Summary

GM-fri generering av blodavledede nevronceller

Published: February 13, 2021
doi:

Summary

Vi presenterer en genetisk modifisert-fri (GM-fri) metode for å skaffe celler med en nevronal fenotype fra omprogrammerte perifere blodlegemer. Aktivering av en signalvei knyttet til nytt humant GPI-tilknyttet protein avslører en effektiv GM-fri metode for å skaffe menneskelige pluripotente stamceller.

Abstract

Mange menneskelige nevrologiske lidelser er forårsaket av degenerasjon av nevroner og glialceller i hjernen. På grunn av begrensninger i farmakologiske og andre terapeutiske strategier, er det for tiden ingen kur tilgjengelig for den skadede eller syke hjernen. Celleerstatning fremstår som en lovende terapeutisk strategi for nevrodegenerative forhold. Til denne dag har nevrale stamceller (NSC) blitt vellykket generert fra fostervev, humane embryonale celler (ES) eller induserte pluripotente stamceller (iPSC). En prosess med dedifferensiering ble initiert ved aktivering av det nye menneskelige GPI-tilknyttede glykoproteinet, noe som fører til generering av pluripotente stamceller. Disse blodavledede pluripotente stamcellene (BD-PSCer) skiller in vitro inn i celler med en nevral fenotype som vist ved brightfield og immunfluorescence mikroskopi. Ultrastrukturell analyse av disse cellene ved hjelp av elektronmikroskopi bekrefter deres primitive struktur samt nevronallignende morfologi og subcellulære egenskaper.

Introduction

Utvikling av grunnleggende og prekliniske stamcelleforskningsmetoder oppmuntrer til klinisk anvendelse av stamcellebaserte terapier for nevrologiske sykdommer. Slik potensiell terapi avhenger kritisk av metoden for generering av menneskelige nevrale celler som fører til funksjonell utvinning1.

Nevrale stamceller (NSC) fornyer seg selv og differensierer seg til nye nevroner gjennom livet i en prosess som kalles voksen neurogenese. Bare svært begrensede hjerneområder har NSC-er som er kompetente til å generere nyfødte nevroner i voksen alder. Slike NSC-er kan gi opphav til modne nevroner, som er involvert i læring og hukommelse, og dermed erstatte tapte eller skadede nevroner. Dessverre er disse NSC-ene til stede i begrensede mengder, og denne begrensede nevrogenesen reduseres raskt under ungdomsutvikling2. Derfor må andre kilder til nevrale celler vurderes i et celleterapimål.

Degenerative nevrologiske sykdommer er vanskelige å kurere ved hjelp av standard farmakologiske tilnærminger. Nye terapeutiske strategier for å omfavne mange uforgjengelige nevrologiske lidelser er basert på celleerstatningsterapier av sykt og skadet vev. NSC-transplantasjon kan erstatte skadede celler og gi gunstige effekter. Andre kilder til nevral celleerstatning inkluderer humane embryonale stamceller (ESC), som er avledet fra den indre cellemassen til pattedyr blastocysts3, samt iPSCs4, som har omfattende selvfornyelseskapasitet som ESC og er i stand til å skille seg ut i ulike celleavstamninger. NSC-er kan også genereres ved direkte omprogrammering fra menneskelige fibroblaster som unngår pluripotent tilstand5.

Celleerstatningsterapi er fortsatt et utfordrende problem. Selv om ESC, foster eller iPS kan være en kilde for generering av nevronceller for behandling av mange uhelbredelige nevrologiske sykdommer, er autolog voksen SCs celleerstatning av skadet vev et bedre alternativ som omgår immunologiske, etiske og sikkerhetsmessige bekymringer.

Aktivering av humant GPI-koblet protein ved antistoff-krysskobling via fosforylering av PLCγ/PI3K/Akt/mTor/PTEN initierer en dedifferensiasjon av blodforfederceller og generering av blodavledede pluripotente stamceller (BD-PSCer)6. Disse cellene skiller in vitro mot nevronceller som bekreftet ved hjelp av brightfield, immunfluorescens og transmisjonselektronmikroskopi (TEM) analyse.

I dette arbeidet beskriver vi den GM-frie generasjonen av BD-PSCer og deres vellykkede re-differensiering i celler med nevronal fenotype.

Protocol

Etiske godkjenninger ble oppnådd ved gjennomføring av forsøkene. 1. Isolering av humane perifere mononukleære celler i blodet (PBMNCs) Forsikre deg om at alle givere signerte informert samtykke før blodet trakk seg tilbake i samsvar med institusjonelle retningslinjer. Ta 30 ml blod fra friske donorer av opplært medisinsk personell i henhold til standardprotokollen. Isoler PBMNCer ved hjelp av tetthetsgraderingsmedier. Bruk 10 ml medier med 25 ml 1:1 blod for…

Representative Results

Resultatene gir bevis på at denne nye GM-frie metoden er i stand til å reversere blodforfederceller til sin mest primitive tilstand uten å handle direkte på det menneskelige genom. Vi har tidligere vist at GPI-koblet proteinspesifikk antistoff krysskobling initierer via PLCγ / IP3K / Akt / mTOR / PTEN-oppregulering av svært konserverte utviklingsrelevante gener som WNT, NOTCH og C-Kit, og dermed starter en prosess med dedifferensiering som fører til det første trinnet til gene…

Discussion

Den ikke-GM-metoden for omprogrammering av menneskelige celler beskrevet i dette arbeidet er basert på membran-til-kjerneaktivering av signalmaskiner bak GPI-tilknyttede humane membranglykoprotein som initierer prosessen med dedifferensiasjon som fører til ex vivo-generasjonen og utvidelse av selvfornyende PSCer hentet fra ikke-manipulert menneskelig perifert blod. Disse cellene når de dyrkes i passende medier, er i stand til å differensiere seg til celler som tilhører forskjellige bakterielag<sup class="xr…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dedikert til minnet om Dr. Rainer Saffrich.

Forfatterne er spesielt takknemlige for José Manuel García-Verdugo og Vicente Herranz-Pérez for å utføre EM-eksperimenter og analyse ved Laboratoriet for komparativ nevrobiologi, Cavanilles Institute of Biodiversity and Evolutionary Biology, University of Valencia, CIBERNED, Valencia, Spania, som ble støttet av forskningsmidler fra Prometeo Grant for Excellence Research Groups PROMETEO/2019/075. Resten av dette arbeidet ble støttet av ACA CELL Biotech GmbH Heidelberg, Tyskland.
 

Materials

Albumin Fraction V Roth T8444.4
Anti-GFAP Cy3 conjugate Merck Millipore MAB3402C3
Anti-MAP2 Alexa Fluor 555 Merck Millipore MAB3418A5
Anti-Nestin Alexa Fluor 488 Merck Millipore MAB5326A4
Anti-Tuj1 Alexa Fluor 488 BD Pharmingen 560381
AO/PI Cell Viability kit Biozym 872045 Biozym discontinued. The product produced by Logos Biosystems.
Ascorbic acid 2-phosphate sequimagnes Sigma Aldrich A8960-5G
B27 Serum free 50x Fisher Scientific (Gibco) 11530536
Basic FGF solution Fisher Scientific (Gibco) 10647225
Biocoll Merck Millipore L6115-BC density gradient media
BSA Frac V 7.5% Gibco 15260037
CD45 MicroBeads Miltenyi 130-045-801 nano-sized magnetic beads
Cell counting slides Luna Biozym 872010 Biozym discontinued. The product produced by Logos Biosystems.
Chamber Slides Lab-Tek Fisher Scientific 10234121
D-MEM/F12 Merck Millipore FG4815-BC
Durcupan Sigma Aldrich 44610 epoxy resin
FBS Merck Millipore S0115/1030B Discontinued. Available under: TMS-013-B
GDNF recombinant human Fisher Scientific (Gibco) 10679963
GlutaMax 100x Gibco 35050038 L-glutamine
Glutaraldehyde grade Sigma-Aldrich G5882-50ML
Heparin sodium cell Sigma-Aldrich H3149-50KU
Human BDNF Fisher Scientific (Gibco) 11588836
Iscove (IMDM) Biochrom FG0465
Laminin mouse Fisher Scientific (Gibco) 10267092
Lead citrate Sigma-Aldrich 15326-25G
Luna FL Automated Cell Counter Biozym 872040 Biozym discontinued. The product produced by Logos Biosystems.
MACS Buffer Miltenyi 130-091-221
MEM NEAA 100x Gibco 11140035
MiniMACS Trennsäulen Miltenyi 130-042-201
Morada digital camera Olympus
Multiplatte Nunclon 4 wells Fisher Scientific 10507591
N2 Supplement 100x Fisher Scientific (Gibco) 11520536
Neurobasal Medium Gibco 10888022
PBS sterile Roth 9143.2
Poly-L-ornithine Sigma-Aldrich P4957-50ML
Super Glue-3 Loctite Henkel
TEM FEI Technai G2 Spirit FEI Europe
Ultracut UC-6 Leica
Uranyl acetate C EMS 22400

References

  1. Peng, J., Zeng, X. The Role of Induced Pluripotent Stem Cells in Regenerative Medicine: Neurodegenerative Diseases. Stem Cell Research and Therapy. 2 (4), 32 (2011).
  2. Sorells, S. F., et al. Human hippocampal neurogenesis drops sharply in children to undetectable levels in adults. Nature. 555 (7696), 377-381 (2018).
  3. Thomson, J. A., et al. Embryonic Stem Cell Lines Derived from Human Blastocysts. Science. 282 (5391), 1145-1147 (1998).
  4. Takahashi, K., et al. Induction of Pluripotent Stem Cells From Adult Human Fibroblast by Defined Factors. Cell. 131 (5), 861-872 (2007).
  5. Liu, G. -. H., Yi, F., Suzuki, K., Qu, J., Izpisua Belmonte, J. C. Induced neural stem cells: a new tool for studying neural development and neurological disorders. Cell Research. 22 (7), 1087-1091 (2012).
  6. Becker-Kojić, Z. A., et al. Activation by ACA Induces Pluripotency in Human Blood Progenitor Cells. Cell Technologies in Biology and Medicine. 2, 85-101 (2013).
  7. Marchenko, S., Flanagan, L. Immunocytochemistry: Human Neural Stem Cells. Journal of Visualized Experiments. , e267 (2007).
  8. Becker-Kojić, Z. A., et al. A novel glycoprotein ACA is upstream regulator of human heamtopoiesis. Cell Technologies in Biology and Medicine. 2, 69-84 (2013).
  9. Li, D., et al. Neurochemical Regulation of the Expression and Function of Glial Fibrillary Acidic Protein in Astrocytes. Glial. 68 (5), 878-897 (2020).
  10. Melková, K., et al. Structure and Functions of Microtubule Associated Proteins Tau and MAP2c: Similarities and Differences. Biomolecules. 9 (3), 105 (2019).
  11. Menezes, J. R., Luskin, M. B. Expression of neuron-specific tubulin defines a novel population in the proliferative layers of the developing telencephalon. Journal of Neuroscience. 14 (9), 5399-5416 (1994).
  12. Bernal, A., Arranz, L. Nestin-expressing progenitor cells: function, identity and therapeutic implications. Cellular and Molecular Life Sciences. 75 (12), 2177-2195 (2018).
check_url/61634?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Becker-Kojić, Z. A., Schott, A., Zipančić, I., Hernández-Rabaza, V. GM-Free Generation of Blood-Derived Neuronal Cells. J. Vis. Exp. (168), e61634, doi:10.3791/61634 (2021).

View Video