Summary

Ensaios da doença de podridão de raízes secas no grão-de-bico: uma metodologia detalhada

Published: January 17, 2021
doi:

Summary

Este estudo apresenta metodologias para estudar os mecanismos pathomorfológicos e moleculares subjacentes à interação grão-de-bico-Rhizoctonia bataticola. O método de papel manchador é útil para estudar rapidamente as respostas do genótipo do grão-de-bico, enquanto o método adoecido à base de maconha pode ser usado para impor simultaneamente a seca e a infecção por R. bataticola e a tela para genótipos tolerantes.

Abstract

A doença da podridão de raízes secas (DRR) é uma ameaça emergente de estresse biótico ao cultivo de grão-de-bico em todo o mundo. É causada por um patógeno fúngico transportado pelo solo, Rhizoctonia bataticola. Na literatura, protocolos passo a passo abrangentes e detalhados sobre ensaios sobre doenças são escassos. Este artigo fornece detalhes completos sobre as etapas envolvidas na criação de uma técnica de papel manchador para triagem rápida de genótipos para resistência ao DRR. A técnica de papel manchador é fácil e menos cara. Outro método, baseado na abordagem do vaso doente, é uma imitação de infecção natural e pode ser aplicado para estudar os componentes que interagem — planta, patógeno e ambiente — envolvidos no triângulo da doença.

Além disso, na natureza, a DRR ocorre principalmente em áreas de cultivo de grão-de-bico-de-bico-de-chuva, onde a umidade do solo recua à medida que o crescimento das culturas avança. O estresse da seca é conhecido por predispor plantas de grão-de-bico à doença drr. A compreensão patomorfológica e molecular da interação planta-patógeno sob o estresse da seca pode abrir caminho para a identificação de variedades resistentes à DRR de elite da piscina de germoplasma de grão-de-bico. Este artigo fornece uma metodologia stepwise para a preparação de um pote doente e ensaio subsequente da doença. No geral, as informações aqui apresentadas ajudarão os pesquisadores a preparar o inóculo fúngico R. bataticola, manter esse patógeno, configurar a técnica de papel manchador, preparar a cultura doente e o pote doente e avaliar a infecção por patógenos em plantas de grão-de-bico.

Introduction

A podridão de raízes secas (DRR) é uma das doenças economicamente significativas no grão-de-bico1,2. É uma doença específica da raiz causada pela Rizoctonia bataticola (teleomorfo, macrofomina phaseolina). As plantas infectadas não possuem raízes laterais e possuem raízes de torneiras frágeis e folhagens amarelas1,3. DrR sob estresse de seca tem sido relatado como uma ameaça emergente ao cultivo de grão-de-bico1,2,3. Além disso, a incidência de DRR é relatada como agravada sob o estresse da seca sob as condições de campo1,2,3. DrR é mais prevalente em áreas de chuva do que em campos irrigados4. A utilização de variedades resistentes é a forma de superar a doença e contornar o uso de fungicidas1,13. Como o germoplasma do grão-de-bico disponível em todo o mundo abriga variação genética para o traço5,a triagem e identificação de genótipos resistentes/suscetíveis são fundamentais para a reprodução molecular para melhoria da cultura.

Ensaios robustos, fáceis e econômicos para doenças são essenciais para investigar padrões de infecção por R. bataticola no grão-de-bico. O ensaio da doença primária utilizado para observar a resposta dos genótipos de grão-de-bico à infecção por R. bataticola é a técnica de papel manchador1,4. É uma técnica simples e pode ser executada usando inóculo fúngico líquido, mudas com raízes e papel estéril. No entanto, essa técnica não foi utilizada ao máximo porque não há protocolo passo a passo disponível na literatura.

Enquanto isso, a técnica de maconha doente envolve a preparação de uma cultura doentia potencial e a imposição do estresse da seca. Dado que o estresse da seca agrava a incidência da doençade DRR 3,é essencial estudar a interação planta-patógeno sob o estresse da seca6,7. A técnica de vaso doente fornece a plataforma para um estudo tão simultâneo, promovendo melhores possibilidades de triagem de germoplasma e compreensão da base mecanicista da interação. Alterações pathomorfológicas, como aumento do comprimento da raiz e redução do número de raízes laterais — inerentes à doença drr — podem ser tratadas usando a técnica de vaso doente1,3,7.

Aqui, é apresentado um protocolo detalhado para o papel manchador e técnicas de maconha doente, que podem ser utilizados para estudar a interação entre grão-de-bico e R. bataticola e germoplasma de grão-de-bico de tela. Os detalhes dos materiais utilizados no estudo são dados na Tabela de Materiais.

Protocol

1. Isolamento de R. bataticola e armazenamento Detalhes dos sintomas do genótipo do grão-de-bico e drr Use plantas de grão-de-bico (genótipo, JG 62) que geralmente apresentam sintomas típicos de DRR, como raiz primária seca e frágil, sem raízes laterais e microclerocia sob a casca e dentro do pith1,3. Coleta e lavagem Plantas de arrancada que apresentam sintomas como foliar cor de palha seca e raiz…

Representative Results

Este estudo teve como objetivo demonstrar técnicas como papel manchador e técnicas de vasos doentes para facilitar a compreensão patomorfológica e molecular da interação planta-patógeno sob estresse de seca. Para isso, as plantas que apresentaram sintomas drr1,3,4 foram coletadas de um campo de grão-de-bico, e o fungo foi isolado utilizando o método de ponta hiphal8. A cultura fúngica R. bat…

Discussion

A técnica de papel manchador fornece uma abordagem simples para tela genótipos de grão-de-bico em condições laboratoriais. A inoculação de mergulho permite a investigação da interação em uma base temporal com fácil controle sobre a carga inóculo(Figura Suplementar 1) e facilita a triagem in vitro. Além disso, até mesmo mudas jovens podem ser usadas. A cultura fúngica de cinco dias de idade(Figura 1B) pode produzir inóculo suficiente para infectar as plantas….

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Os projetos do laboratório M.S.K são apoiados pelo Instituto Nacional de Pesquisa de Genoma vegetal. VI reconhece DBT- JRF (DBT/2015/NIPGR/430). Agradecemos aos estudantes estagiários, Srta. Rishika, Sr. Jayachendrayan, e Miss Durgadevi por ajuda técnica durante a filmagem e o Sr. Sandeep Dixit, Miss. Anjali e Dr. Avanish Rai por avaliar criticamente os dados brutos e os arquivos do manuscrito. Agradecemos ao Sr. Rahim H Tarafdar e ao Sr. Sunder Solanki pela ajuda no laboratório. Reconhecemos o DBT-eLibrary Consortium (DeLCON) e a BIBLIOTECA NIPGR por fornecer acesso a recursos eletrônicos e instalações de crescimento de plantas NIPGR para suporte/espaço de crescimento de plantas.

Materials

Fungus- Rhizoctonia bataticola Pathogen inoculum Indian Type Culture Collection No. 8365 GenBank: MH509971.1, ITCC 8635 (https://www.iari.res.in/index.php?option=com_content&view=article&
id=1251&Itemid=1370)
Soilrite mix Soil medium in the lab Keltech Energies Limited, Bangalore, India http://www.keltechenergies.com/
Filter paper Blotting paper to support the plant growth Himedia http://himedialabs.com/catalogue/chemical2017/index.html#374
Pot Growing plants 10 and 30 cm size pots Routinely used nursery pots, for example, https://dir.indiamart.com/impcat/nursery-pots.html
Potato dextrose agar/broth Culture and maintain the fungus Cat# 213400, DifcoTM, MD, USA https://www.fishersci.com/shop/products/bd-difco-dehydrated-culture-media-potato-dextrose-agar-3/p-4901946
Incubator Culture the fungus LOM-150-2, S/N AI13082601-38, MRC, incubator, and shaker http://www.mrclab.com/productDetails.aspx?pid=91131
Growth chamber Growing plants in controlled condition Model No. A1000, Conviron, Canada https://www.conviron.com/products/gen1000-reach-in-plant-growth-chamber
Laminar airflow Carrying out aseptic exercises Telstar, Bio II advance, Class II cabinet, EN-12469-2000 https://www.telstar.com/lab-hospitals-equipment/biological-safety-cabinets/bio-ii-advance-plus/, http://www.atlantisindia.co.in/laminar-air-flow.html
Mesh Filtering the fungal mycelia Nylon mosquito net Mesh with 0.6-1 mm diameter pore size
Autoclave Autoclaving media and chickpea seeds Autoclave http://www.scientificsystems.in/autoclave
Microscopes Visualizing the infection ang fungal mycelia SMZ25 / SMZ18, Research Stereomicroscopes, Leica EZ4 educational stereomicroscope https://www.microscope.healthcare.nikon.com/products/stereomicroscopes-macroscopes/smz25-smz18

https://www.leica-microsystems.com/products/stereo-microscopes-macroscopes/p/leica-ez4/

https://www.microscopyu.com/museum/eclipse-80i
Weighing balance Weighing fungus and chemicals Sartorius Electronic Weighing Balance, BSA 4202S-CW https://www.sartorius.com/en/products/weighing/laboratory-balances
WGA-FITC Fungus staining Sigma https://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/l4895?lang=en&region=IN
Aniline blue Fungus staining Himedia http://www.himedialabs.com/intl/en/products/Chemicals/Dyes-Indicators-and-Stains/Aniline-blue-Water-soluble-Practical-grade-GRM901

References

  1. Sharma, M., Ghosh, R., Pande, S. Dry root rot (Rhizoctonia bataticola (Taub.) Butler): an emerging disease of chickpea – where do we stand. Archives of Phytopathology and Plant Protection. 48 (13-16), 797-812 (2015).
  2. Sinha, R., Irulappan, V., Mohan-Raju, B., Suganthi, A., Senthil-Kumar, M. Impact of drought stress on simultaneously occurring pathogen infection in field-grown chickpea. Scientific Reports. 9 (1), (2019).
  3. Nene, Y., Haware, M., Reddy, M. Chickpea diseases: resistance screening techniques, information bulletins No. 10. Patancheru. Information Bulletin No. 10. Patancheru, A.P., India: International CroDS Research Institute for the Semi-Arid Tropics. , 1-10 (1981).
  4. Pande, S., Krishna Kishore, G., Upadhyaya, H. D., Narayana Rao, J. Identification of sources of multiple disease resistance in mini-core collection of chickpea. Plant Disease. , (2006).
  5. Pandey, P., Irulappan, V., Bagavathiannan, M. V., Senthil-Kumar, M. Impact of combined abiotic and biotic stresses on plant growth and avenues for crop improvement by exploiting physio-morphological traits. Frontiers in Plant Science. 8, (2017).
  6. Irulappan, V., Senthil-Kumar, M. Morpho-physiological traits and molecular intricacies associated with tolerance to combined drought and pathogen stress in plants. Biotechnologies of Crop Improvement, Volume 3: Genomic Approaches. , (2018).
  7. Jensen, A. B., et al. Standard methods for fungal brood disease research. Journal of Apicultural Research. 52 (1), 1-39 (2013).
  8. Agrios, G. . Plant Pathology: Fifth Edition. , 9780080473 (2004).
  9. Coley-Smith, J. R., Cooke, R. C. Survival and germination of fungal sclerotia. Annual Review of Phytopathology. , (1971).
  10. Nagamma, G., Saifulla, M., Sab, J., Pavitra, S. . Screening of chickpea genotypes against dry root rot caused by Macrophomina phaseolina (tassi) goid. 10 (4), 1795-1800 (2015).
  11. Infantino, A., et al. Screening techniques and sources of resistance to root diseases in cool season food legumes. Euphytica. 147 (1-2), 201-221 (2006).
  12. Khaliq, A., et al. Integrated control of dry root rot of chickpea caused by Rhizoctonia bataticola under the natural field condition. Biotechnology Reports. 25, 00423 (2020).
check_url/61702?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Irulappan, V., Senthil-Kumar, M. Dry Root Rot Disease Assays in Chickpea: a Detailed Methodology. J. Vis. Exp. (167), e61702, doi:10.3791/61702 (2021).

View Video