32. Zheng, J. H., Walters, E. T., Song, X. J. Dissociation of dorsal root ganglion neurons induces hyperexcitability that is maintained by increased responsiveness to cAMP and cGMP. Journal of Neurophysiology. 97 (1), 15-25 (2007).
  33. Ingaramo, M., York, A. G., Andrade, E. J., Rainey, K., Patterson, G. H. Two-photon-like microscopy with orders-of-magnitude lower illumination intensity via two-step fluorescence. Nature Communications. 6, 8184 (2015).
  34. Makale, M., et al. Extended-working-distance multiphoton micromanipulation microscope for deep-penetration imaging in live mice and tissue. Journal of Biomedical Optics. 14 (2), 024032 (2009).
check_url/59647?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Szabo-Pardi, T. A., Agalave, N. M., Andrew, A. T., Burton, M. D. In Vivo Two-Color 2-Photon Imaging of Genetically-Tagged Reporter Cells in the Skin. J. Vis. Exp. (149), e59647, doi:10.3791/59647 (2019).

View Video