Summary

Análisis y especificación de distribuciones de tamaño de gránulo de almidón

Published: March 04, 2021
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Summary

Aquí se presenta un procedimiento para determinaciones reproducibles y estadísticamente válidas de distribuciones de tamaño de gránulo de almidón y para especificar las distribuciones de tamaño lognormal de gránulo determinada mediante un formulario multiplicativo de dos parámetros. Es aplicable a todos los análisis de tamaño de gránulos de muestras de almidón a escala de gram para la investigación de la ciencia vegetal y alimentaria.

Abstract

El almidón de todas las fuentes vegetales se compone de gránulos en una gama de tamaños y formas que tienen diferentes frecuencias de ocurrencia, es decir, exhibiendo un tamaño y una distribución de laforma. Los datos de tamaño de gránulo de almidón determinados utilizando varios tipos de técnicas de dimensionamiento de partículas a menudo son problemáticos debido a la mala reproducibilidad o la falta de significación estadística resultante de algunos errores sistemáticos insuperables, incluyendo sensibilidad a las formas de gránulos y límites de tamaños de muestras de gránulos. Delineamos un procedimiento para determinaciones reproducibles y estadísticamente válidas de distribuciones de tamaño de gránulo de almidón utilizando la técnica de zona de detección eléctrica, y para especificar las distribuciones de tamaño lognormal de gránulos determinadas utilizando una forma multiplicativa de dos parámetros adoptada con mayor precisión y comparabilidad. Es aplicable a todos los análisis de tamaño de gránulos de muestras de almidón a escala de gram, y, por lo tanto, podría facilitar estudios sobre cómo los tamaños de gránulos de almidón son moldeados por el aparato y mecanismos de biosíntesis de almidón; y cómo afectan a las propiedades y funcionalidades de los almidones para usos alimentarios e industriales. Los resultados representativos se presentan a partir de análisis de réplicas de distribuciones de tamaño de gránulo de muestras de almidón de camote utilizando el procedimiento descrito. Además, discutimos varios aspectos técnicos clave del procedimiento, especialmente, la especificación multiplicativa de las distribuciones de tamaño lognormal de gránulos y algunos medios técnicos para superar el bloqueo frecuente de apertura por agregados de gránulos.

Introduction

Los gránulos de almidón son la estructura física en la que dos polímeros homoglucanos de reserva principal en la fotosíntesis vegetal y los tejidos de almacenamiento, la amilosa lineal o escasamente ramificada y la amiloidpectina altamente ramificada, están embalados ordenadamente junto con algunos componentes menores, incluyendo lípidos y proteínas. Los gránulos de almidón de varias especies vegetales exhiben muchas formas tridimensionales (3D) (revisadas en los puntos1,2),incluyendo esferas, elipsoides, poliedro, plaquetas, cubos, cuboides y túbulos irregulares. Incluso aquellos del mismo tejido o diferentes tejidos de la misma especie vegetal podrían tener un conjunto de formas con diferentes frecuencias de ocurrencia. En otras palabras, los gránulos de almidón de una especie vegetal pueden tener una distribución característica de la forma estadística, en lugar de una forma específica. Las formas de gránulos no uniformes y no esféricos hacen que sea difícil medir y definir correctamente los tamaños de gránulos de almidón. Además, los gránulos de almidón de los mismos tejidos de una especie vegetal son de una gama de tamaños con diferentes proporciones, es decir, exhibiendo una distribución de tamaño característica. Esta distribución del tamaño complica aún más el análisis y la descripción de los tamaños de gránulos de almidón.

Los tamaños de gránulos de almidón se han analizado utilizando varias categorías de técnicas de dimensionamiento de partículas (revisadas en la referencia3),incluyendo microscopía, sedimentación/fraccionamiento de flujo de campo estetérico (Sd/StFFF), difracción láser y zona de detección eléctrica (ESZ). Sin embargo, estas técnicas no son igualmente adecuadas para la determinación de tamaños de gránulos de almidón en presencia de una forma de gránulo y una distribución de tamaño. La microscopía, incluyendo microscopía electrónica ligera, confocal y de barrido, es excelente para los estudios de morfología4,5,6,7,estructura8,9 y desarrollo10,11 de gránulos de almidón, pero difícilmente adecuado para definir sus distribuciones de tamaño debido a algunas deficiencias inherentes. Mediciones directas de imágenes microscópicas de gránulos o análisis de imágenes asistidas por software de datos de microscopía óptica (IAOM), que se han utilizado para la determinación de tamaños de gránulos de almidones de varias especies, incluyendo maíz12,trigo13,14,papa15 y cebada16,puede medir sólo 1D (generalmente longitud máxima) o 2D (superficie) tamaños de números muy limitados (decenas a unos pocos miles) de imágenes de gránulos de almidón. Los pequeños tamaños de muestreo de gránulos que están inherentemente limitados por las técnicas rara vez podrían ser estadísticamente representativos, teniendo en cuenta los enormes números de gránulos por unidad de peso de almidón (~ 120 x 106 por gramo, asumiendo todas las esferas de 10 μm a 1,5 g/cm³ de densidad), y, por lo tanto, podría conducir a la mala reproducibilidad de los resultados. La técnica Sd/StFFF puede tener alta velocidad y resolución, y fracciones de tamaño estrecho de gránulos de almidón17,pero rara vez se ha utilizado probablemente porque su precisión podría verse gravemente afectada por daños, diferentes formas y densidad de gránulos de almidón. La técnica de difracción láser es la más utilizada, y se ha aplicado para análisis del tamaño del gránulo de almidón para todas las especies de cultivos principales3,14,16. Aunque la técnica tiene muchas ventajas, en realidad no es adecuada para determinaciones de tamaños de gránulos de almidón en presencia de una distribución de forma de gránulo. La mayoría de los instrumentos de difracción láser concurrentes se basan en la teoría de dispersión de luz Mie18 para partículas esféricas uniformes y la teoría mie modificada18 para algunas otras formas de uniformidad. La técnica es, por lo tanto, inherentemente muy sensible a las formas de partículas, y no es del todo adecuada incluso para ciertas formas de uniformidad19,y mucho menos para los gránulos de almidón que tienen un conjunto de formas de diferentes proporciones. La técnica ESZ mide la perturbación del campo eléctrico proporcional al volumen de la partícula que pasa a través de una abertura. Proporciona tamaños de volumen de gránulos, así como la información de distribución de número y volumen, etc., a altas resoluciones. Dado que la técnica ESZ es independiente de cualquier propiedad óptica de partículas como el color, la forma, la composición o el índice refractario, y los resultados son muy reproducibles, es particularmente adecuado para determinar las distribuciones de tamaño de los gránulos de almidón que tienen un conjunto de formas.

Los tamaños de gránulo de almidón también se han definido mediante el uso de muchos parámetros. A menudo fueron descritos simplistamente por diámetros medios, que en algunos casos eran los medios aritméticos de las longitudes máximas microscópicamente medidas de imágenes 2D12,20, o promedios de diámetros de esfera equivalentes3. En otros casos, las distribuciones de tamaño de gránulo se especificaron utilizando rangos de tamaño21,22, el volumen medio de distribución o diámetro medio (equivalente a esfera, ponderado por número, volumen o superficie) suponiendo una distribución normal14,23,24,25,26. Estos descriptores de tamaños de gránulos de almidón de varios análisis son de una naturaleza muy diferente, y no estrictamente comparables. Podría ser muy engañoso si estos “tamaños” de gránulos de almidón de diferentes especies o incluso los mismos tejidos de la misma especie fueran comparados directamente. Además, el parámetro de dispersión (o forma) de las distribuciones normales asumidas, es decir, la desviación estándar σ (o desviación estándar gráfica σg)que mide el ancho de la distribución (es decir, la dispersión de los tamaños), se ha ignorado en la mayoría de los estudios.

Para resolver los problemas críticos antes mencionados que enfrentan los análisis de tamaño de gránulos de almidón, delineamos un procedimiento para determinar reproducibles y estadísticamente válidos las distribuciones de tamaño de gránulo de muestras de almidón utilizando la técnica ESZ, y para especificar correctamente las distribuciones de tamaño lognormal de gránulos determinadas utilizando una forma multiplicativa de dos parámetros adoptada27 con mayor precisión y comparabilidad. Para la validación y demostración, realizamos análisis de tamaño de gránulo de réplica de muestras de almidón de camote utilizando el procedimiento, y especificamos las distribuciones de volumen diferencial lognormal de volumen-volumen equivalente-esfera de diámetro utilizando sus medios geométricos gráficos Equation 1 y desviaciones estándar multiplicativas s* en una forma Equation 1 x/ (multiplicar y dividir).

Protocol

1. Preparación de muestras de almidón Preparar dos (o tres) muestras de almidón de réplica a escala de gramo de tejidos acumulados por almidón de diversas especies vegetales siguiendo los procedimientos establecidos (por ejemplo, patatas15,camotes28,granos de trigo13,29y granos de maíz30,etc.). Lave bien las muestras de almidón con acetona o tolueno 3-4x para minimi…

Representative Results

Para validar el procedimiento y demostrar la reproducibilidad de la distribución determinada del tamaño del gránulo, realizamos análisis de tamaño de réplica de muestras de almidón de camote. Preparamos muestras de almidón de réplica (S1 y S2) de camotes cultivados en campo de una línea de cría SC1149-19 a una edad de desarrollo similar utilizando un procedimiento descrito previamente28. De cada extracto de almidón, dos aliquots de 0,5 g (a y b) fueron muestreados, suspendidos en 5 ml …

Discussion

El procedimiento descrito ha resuelto algunos problemas críticos en varios métodos existentes para los análisis del tamaño de gránulos de almidón, incluyendo el tamaño inadecuado 1D o 2D de gránulos 3D, la distorsión de las mediciones de tamaño debido a formas de gránulos no uniformes, mala reproducibilidad y dudosa validez estadística debido a tamaños limitados de muestras de gránulos, especificación inexacta o incorrecta (especialmente el uso del tamaño promedio) de tamaños de gránulos en presencia de…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo cuenta con el apoyo parcial del Centro de Investigación Cooperativa de Agricultura y el Centro Integrado de Investigación en Seguridad Alimentaria de la Facultad de Agricultura y Ciencias Humanas de la Universidad Prairie View A&M. Agradecemos a Hua Tian por su apoyo técnico.

Materials

Analytical beaker Beckman Coulter Life Sciences A35595 Smart-Technology (ST) beaker
Aperture tube, 100 µm Beckman Coulter Life Sciences A36394 For the MS4E, , 1000 µm
Disposable transfer pipettor, Fisher Scientific (Fishersci.com) 13-711-9AM Other disposable transfer pipettors with similar orifice can also be used.
Fisherbrand Conical Polypropylene Centrifuge Tubes, 50 ml Fisher Scientific (Fishersci.com) 05-539-13 Any other similar types of tubes can be used.
Glass beakers, 150 to 250 ml Fisher Scientific (Fishersci.com) 02-540K These beakers are used to contain methanol for washing the aperture tube and stirer between runs.
LiCl Fisher Chemical L121-100
Methanol Fisher Chemical A412-500 Buy in bulk as the analysis uses a large quantity of methanol.
Mettler Toledo ML-T Precision Balances Mettler Toledo 30243412 Any other precision balance with a readablity 0.01 g to 1 mg will work.
Multisizer 4e Coulter Counter Beckman Coulter Life Sciences B23005 The old model, Multisizer 3 can also be used with slight adjustment of parameters. The 4e model comes with a 100 μm aperture tube. Other aperture tubes of different diameter can be purchased separately from the company.
Ultrasonic processor UP50H Hielscher Ultrasound Technology UP50H Other laborator sonicator having a low-power (<50 Watt) output can be also used. Both MS1 and MS2 sonotrodes for the particular sonicator can be used to disperse starch granules in 5 ml methanol. Always use the lowest setting first, 20% amplitude and 0.1 or 0.2 cycle, and raise the setting if aggregates persist in suspension.

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Cite This Article
Gao, M., Moussavi, M., Myers, D. Analysis and Specification of Starch Granule Size Distributions. J. Vis. Exp. (169), e61586, doi:10.3791/61586 (2021).

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