Summary

Modellering Hepatitis B Virus Infektion i ikke-hepatisk 293T-NE-3NRs celler

Published: June 05, 2020
doi:

Summary

Dette manuskript beskriver en detaljeret protokol for Hepatitis B-virus (HBV) infektion i nye manipuleret 293T celler (293T-NE-3NRs, der udtrykker menneskelige NTCP, HNF4α, RXRα og PPARα) og traditionelle leverceller (HepG2-NE, der udtrykker menneskelige NTCP).

Abstract

HBV hovedsageligt inficerer humane hepatocytter, men det har også vist sig at inficere extrahepatic væv såsom nyre og testikler. Ikke desto mindre er cellebaserede HBV-modeller begrænset til hepatomacellelinjer (såsom HepG2 og Huh7), der overexpresserer en funktionel HBV-receptor, natrium taurocholate-co-transport af polypeptid (NTCP). Her brugte vi 293T-NE-3NRs (293T overexpressing humanE NTCP, HNF4α, RXRα og PPARα) og HepG2-NE (HepG2 overexpressing NTCP) som modelcellelinjer.   HBV-infektion i disse cellelinjer blev udført enten ved hjælp af koncentrerede HBV-viruspartikler fra HepG2.2.15 eller ved co-culturing HepG2.2.15 med målcellelinjerne. HBcAg immunofluorescens for HBcAg blev udført for at bekræfte HBV-infektion. De to metoder, der præsenteres her, vil hjælpe os med at studere HBV-infektion i ikke-levercellelinjer.

Introduction

Hepatitis B påvirker livet for mere end 2 milliarder mennesker og er en af de største trusler mod folkesundheden. Omkring 257 millioner mennesker er kronisk inficeret med hepatitis B-virus (HBV) på verdensplan, hvilket medfører en stor byrde for samfundet1. Hepatocytter er ikke de eneste celler inficeret med HBV og andre celler i ikke-levervæv, såsom nyre og testiker, er også inficeret med denne virus2,3. I øjeblikket, HBV infektion cellemodeller er begrænset til humane hepatocytter med kun få ikke-hepatisk celle linje modeller. Dette hæmmer studiet af HBV-infektion og HBV-relateret patologi af ikke-levervæv. Her præsenterer vi protokoller for at studere HBV-infektion i ikke-lever 293T celler samt i hepatoma-baserede celler.

Natrium taurocholate co-transport polypeptid (NTCP) er en funktionel receptor for human hepatitis B og hepatitis D virus4. Hepatocyt nuklear faktor 4α (HNF4α), retinoid X receptor α (RXRα) og peroxisome proliferator-aktiveret receptor α (PPARα) er leverberigede transskriptionsfaktorer, der begrænser viral tropisme i HBV. De er blevet verificeret for at fremme HBV pregenomic RNA syntese og støtte HBV replikation i en nonhepatoma cellelinje5. Vi konstrueret tre forskellige cellelinjer, HepG2 cellelinjer udtrykker NTCP (HepG2-NE), 293T cellelinje udtrykker NTCP (293T-NE) og 293T cellelinje udtrykke fire vært gener; NTCP, HNF4α, RXRα og PPARα (293T-NE-3NRs). Der blev udviklet to metoder til HBV-infektion baseret på 293T-NE-3NRs (figur 1). Den første metode anvender vaccination i 293T-NE-3NRs med høj viral genomækvivalens (høj GEq (150), DMSO og PEG8000) i 24 timer. Den anden metode anvender co-dyrkning 293T-NE-3NRs med HepG2.2.15, som kan producere HBV partikler (lav GEq (ca. 1,83) uden DMSO og PEG8000), og dermed tæt efterligne naturlige forhold.

HepG2.2.15 celler er afledt af HepG2 linje og kronisk udskiller infektiøse HBV, samt subvirale partikler i kulturmediet6,7. Cyclosporin A (CsA) er et immunhæmmende middel, der anvendes klinisk til undertrykkelse af xenograftafstødning. Undersøgelser har vist, at CsA hæmmer HBV’s indtræden i dyrkede hepatocytter ved at hæmme NTCP’s transportaktivitet og blokere bindingen af NTCP til store kuvertproteiner8.

HepG2-NE-celler blev anvendt som positiv kontrol, mens CsA-behandlede celler blev anvendt som negativ kontrol. Ved at sammenligne med de positive og negative kontrolgrupper kan vi finde ud af, hvilke værtsgener der spiller en afgørende rolle i HBV-infektion. Derudover, gennem denne form for HBV infektion, kan vi også finde andre nye mekanismer eller vært gener involveret i HBV infektion.

Protocol

Kultur, indsamling af supernatanter fra HepG2.2.15-celler og HBV-infektion bør udføres i laboratorium på niveau II (P2) eller biosikkerhedsniveau III (P3) i henhold til landets retningslinjer for biosikkerhed. Laboratoriesikkerhedspraksis bør følges for at sikre laboratoriepersonalets sikkerhed, og alle bør vaccineres og påvises HBsAb-positiv, før der udføres HBV-forsøg. Overhold cellernes tilstand ved hvert trin, før du fortsætter til næste trin. Human serum prøver blev anvendt i overensstemmelse med godke…

Representative Results

Vi konstruerede pSIN-NTCP-EGFP plasmid, der udtrykker NTCP- og EGFP-fusion og med puromycinresistens. Plasmidet blev transficeret til HepG2- og 293T-celler for at konstruere stabile cellelinjer HepG2-NE og 293T-NE, der udtrykker NTCP og EGFP. Plasmider (pSIN-HNF4α, pSIN-RXRα, pLV-PPARα-puro-flag) med puromycinresistens og udtryk blev transficeret til 293T-NE-celler for at konstruere en stabil cellelinje, der udtrykker 4 værtsgener9. Udtrykket ntcp-EGFP kan observeres ved grøn fluorescens, og …

Discussion

Her introducerer vi protokoller for HBV-infektion i ikke-lever 293T-NE-3NRs og hepatoma-baserede HepG2-NE-celler. 293T-NE-3NR’er var egnede til HBV-infektion ved både høj og lav GEq. Følgende kritiske trin skal tages i betragtning, når du bruger vores protokol. Cellestatus er en vigtig faktor for en vellykket infektion. Infektionsmediet skal skiftes rettidigt efter den indledende periode med HBV-infektion. 293T-NE-3NRs celler er typisk skrøbelige efter infektion med høje virale titere. Derfor skal disse celler vask…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af National Natural Science Foundation of China (nr. 81870432 og 81570567 til X.L.Z.), (nr. 81571994 til P.N.S.), Research Fund for International Young Scientists (nr. 81950410640 til W.I.); Li Ka Shing Shantou University Foundation (Nr. L1111 2008 til P.N.S.). Vi vil gerne takke prof. Stanley Lin fra Shantou University Medical College for nyttige råd.

Materials

0.45μm membrane filter Millex-HV SLHU033RB Filter for HepG 2.2.15 supernatant
293T-NE Laboratory construction —— Cell model for HBV infection
293T-NE-3NRs Laboratory construction —— Cell model for HBV infection
594 labeled goat against rabbit IgG ZSGB-BIO ZF-0516 For immunofluorescence assay,second antibody
6-well plate BIOFIL TCP010006 For co-culture
Amicon Ultra 15 ml Millipore UFC910008 For concentration of HepG 2.2.15 supernatant
BSA Beyotime ST023 For immunofluorescence assay
Cyclosporin A Sangon biotech 59865-13-3 inhibitor of HBV infection
DAPI Beyotime C1006 For nuclear staining
Diagnostic kit for Quantification of Hepatitis B Virus DNA(PCR-Fluorescence Probing) DAAN GENE 7265-2013 For HBV DNA detection
DMEM HyClong SH30243.01 For culture medium
DMSO Sigma-Aldrich D5879 For improvement of infection efficiency
Fetal bovine serum(FBS) CLARK Bioscience FB25015 For culture medium
Fluorescence microscope ZEISS Axio observer Z1 For immunofluorescence assay
HepG2-NE Laboratory construction —— Cell model for HBV infection
HBcAg antibody ZSGB-BIO ZA-0121 For immunofluorescence assay, primary antibody
PBS ZSGB-BIO ZLI-9062 For cell wash
PEG8000 Merck P8260 For infection medium
Penicillin-Streptomycin-Glutamine Thermo Fisher 10378016 For culture medium
Transwell CORNING 3412 For co-culture
Tween 20 sigma-Aldrich WXBB7485V For PBST
Virkon Douban 6971728840012 Viruside

References

  1. World Health Organization. Global hepatitis report, 2017. World Health Organization. , (2017).
  2. Yoffe, B., Burns, D. K., Bhatt, H. S., Combes, B. Extrahepatic hepatitis B virus DNA sequences in patients with acute hepatitis B infection. Hepatology. 12, 187-192 (1990).
  3. Mason, A., Wick, M., White, H., Perrillo, R. Hepatitis B virus replication in diverse cell types during chronic hepatitis B virus infection. Hepatology. 18, 781-789 (1993).
  4. Yan, H., et al. Sodium taurocholate cotransporting polypeptide is a functional receptor for human hepatitis B and D virus. eLife. 1, 00049 (2012).
  5. Tang, H., McLachlan, A. Transcriptional regulation of hepatitis B virus by nuclear hormone receptors is a critical determinant of viral tropism. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98, 1841-1846 (2001).
  6. Sells, M. A., Chen, M. L., Acs, G. Production of hepatitis B virus particles in Hep G2 cells transfected with cloned hepatitis B virus DNA. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 84, 1005-1009 (1987).
  7. Sells, M. A., Zelent, A. Z., Shvartsman, M., Acs, G. Replicative intermediates of hepatitis B virus in HepG2 cells that produce infectious virions. Journal of Virology. 62, 2836-2844 (1988).
  8. Watashi, K., et al. Cyclosporin A and its analogs inhibit hepatitis B virus entry into cultured hepatocytes through targeting a membrane transporter, sodium taurocholate cotransporting polypeptide (NTCP). Hepatology. 59, 1726-1737 (2014).
  9. Yang, X., et al. Defined host factors support HBV infection in non-hepatic 293T cells. Journal of Cell and Molecular Medicine. 24, 2507-2518 (2020).
  10. Xia, Y., et al. Human stem cell-derived hepatocytes as a model for hepatitis B virus infection, spreading and virus-host interactions. Journal of Hepatology. 66, 494-503 (2017).
  11. Ortega-Prieto, A. M., Cherry, C., Gunn, H., Dorner, M. In Vivo Model Systems for Hepatitis B Virus Research. ACS Infectious Diseases. 5, 688-702 (2019).
  12. Liang, T. J. Hepatitis B: the virus and disease. Hepatology. 49, 13-21 (2009).
  13. Nie, Y. Z., et al. Recapitulation of hepatitis B virus-host interactions in liver organoids from human induced pluripotent stem cells. EBioMedicine. 35, 114-123 (2018).
  14. Nishinakamura, R. Human kidney organoids: progress and remaining challenges. Nature Reviews Nephrology. 15, 613-624 (2019).
check_url/61414?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Sun, X., Yang, X., Zeng, C., Attia Koutb Megahed, F., Zhou, Q., Liu, T., Iqbal, W., Sun, P., Zhou, X. Modeling Hepatitis B Virus Infection in Non-Hepatic 293T-NE-3NRs Cells. J. Vis. Exp. (160), e61414, doi:10.3791/61414 (2020).

View Video