Summary

Kinetisk screening af Nukleaseaktivitet ved hjælp af nukleinsyre sonder

Published: November 01, 2019
doi:

Summary

Ændret nukleaseaktivitet har været forbundet med forskellige menneskelige forhold, underliggende dets potentiale som en biomarkør. Den modulære og nem at implementere screeningmetode præsenteret i dette papir giver mulighed for udvælgelse af specifikke nukleinsyre sonder til at udnytte nuclease aktivitet som en biomarkør af sygdom.

Abstract

Nukleaser er en klasse af enzymer, der nedbryder nukleinsyrer ved at katalysere hydrolyse af fosfodiester bindinger, der forbinder de ribose sukkerarter. Nukleaser viser en række vitale fysiologiske roller i prokaryotiske og eukaryotiske organismer, der spænder fra at opretholde genom stabilitet til at yde beskyttelse mod patogener. Ændret nukleaseaktivitet har været forbundet med flere patologiske tilstande, herunder bakterielle infektioner og kræft. Til dette formål har nukleaseaktiviteten vist et stort potentiale for at blive udnyttet som en specifik biomarkør. En robust og reproducerbar screeningsmetode, der er baseret på denne aktivitet, er dog fortsat meget ønskelig.

Heri introducerer vi en metode, der gør det muligt at screene for nukleaseaktivitet ved hjælp af nukleinsyre sonder som substrater med omfanget af differentiering mellem patologiske og sunde tilstande. Denne metode giver mulighed for at designe nye sonde biblioteker, med stigende specificitet, på en iterativ måde. Således er flere runder af screening er nødvendige for at raffinere sonder ‘ design med forbedrede funktioner, drage fordel af tilgængeligheden af kemisk modificerede nukleinsyre syrer. Den foreslåede teknologis betydelige potentiale ligger i dens fleksibilitet, høje reproducerbarhed og alsidighed til screening af nukleaseaktiviteten i forbindelse med sygdomstilstande. Det forventes, at denne teknologi vil gøre det muligt at udvikle lovende diagnostiske værktøjer med et stort potentiale i klinikken.

Introduction

Nukleaser er en klasse af enzymer, der kan kløende fosfodiester-obligationerne, som danner rygraden i nukleinsyremolekyler. Den store mangfoldighed af nukleaser gør deres klassificering temmelig vanskelig. Der er dog nogle almindelige kriterier, der anvendes til at beskrive nukleaser, såsom substrat præference (deoxyribonukleinsyre (DNA) eller ribonukleinsyre (RNA)), spaltning site (endonukleaser eller exonucleaser), eller metal ion afhængighed, blandt andre1. Nukleaser er stærkt bevaret katalytiske enzymer, der har fundamentale roller i både prokaryotiske og eukaryotiske organismer og er blevet brugt, og fortsat anvendes, som genredigerings værktøjer2. De er også grundlæggende aktører inden for DNA-vedligeholdelse og-replikering, hvilket medvirker til at bevare genomstabiliteten og deltage i korrekturlæsning3. I bakterier, for eksempel, er nukleaser blevet identificeret som vigtige virulensfaktorer, i stand til at fremme bakteriel overlevelse ved at reducere effektiviteten af værtens immunsystem4,5,6,7 ,8. I pattedyr, er nukleaser blevet foreslået at være impliceret i apoptose9, mitokondrie Biogenese og vedligeholdelse10 og mægling af antibakterielle og antiviral medfødte immunrespons11. Ikke overraskende, nuclease aktivitet ændringer, uanset om forbedring eller mangel på, har været impliceret i en bred vifte af sygdomme hos mennesker. Disse sygdomme spænder fra en bred vifte af kræftformer12,13 til Hjertehypertrofi10 eller autoimmune sygdomme14. Derfor er nukleaser blevet interessante kandidater som biomarkører for en uensartet gruppe af menneskelige forhold. Faktisk har nukleaser allerede vist deres potentiale som vellykkede diagnostiske værktøjer til påvisning af infektioner forårsaget af specifikke bakterielle agenser, såsom Staphylococcus aureus eller Escherichia coli15, 16. i mange kræfttyper, udtryk for stafylokok nuclease domæne-holdige protein 1 (SND1) ribonuklease er tegn på dårlig prognose17. Hos patienter med kræft i bugspytkirtlen er forhøjet ribonuklease i (RNase i) serumniveauer blevet rapporteret18 og foreslået at være associeret med kræft celle fænotyper19. I iskæmiske hjertelidelser, såsom myokardieinfarkt eller ustabil angina pectoris, har deoxyribonuclease i (DNase i) serumniveauer vist sig at være en gyldig diagnostisk markør20,21.

Det har været en hypotese, at den globale plan for nukleaseaktivitet kan være forskellige i raske og sygdomstilstande. Faktisk har nylige rapporter brugt forskelle i nukleaseaktivitet til at skelne mellem sunde og kræft fænotyper22 eller til at identificere sygdomsfremkaldende bakterielle infektioner på en artsspecifik måde15,23. Disse fund har åbnet en ny Avenue for brugen af nukleaser som biomarkører af sygdom. Der er derfor en nødvendighed for at udvikle en omfattende screeningsmetode, der systematisk kan identificere sygdomsrelaterede forskelle i nukleaseaktiviteten, hvilket er af afgørende betydning for udviklingen af nye diagnostiske værktøjer.

Heri introducerer og beskriver vi en ny in vitro-screening tilgang (figur 1) for at identificere følsomme og specifikke sonder, der kan diskriminere mellem nukleaseaktiviteten i sund og usund, eller aktivitet, der er specifik for en type celle eller bakterier. Ved at udnytte nukleinsyrer modularitet designede vi et første bibliotek af dæmpede fluorescerende oligonukleotidsonder bestående af et omfattende sæt af forskellige sekvenser og kemi, som begge er vigtige parametre for Biblioteks design. Disse oligonukleotidsonder flankeres af en fluoroforet (fluorescein amidite, Fam) og en QUENCHER (tidevands QUENCHER 2, TQ2) ved henholdsvis 5 ‘ og 3 ‘ enderne (tabel 1). Ved at bruge denne fluorometriske analyse af energioverførsel (FRET) til måling af den enzymatiske nedbrydnings kinetik var vi i stand til at identificere kandidat sonder med potentiale til at diskriminere differentialmønstre af nukleaseaktivitet forbundet med raske eller sygdomstilstande. Vi designede en iterativ proces, hvor nye biblioteker oprettes baseret på de bedste kandidat sonder, som gør det muligt at identificere stadigt mere specifikke kandidat sonder i efterfølgende Screenings trin. Desuden udnytter denne fremgangsmåde den katalytiske karakter af nukleaser for at øge følsomheden. Dette opnås ved at drage fordel af den aktivatable karakter af reporter sonder og evne til nukleaser til kontinuerligt at behandle substrat molekyler, begge repræsenterer de vigtigste fordele i forhold til alternative antistof eller små molekyle-baserede screeningmetoder.

Denne tilgang tilbyder et yderst modulært, fleksibelt og let at gennemføre screeningsværktøj til identifikation af specifikke nukleinsyre sonder, der kan diskriminere mellem raske og sygdomstilstande, og en fremragende platform for udvikling af nye diagnostiske værktøjer, der kan tilpasses til fremtidige kliniske anvendelser. Som sådan blev denne metode anvendt til at identificere nukleaseaktiviteten afledt af salmonella typhimurium (i det følgende benævnt salmonella) til den specifikke identifikation af disse bakterier. I den følgende protokol rapporterer vi om en metode til at screene for bakteriel nukleaseaktivitet ved hjælp af kinetisk analyse.

Protocol

1. oligonukleotid bibliotek design og forberedelse Biblioteks design Baseret på følgende kriterier designe et bibliotek af standset fluorescerende oligonukleotid sonder mellem 8 og 12-Mer lang for at undgå sekundær struktur dannelse, med samme længde for alle sonder. Omfatte mindst ét DNA og en RNA-tilfældig sekvens, der indeholder en kombination af adenin (A), guanin (G), cytosin (C) og thymin (T)/uracil (U) (DNA og RNA-Proder i tabel 1).Bemærk: de DNA-og RNA-sekven…

Representative Results

Figur 1 viser arbejdsstrømmen for denne metode, som er opdelt i to screening runder. I den første runde af screening, vi brugte 5 DNA-sonder (DNA, DNA poly A, DNA poly T, DNA poly C og DNA poly G) og også 5 RNA prop’er (RNA, RNA poly A, RNA poly U RNA poly C og RNA poly G). De rå data for denne screening runde kan findes i supplerende tabel 1. I anden runde blev kemisk modificerede sonder syntetiseret ved at udskifte RNA-sekvensen med kemisk modificerede Nukleosider (all…

Discussion

Ændringer af nukleaseaktivitet har været forbundet med en bred vifte af sygdoms fænotyper, herunder forskellige typer af kræft og bakterielle infektioner. Disse ændringer foreslås at være det udløsende middel for en betingelse14, mens de i andre tilfælde er konsekvensen af en skadelig fysiologisk hændelse20 eller sygdomsfremkaldende agens16,26. Ikke overraskende, forsøg på at bruge nukleaser og nuclease …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gerne anerkende Luiza I. Hernandez (Linköping Universitet) for hendes omhyggelige revision af manuskriptet og værdifuld rådgivning. Dette arbejde blev støttet af Knut og Alice Wallenberg Foundation og den svenske regering strategisk forskning område i materialevidenskab om avancerede funktionelle materialer på Linköping University (fakultet Grant SFO-mat-LiU No. 2009-00971).

Materials

Black bottom, non-treated 96 well plate Fisher Scientific 10000631
Cytation1 BioTek CYT1FAV
Eppendorf tubes Thermofisher 11926955
Escherichia coli ATCC 25922
Microbank cryogenic storage vial containing beads Pro-Lab Diagnostics 22-286-155
Nucleic acid probes Biomers.net #
Phosphate Buffer Saline containing MgCl2 and CaCl2 Gibco™ 14040117
Salmonella enterica subs. Enterica ATCC 14028
Tris-EDTA Fisher Scientific 10647633
Tryptone Soya Agar with defibrinated sheep blood Thermo Fisher Scientific 10362223
Tryptic Soy Broth Sigma Aldrich 22092

References

  1. Yang, W. Nucleases: diversity of structure, function and mechanism. Quarterly Reviews of Biophysics. 44 (1), 1-93 (2011).
  2. Adli, M. The CRISPR tool kit for genome editing and beyond. Nature Communication. 9 (1), 1911 (2018).
  3. Mason, P. A., Cox, L. S. The role of DNA exonucleases in protecting genome stability and their impact on ageing. Age (Dordr). 34 (6), 1317-1340 (2012).
  4. Berends, E. T., et al. Nuclease expression by Staphylococcus aureus facilitates escape from neutrophil extracellular traps. Journal of Innate Immunity. 2 (6), 576-586 (2010).
  5. Kiedrowski, M. R., et al. Staphylococcus aureus Nuc2 is a functional, surface-attached extracellular nuclease. PLoS One. 9 (4), 95574 (2014).
  6. Morita, C., et al. Cell wall-anchored nuclease of Streptococcus sanguinis contributes to escape from neutrophil extracellular trap-mediated bacteriocidal activity. PLoS One. 9 (8), 103125 (2014).
  7. Hasegawa, T., et al. Characterization of a virulence-associated and cell-wall-located DNase of Streptococcus pyogenes. Microbiology. 156, 184-190 (2010).
  8. Moon, A. F., et al. Structural insights into catalytic and substrate binding mechanisms of the strategic EndA nuclease from Streptococcus pneumoniae. Nucleic Acids Research. 39 (7), 2943-2953 (2011).
  9. Li, L. Y., Luo, X., Wang, X. Endonuclease G is an apoptotic DNase when released from mitochondria. Nature. 412 (6842), 95-99 (2001).
  10. McDermott-Roe, C., et al. Endonuclease G is a novel determinant of cardiac hypertrophy and mitochondrial function. Nature. 478 (7367), 114-118 (2011).
  11. Wang, Y. T., et al. A link between adipogenesis and innate immunity: RNase-L promotes 3T3-L1 adipogenesis by destabilizing Pref-1 mRNA. Cell Death & Disease. 7 (11), 2458 (2016).
  12. Li, C. L., Yang, W. Z., Shi, Z., Yuan, H. S. Tudor staphylococcal nuclease is a structure-specific ribonuclease that degrades RNA at unstructured regions during microRNA decay. RNA. 24 (5), 739-748 (2018).
  13. Wan, L., et al. MTDH-SND1 interaction is crucial for expansion and activity of tumor-initiating cells in diverse oncogene- and carcinogen-induced mammary tumors. Cancer Cell. 26 (1), 92-105 (2014).
  14. Keyel, P. A. Dnases in health and disease. Developmental Biology. 429 (1), 1-11 (2017).
  15. Hernandez, F. J., et al. Noninvasive imaging of Staphylococcus aureus infections with a nuclease-activated probe. Nature Medicine. 20 (3), 301-306 (2014).
  16. Flenker, K. S., et al. Rapid Detection of Urinary Tract Infections via Bacterial Nuclease Activity. Molecular Therapy. 25 (6), 1353-1362 (2017).
  17. Kannan, N., Eaves, C. J. Tipping the balance: MTDH-SND1 curbs oncogene-induced apoptosis and promotes tumorigenesis. Cell Stem Cell. 15 (2), 118-120 (2014).
  18. Kemmer, T. P., Malfertheiner, P., Buchler, M., Kemmer, M. L., Ditschuneit, H. Serum ribonuclease activity in the diagnosis of pancreatic disease. International Journal of Pancreatology. 8 (1), 23-33 (1991).
  19. Fernandez-Salas, E., Peracaula, R., Frazier, M. L., de Llorens, R. Ribonucleases expressed by human pancreatic adenocarcinoma cell lines. European Journal of Biochemistry. 267 (5), 1484-1494 (2000).
  20. Fujibayashi, K., et al. Serum deoxyribonuclease I activity can be a useful diagnostic marker for the early diagnosis of unstable angina pectoris or non-ST-segment elevation myocardial infarction. Journal of Cardiology. 59 (3), 258-265 (2012).
  21. Kawai, Y., et al. Diagnostic use of serum deoxyribonuclease I activity as a novel early-phase marker in acute myocardial infarction. Circulation. 109 (20), 2398-2400 (2004).
  22. Hernandez, L. I., Ozalp, V. C., Hernandez, F. J. Nuclease activity as a specific biomarker for breast cancer. Chemical Communication (Cambridge). 52 (83), 12346-12349 (2016).
  23. Machado, I., et al. Rapid and specific detection of Salmonella infections using chemically modified nucleic acid probes. Analytica Chimica Acta. 1054, 157-166 (2019).
  24. Sanders, E. R. Aseptic laboratory techniques: plating methods. Journal of Visualized Experiment. (63), e3064 (2012).
  25. Worthington Biochemical Corporation. . Manual of Clinical Enzyme Measurements. , (1972).
  26. Burghardt, E. L., et al. Rapid, Culture-Free Detection of Staphylococcus aureus Bacteremia. PLoS One. 11 (6), 0157234 (2016).
  27. Bibette, J. Gaining confidence in high-throughput screening. Proceedings of the National Academy of Science U. S. A. 109 (3), 649-650 (2012).
  28. Hernandez, L. I., Machado, I., Schafer, T., Hernandez, F. J. Aptamers overview: selection, features and applications. Current Topics in Medicinal Chemistry. 15 (12), 1066-1081 (2015).
  29. Pande, J., Szewczyk, M. M., Grover, A. K. Phage display: concept, innovations, applications and future. Biotechnology Advances. 28 (6), 849-858 (2010).
  30. Skerra, A. Alternative binding proteins: anticalins – harnessing the structural plasticity of the lipocalin ligand pocket to engineer novel binding activities. FEBS Journal. 275 (11), 2677-2683 (2008).
  31. Ku, T. H., et al. Nucleic Acid Aptamers: An Emerging Tool for Biotechnology and Biomedical Sensing. Sensors (Basel). 15 (7), 16281-16313 (2015).
  32. Jayasena, S. D. Aptamers: an emerging class of molecules that rival antibodies in diagnostics. Clinical Chemistry. 45 (9), 1628-1650 (1999).
  33. Gray, B. P., Brown, K. C. Combinatorial peptide libraries: mining for cell-binding peptides. Chemical Reviews. 114 (2), 1020-1081 (2014).
check_url/60005?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Balian, A., Garcia Gonzalez, J., Bastida, N., Akhtar, K. K., Borsa, B. A., Hernandez, F. J. Kinetic Screening of Nuclease Activity using Nucleic Acid Probes. J. Vis. Exp. (153), e60005, doi:10.3791/60005 (2019).

View Video