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Cancer Research

라이브 셀에서 eIF4E-eIF4G 상호 작용을 측정하여 eIF4F 어셈블리 모니터링

Published: May 1, 2020 doi: 10.3791/60850
Automatic Translation
, ,
1p53 Laboratory, Neuros/Immunos, A*STAR (Agency for Science, Technology and Research)

Summary

여기서, 우리는 사용자가 선별 형식으로 eIF4F 복잡한 역학의 약물 유도 된 동요를 평가 할 수 있도록 살아있는 세포에서 eIF4E-eIF4G 상호 작용을 측정하는 프로토콜을 제시한다.

Abstract

eIF4F 복합체의 형성은 종종 인간에서 온코겐성 활성화를 겪는 신호 경로의 수렴을 위한 핵심 다운스트림 노드로 나타났습니다. eIF4F는 변환 개시의 mRNA-리보솜 모집 단계에 관여하는 캡 결합 복합체이다. 암의 많은 세포 및 전임상 모델에서 eIF4F의 규제 완화는 암 증식 및 생존에 관여하는 특정 mRNA 하위 집합의 증가된 번역으로 이어집니다. eIF4F는 캡 결합 서브유닛 eIF4E, 헬리케이스 eIF4A 및 스캐폴딩 서브유닛 eIF4G로부터 제작된 이종트리메릭 복합체이다. 활성 eIF4F 복합체의 조립에 중요한 것은 eIF4E와 eIF4G 단백질 간의 단백질 단백질 상호 작용이다. 이 문서에서는 라이브 셀에서 eIF4E-eIF4G 상호 작용 상태를 모니터링하는 eIF4F 어셈블리를 측정하는 프로토콜을 설명합니다. eIF4e:4G 세포 기반 단백질 단백질 상호 작용 분석법은 또한 eIF4F 복합 무결성의 약물 유도된 변화가 정확하고 안정적으로 평가될 수 있도록 합니다. 우리는 이 방법이 시판되는 화합물의 활성을 확인하거나 eIF4F 복합체의 형성을 효율적으로 방해하는 새로운 화합물 또는 양식의 추가 스크리닝을 위해 적용될 수 있다고 구상합니다.

Introduction

유전자 발현의 제어는 성장 증식 및 분화와 같은 세포 프로그램의 올바른 실행에 중추적 인 역할을한다. 조절 제어 메커니즘은 유전자 전사 수준 또는 mRNA 번역 수준에서 발휘될 수 있다. 지난 10 년 동안, 그것은 점점 더 분명 해지고 있다 개시 과정의 변조에 의해 번역 제어 보다는 오히려 신장 및 종료의 후반 단계 보다는 생물학적 기능의 넓은 범위를 재생 하는 단백질의 특정 하위 집합의 합성을 미세 하 게 조절할 수 있습니다.

생존에 관여하는 mRNA의 증가된 번역, 반자율적 및 반세포 반응은 여러 암에 연루되어 왔으며 또한 비정상적인 활성화 또는 번역 개시 요인1의발현에 인과 관계가 있다.

eIF4F 컴플렉스는 번역 개시의 마스터 레귤레이터입니다. mRNAs의 5'끝에 캡 구조를 결합함으로써, eIF4F는 초기 mRNA-리보솜 모집을 구동하고 차례로 약하게 번역 진핵 mRNA2의mRNA 번역 효율을 증가시키고 있다. eIF4F는 RAS/MAPK 또는 AKT/TOR 경로의 비정상적인 활성화를 수용하는 많은 암 모델에 대해 암 관련 mRNAs의 번역을 중재하여 암세포가 eIF4F를 조절하여 자체 신생물 활성을 강화하는 것을 시사합니다. eIF4F 복합형성을 억제하여 이 피드 포워드 루프의 중단은 매우 유망한 치료 전략3,4이다.

eIF4F 복합체는 (i) eIF4E, mRNA의 5' UTR에서 발견되는 캡 결합 서브유닛, (ii) eIF4A, RNA 헬리케이스 및 (iii) eIF4G, eIF4A 와 상호 작용하는 비계 단백질로 구성되며 결국40개의서브보를 모집한다. eIF4E와 eIF4G 연결은 기능성 eIF4F 복합체의 조립을 위한 속도 제한 단계이며 eIF4E 결합 단백질(4EBP, 멤버 1, 2 및 3)에 의해 부정적으로 조절된다6. 4EBP는 표준 및 비정식 eIF4E 바인딩 시퀀스7,8,9(인간 eIF4E에 대한 aa 604-646에 걸친 영역)로 구성된 인터페이스를 통해 eIF4E에 eIF4E 결합을 결합하여 eIF4E 복합 형성을 적극적으로 방지하는 eIF4E의 풀을 감소시킵니다. 이러한 단백질 단백질 상호 작용의 상호 작용은 주로 4EBP의 라파마이신 (mTOR)의 포유 동물 표적에 의해 조절된다. 미토제닉 자극시, mTOR은 4E-BP 단백질 제품군의 구성원을 직접 인광하여 eIF4E와의 연관성을 감소시키고, 이에 따라 eIF4E-eIF4G 상호 작용 및 기능성 eIF4F 복합체의 형성을 촉진한다10.

eIF4F 복잡한 무결성을 대상으로 하는 화합물 개발에 큰 노력에도 불구하고, 라이브 셀에서 eIF4E-eIF4G 상호 작용의 직접적인 중단을 측정하는 아세약의 부족은 세포 활성 히트 화합물에 대한 검색을 제한했다. 우리는 eIF4E-eIF4G 상호 작용을 통해 eIF4F 무결성의 상태를 실시간으로 모니터링하기 위해 coelenterazine 아날로그 (예를 들어, 나노 루크 기반 보완 분석)에 따라 루시파라제 분석체를 적용했습니다. 루시파아제 보완 단백질 시스템은 최소 자기 연결 및안정성(11)에최적화된 18kDa 단백질 단편(SubA)과 11개의 아미노산 펩타이드 단편(SubB)으로 구성된다. 인간 전체 길이 eIF4E 및 eIF4E 상호작용 도메인을 인간 eiF4G1(aa 604-646)으로부터 융합 제품으로 발현하면, 두 개의 상호 작용 단백질은 SubA 및 SubB 단편을 서로 가까이에 가져오고, 세포 침투성 기판의 존재가 결국 1개의 발광을 생성하게된다는활성 루시파아제의 형성을 유도할 것이다. 우리는 다른 곳에서 eIF4E:eIF4G604-646 보완 시스템16의시공 및 검증을 보고했다.

여기서는 eIF4E:eIF4G604-646 상호 보완 시스템(요청 시 사용 가능)을 사용하여 라이브 셀에서 4EBP1 매개 eIF4E-eIF4G 중단을 정확하게 측정할 수 있는 방법을 설명합니다. 또한, 우리는 잠재적인 암 치료 약으로 현재 임상 시험을 받고 있는 몇몇 mTOR 억제제의 효력을 측정해서 그것의 유용성을입증합니다 12. 오프 타겟 효과는 종종 약물 관련 활동을 마스크하기 때문에, 우리는 또한 eIF4E:eIF4G604-646 시스템 측정의 다재다능성을 고려하기 위해 세포 생존성의 직교 측정으로 확장 될 수있는 방법을 설명합니다.

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Protocol

HEK293 세포주 프로토콜에 사용되었고 덜벡코의 수정된 이글 배지에서 10% 태아 소 혈청, 2mM L-글루타민, 100 U/mL 페니실린/스트렙토마이신으로 보충하였다. 세포는 가습 환경에서 5% CO2로 37°C에서 배양되었다.

1. eIF4E:eIF4G604-646 보완 분석등을 통한 eIF4F 복잡한 중단에 대한 정량적 평가

  1. eIF4E:eIF4G604-646 보완 분석의 세포 배양 및 일시적인 연분
    1. 모든 실험에 20개 미만의 구절을 사용하여 새로 해동된 세포를 사용하십시오. 1일째에는 표준 셀 카운터를 사용하여 셀 번호를 결정하고 Trypan blue 제외방법(13)을사용하여 실행 가능한 총 셀을 계산한다.
    2. 종자 6웰 플레이트0.9 - 1.2 x 106 의 HEK 293 셀의 2 mL에서 표준 성장 배지.
      참고: 위에 표시된 세포주 내에서 최상의 경질 효율을 달성하기 위해 도금 된 세포가 시드 후 하루에 70-90 % 응수되도록하십시오.
    3. 2일 오전, SubA-eIF4E 및 eIF4G604-646-SubB플라스미드를 이용한 공동 트랜스펙트 세포는 지질계 형 질산성 트랜스포마이트 시약(재료표참조)을 사용한다.
      1. 각 배설물및 실온에서 5분 동안 배양하는 페놀 레드 없이 125 μL의 감소된 혈청 배지를 함유한 튜브에 리포솜 기반 용액의 9μL을 희석시하십시오.
      2. 각 피질 튜브에 대해 125 μL의 감소된 혈청 배지에 각 플라스미드의 3 μg를 희석하여 DNA의 마스터 믹스를 준비합니다.
      3. DNA 마스터 믹스 튜브에 증강 기시약 12 μL을 추가하고 잘 섞은 다음 DNA를 즉시 추가합니다: 증강 마스터 믹스는 희석된 리포좀의 각 튜브에 1:1비율로 혼합됩니다. 실온에서 15분 동안 배양하십시오.
      4. 각 우물에 DNA 지질 복합체를 추가하고 24h에 대해 5 % CO2로 37 °C 인큐베이터에서 세포를 배양합니다.
    4. 3일 아침, PBS 1mL로 각각 헹구는 다.
    5. PBS를 제거하고 37°C에서 5분 동안 트립신의 0.3mL로 각각 의 세포를 배양한다.
    6. 각 우물에 0% FCS를 함유하는 페놀 레드 없이 감소된 혈청 배지의 2mL을 첨가하여 트립신을 중화시키고 15mL 튜브로 전염된 세포를 전달한다.
      참고: 페놀 레드는 루시파아제 활동을 방해할 수 있습니다. 따라서, 세포는 페놀 레드 없이 매체에서 이 단계에서 부터 처리되어야 합니다.
    7. 290 x g에서 5 분 동안 셀을 회전시키고 매체를 흡인시합니다. 0% FCS를 함유하는 페놀 레드 없이 감소된 혈청 배지의 2mL에서 세포를 다시 중단한다. 1.1 단계에서 설명된 대로 계산합니다.
    8. 종자 0% FCS를 함유하지 않고 96개의 불투명 플레이트에서 90,000개의 세포밀도로 HEK 293 세포를 감염하였다. 3가지 상이한 화합물에 대해 동일한 실험 내에서 3개의 기술적 복제를 얻기 위해, 가장자리의 우물을 제외한 세포가 있는 플레이트의 60웰을 시드한다.
    9. 감염된 세포를 파종한 직후 10μL의 10μL를 DMSO 화합물 용액을 추가합니다(1.2단계 참조).
  2. 복합 제제
    1. 100% DMSO(v/v)로 관심 화합물을 용해시켜 1m 복합 스톡 솔루션을 준비한다. 각 화합물 적정에 대해 3개의 복제를 갖기 위해 1mM 복합 스톡 용액의 8μL을 사용하십시오.
      참고 : 사용되는 1 mM 재고 화합물의 볼륨은 필요한 것보다 더 많은 것입니다. 이 작업은 피펫팅 오류를 고려하기 위해 수행됩니다.
    2. 1m 스톡의 4μL을 각 적정점에 대해 100% DMSO의 4μL로 재고 화합물 용액의 2배 연속 희석을 수행한다.
      참고: 완전한 복합 적정의 경우 시작 재고로부터 9개의 직렬 희석을 100% DMSO로 수행합니다. 여러 화합물을 테스트해야 하는 경우 이 단계와 후속 희석을 용이하게 하기 위해 96개의 웰 플레이트와 멀티채널 파이펫을 사용하십시오.
    3. 2배 의 직렬 희석의 각 지점에 대해 36μL의 HPLC 급 멸균수를 추가하여 10% DMSO(v/v)에서 10배 작동 용액의 40μL을 준비합니다(즉, 100 μM ~ 0.39 μM ~ 0.39 μM 10% DMSO 스톡 시리즈는 0.039%에 10μMM의 최종 용액으로 이어질 때 0.039%의 최종 용액으로 이어질 것이다). 처리 제어는 HPLC 급 멸균 수에서 10% DMSO 전용 재고 용액을 준비합니다.
    4. 10μL의 10μL을 96개의 잘 불투명한 플레이트에 추가하여 잔류 DMSO 농도가 1%(v/v)의 잔류 DMSO 농도를 100μL의 총 부피로 산출하고 5% v/v 대기 CO2로37°C에서 3시간 동안 배양한다.
  3. 루시파아제 보완 및 생존 가능성 분석
    1. 3h의 약물 섭취 후, 1부량의 기판과 희석 시약 19권의 희석 시약을 결합하여 루시파라기 기질 시약을 준비하기 시작한다(제조업체의 지침 참조).
      참고: 루시파라제 분석은 시판되는 키트를 사용하여 수행됩니다(재료표참조).
    2. 멀티채널 파이펫을 사용하여 기판 시약 25μL을 즉시 추가합니다.
    3. 350 rpm에서 실온에서 궤도 셰이커에서 50 분 동안 접시를 흔들어보십시오.
    4. 플레이트 판독기를 사용하여 발광을 평가합니다. 이렇게 하려면 미러 판독기를 발광 및 455에 방출 필터에 설정합니다. 측정 높이는 6.5mm로 측정 시간이 1s입니다.
    5. 세포 생존가능성을 제고하기 위해 33μL의 생존가능성 분석 시약을 추가한 다음, 플레이트 판독기를 사용하여 실온에서 15분 후에 발광을 다시 측정합니다.
    6. 600nm에 미러 판독기와 방출 필터를 설정하여 플레이트 판독기의 발광을 평가합니다. 측정 높이는 6.5mm로 측정 시간이 1s입니다.
      참고: 생존능력은 제조업체 지침에 따라 세포 용해시에 따른 ATP의 세포내 수준을 측정하여 평가됩니다. 이 경우 생존 가능성 분석이 다른 방출 파장을 가진 다른 루시파라제를 사용하기 때문에 멀티플렉스가 가능합니다.
    7. 데이터를 사용하여 데이터를 4파라미터 피팅 곡선 방정식에 맞게 곡선을 사용하여 각 화합물의 IC50 값을 결정합니다.
      Y = ((A-D)/(1+(x/C)^B)) + D
      숫자 값 D와 A는 곡선 피팅 프로세스에서 구속되어야 합니다.
      eIF4E:4G 보완 분석에서 예상되는 최소한의 곡선 연삭 또는 최소한의 이론적 반응 수준에 대한 Y축의 발광 값.
      eIF4E:4G 보완 분석에서 예상되는 최대 곡선 연삭 또는 최대 이론적 레벨 응답에 대한 Y축의 발광 값입니다.
      참고: 최소 응답에 대한 값은 1% DMSO(v/v) 대조군 처리로부터 파생되며 최대 반응의 값은 세포 생존에 영향을 미치지 않고 고원된 높은 친화성 mTOR 억제제의 최대 반응으로부터 파생된다.

2. eIF4E:eIF4G604-646 분석 억제와 eIF4F 복합 중단

  1. 분석에 의해 측정되는 신호가 화합물에 의한 eIF4E-eIF4G 상호작용의 물리적 중단에 대응하는지 확인하기 위해, 종자 세포는 1.1단계에서 설명된 바와 같이.
  2. 다음날, 배지를 페놀 레드를 함유하지 않는 감소된 혈청 배지의 1mL로 교체하고 관심 있는 화합물로 4h에 대해 배양한다. 총 부피 1mL에서 잔류 DMSO 농도를 1%(v/v)로 보장합니다.
    참고: 결과와의 상관관계를 쉽게 허용하기 위해 측정된 보완 분석 분석 곡의 시작점, 중간점 및 끝점에서 복합 농도를 사용한다.
  3. Lyse 세포 및 수행 m7GTP eIF4F 및 eIF4E:4EBP1 복합체를 격리 아래로 당겨. m7GTP 풀 다운 실험을 수행하는 방법에 대한 자세한 절차는 다른 곳에서 찾을 수 있습니다14.
  4. 서쪽 블롯 분석에 의해 m7GTP 바운드 eIF4G, eIF4E 및 4EBP1 단백질 수준을 검출한 다음, 보완 분석 신호 억제와 eIF4F 복잡한 중단과 상관관계가 있습니다.

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Representative Results

eIF4E:eIF4G604-646 보편시스템의 감도를 검증하기 위해, eIF4F 복합 조립체의 4EBP1 중재 억제는 mTOR 억제제를 사용하여 평가되었다. 4EBP 단백질 제품군의 mTORC1 키나아제 의존형 인산화를 억제함으로써, mTOR 억제는 eIF4E에 4EBP1 연결을 강화하여, 따라서 eIF4F 분해15. mTOR 키나아제의 기계적으로 다른 억제제의 두 종류는 시험되었다: 라팔로그 (예를 들어, 라파마이신) 이는 mTORC1의 알로스터 억제제이지만 mTORC2 및 ATP 경쟁 기반 억제제 (예를 들어, PP242) mTORC1 과 mTORCa 양성 활성을 모두 억제하도록 특별히 설계되었습니다.

HEK293 세포는 1단계에서 설명된 바와 같이 eIF4E:eIF4G604-646 보완 시스템으로 전감염되었다. 24h의 형질 전환 후, 세포는 mTOR 억제제 PP242 및 라파마이신으로 재시드및 처리되었다(1.2단계에서 설명된 바와 같이). 치료 후 4 시간, 발광은 이전에 설명 된 바와 같이, 세포 생존에 선행된 평가되었습니다. 도 2에도시된 바와 같이, PP242는 0.72의 계산된 IC50을 ± 0.04 μM의 용량 의존억제를 생성하고, 6.88± 0.88 μM의 IC50은 라파마이신(도2A)에대해 유래된다. 플레이트는 세포 생존 가능성 분석(도2D)을위해 멀티플렉션하였다. 이 분석은 PP242나 라파마이신이 세포 생존능력이 현저한 감소를 일으키지 않는다는 것을 보여주며, eIF4E:eIF4G604-646 보완 시스템의 발광 감소는 비특이적 세포 사멸 때문이 아니라 eIF4E:4G 상호작용의 중단을 통해 서술적임을 입증한다.

도 2에서측정된 적정 곡선의 시작, 중간 및 엔드포인트에 해당하는 화합물 농도로 비감염된 세포를 배양하여 수행된 m7GTP 풀다운 실험은 내인성 eIF4E-eIF4G 상호작용의 4EBP1 매개 중단이 측정된 eIF4E:eIF4G604-646과 상관관계가 있음을보여 준다.2.2.2...2C 이러한 결과에 부합하는 PP242는 HEK 293 세포(그림3A)에서테스트된 실험 조건 하에서 라파마이신보다 총 4EBP1인산화를 보다 강력하게 억제하는 것으로 나타났으며, 두 억제제 모두 mTOR 신호에 미치는 영향을 정상적으로 보였으며, 라파마이신은 mTORC1 기체 및 PP242에 대해 더욱 활발히 활동하고 있는 것으로나타났다.

종합하면, 이러한 결과는 PP242가 HEK293 세포에서 라파마이신보다 eIF4F 복합 형성을 방해하는 데 더 효과적이며 eIF4E:eIF4G604-646 시스템이 살아있는 세포에서 eIF4F 복합 조립을 정확하게 측정할 수 있음을 더욱 입증하는 것으로 나타났다.

Figure 1
그림 1: eIF4E:eIF4G604-646 보보완 시스템. 단백질 X(eIF4E) 및 단백질 Y(eIF4G604-646)의상호작용이 어떻게 SubA 및 SubB 융합이 서로 근접하여 활성 루시파아제를 재구성할 수 있는지를 보여주는 회로도 표현. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

Figure 2
그림 2: eIF4F 복합체의 4EBP1 중재 중단. (A)PP242 및 라파마이신 eIF4E:eIF4G604-646 분석적 작용은 EIF4E와 eIF4G 사이의 상호 작용을 모델링하여 감염된 HEK 293 세포에서. (B,C) HEK 293 추출물및 m7GTP에서 eIF4E, eIF4G 및 4EBP1의 내인성 수준을 각각 PP242 또는 라파마이신의 농도가 다른 배양 세포의 배양 후 아래로 끌어당기는 서구 블롯 분석. (D)세포 생존력 및 발광을 위해 멀티플렉션을 평가한 A에서 처리된 세포를 치료하였다. 모든 값은 ± SD(n=3)를 나타냅니다. 이 그림은16에서수정되었습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

Figure 3
도 3: 4EBP1 인성에 대한 mTOR 억제의 차동 효과. (A)PP242 및 라파마이신의 표시 농도로 처리된 비감염 된 HEK293 세포에서 4EBP1의 인산화 상태의 서양 블롯 분석. (B)이중 MTORC1/2 활성 부위 억제제 PP242 또는 mTORC1 라파마이신의 알로스테릭 억제제로 처리된 비감염 된 HEK293 세포에서 AKT 및 S6 인산화 상태의 서부 블롯 분석. 베타 액틴은 로딩 제어뿐만 아니라 총 4EBP1, AKT 및 S6에 대해 시각화되었습니다. 이 그림은16에서수정되었습니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

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Discussion

본 문서에 설명된 방법은 라이브 셀에서 eIF4G-eIF4E 상호작용의 직접 측정을 통해 eIF4F 복합 조립을 정량적으로 모니터링하기 위해 루시파라제 계 보완 분석법을 활용한다. eIF4E-eIF4G 보완 시스템의 사용에 대한 세부 정보를 제공하고 있으며, 또한 eIF4E-eIF4G 상호작용16의약물 유발 4EBP1 매개 해리를 측정하는 데 시스템이 매우 정확하다는 것을 보여주었습니다. 이 분석의 처리량을 용이하게하기 위해 이 문서에 설명된 실험 용 설정은 96 개의 마이크로 플레이트 형식 사용을 위해 설계되었습니다.

최적의 결과를 얻으려면 분석 작업을 수행할 때 두 가지 중요한 단계를 고려해야 합니다. 첫째, 실험 간의 전환 효율은 유사하게 유지되어야 합니다. 이것은 낮은 통로 수 세포의 사용을 통해 보장 될 수있다, 엄격하게 파종의 날에 세포를 계산하여. 세포 융합은 또한 DNA 형질이 수행되기 전에 평가되어야 하며, 세포 결합이 70-90 % 미만인 경우 지질 기반 의질 시약을 가진 세포에 권장되지 않기 때문에. 둘째, 세포 생존가능성 분석과 함께 보완 분석방법을 멀티플렉스하는 것이 중요하다. 일부 화합물은 주로 해로운 효과 통해 실행 가능한 세포의 수를 감소 하 여 luciferase 신호에 영향을 미칠 수 있습니다. 따라서 eIF4E:eIF4G604-646 상호효과 및 비특이적 효과를 해결하기 위한 보완 분석 직후 셀의 생존가능성을 측정하는 것이 중요하다.

단백질 단백질 인터페이스는, eIF4E와 eIF4G 사이 하나, 이는 소수성 갈라진 갈라진 것이 없고 상대적으로 크고 평면인, 일반적으로 종래의 소분자 치료제(&500 MW)17에의해 "약물이 없는"것으로 여겨진다. 따라서 이러한 유형의 표면(예: 거시성 및 펩티도마메틱 화합물)과 효율적으로 상호 작용하는 새로운 양식의 개발에 대한 관심이 증가하고 있다. 그러나, 이러한 새로운 양식의 대부분은 선천적으로 세포막을 교차하고 그들의 표적을 참여시킬 수 없습니다. 이러한 문제를 회피하기 위해 많은 연구 그룹은 새로운 화학 최적화 및 세포 전달 전략에 대한 연구를 수행하고 있습니다. 우리는 eIF4E:eIF4G604-646 라이브 셀 PPI 분석 및 기타 유사한 PPI 파생 분석이 이러한 전략을 육성하고 유효성을 검사하는 데 중추적 인 역할을 할 것으로 상상합니다.

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Disclosures

저자는 공개 할 것이 없습니다.

Acknowledgments

이 작품은 p53lab (BMSI, A * STAR)과 JCO VIP 보조금 (A * STAR)의 핵심 예산에 의해 지원되었습니다.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
293FT cells Thermo Fisher Scientific R70007
Cell culture microplate 96 well, F-Bottom greiner bio-one 655083
Cell titer Glo 2.0 PROMEGA G9241
Envision Multilabel Reader PerkinElmer not applcable
Finnpipette F2 Multichannel Pipettes 12-channels 30-300 ml Thermo Fisher Scientific 4662070
Finnpipette F2 Multichannel Pipettes 12-channels 5-50 ml Thermo Fisher Scientific 4662050
FUGENE6 PROMEGA E2692
Lipofectamine 3000 Thermo Fisher Scientific L3000015
NanoBiT PPI Starter Systems PROMEGA N2014
Optimem I Reduced Serum Mediun, no phenol red Thermo Fisher Scientific 11058021
Orbital shaker Eppendorf not appicable
γ-Aminophenyl-m7GTP (C10-spacer)-Agarose Jena Bioscience AC-155S

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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암 연구 문제 159 세포 생물학 eIF4F 복합체 번역 제어 루시파아제 보완 분석 mTOR 신호 단백질 단백질 상호 작용
라이브 셀에서 eIF4E-eIF4G 상호 작용을 측정하여 eIF4F 어셈블리 모니터링
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Frosi, Y., Ramlan, S. R., Brown, C.… More

Frosi, Y., Ramlan, S. R., Brown, C. J. Monitoring eIF4F Assembly by Measuring eIF4E-eIF4G Interaction in Live Cells. J. Vis. Exp. (159), e60850, doi:10.3791/60850 (2020).

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