Summary

붉은털원숭이 지방유래 줄기세포의 분리, 증식 및 분화

Published: May 26, 2021
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Summary

이 기사에서는 효소 조직 소화 프로토콜을 사용하여 붉은털 원숭이 유래 지방 유래 줄기 세포(ADSC)의 분리에 대해 설명합니다. 다음으로, 세포 분리, 계수 및 도금을 포함하는 ADSC 증식에 대해 설명합니다. 마지막으로, ADSC 분화는 특정 지방 생성 유도제를 사용하여 설명됩니다. 또한 차별화를 확인하기 위한 염색 기술을 설명합니다.

Abstract

지방 조직은 자가 재생이 가능한 풍부하고 접근 가능한 다능성 줄기 세포 공급원을 제공합니다. 이러한 지방 유래 줄기 세포 (ADSC)는 생체 내 지방 세포와 기능적으로 유사한 일관된 생체 외 세포 시스템을 제공합니다. 생물 의학 연구에서 ADSC를 사용하면 지방 조직 대사 조절 및 기능에 대한 세포 조사가 가능합니다. ADSC 분화는 적절한 지방세포 확장을 위해 필요하며, 차선의 분화는 지방 기능 장애의 주요 메커니즘입니다. ADSC 분화의 변화를 이해하는 것은 대사 기능 장애 및 질병의 발병을 이해하는 데 중요합니다. 이 원고에 설명 된 프로토콜을 따를 때 포도당 섭취, 지방 분해, 지방 생성 및 분비를 측정하는 분석을 포함하되 이에 국한되지 않는 ADSC 대사 기능을 평가하기위한 여러 시험관 내 기능 테스트에 사용할 수있는 성숙한 지방 세포를 산출 할 것입니다. 붉은털 원숭이( Macaca mulatta) 는 생리학적, 해부학적, 진화적으로 인간과 유사하므로 그들의 조직과 세포는 생물 의학 연구 및 치료법 개발에 광범위하게 사용되었습니다. 여기에서는 4-9 세의 붉은 털 원숭이에서 얻은 신선한 피하 및 안타 지방 조직을 사용하여 ADSC 분리를 설명합니다. 지방 조직 샘플은 콜라게나제에서 효소적으로 분해된 후 여과 및 원심분리하여 기질 혈관 분획에서 ADSC를 분리합니다. 분리된 ADSC는 기질 배지에서 증식한 후 기질 배지에서 0.5μg/mL 덱사메타손, 0.5mM 이소부틸 메틸크산틴 및 50μM 인도메타신의 칵테일을 사용하여 약 14-21일 동안 분화합니다. 성숙한 지방 세포는 분화 약 14 일에 관찰됩니다. 이 원고에서는 ADSC 분리, 증식 및 시험관 내 분화를 위한 프로토콜을 설명합니다. 우리는 붉은털 원숭이 지방 조직의 ADSC에 초점을 맞추었지만 이러한 프로토콜은 최소한의 조정으로 다른 동물로부터 얻은 지방 조직에 활용할 수 있습니다.

Introduction

지방 조직은 세포, 주로 성숙한 지방 세포 및 섬유 아세포, 면역 세포 및 지방 유래 줄기 세포 (ADSC)를 포함한 기질 혈관 분획의 이질적인 혼합물로 구성됩니다 1,2,3. 1 차 ADSC는 백색 지방 조직에서 직접 분리되고 지방 세포, 연골 또는 뼈 세포로 분화하도록 자극 될 수 있습니다4. ADSC는 시험관 내 다능성 유지 및자가 재생과 같은 고전적인 줄기 세포 특성을 나타냅니다. 그리고 문화에서 플라스틱을 고수합니다 5,6. ADSC는 다분화능과 비침습적 기술을 사용하여 대량으로 쉽게 수확할 수 있는 능력으로 인해 재생 의학에 사용되는 데 중요한 관심사입니다7. ADSC의 지방생성 분화는 지질 축적, 인슐린 자극 포도당 흡수, 지방 분해 및 아디포카인 분비8를 포함하는 성숙한 지방세포를 기능적으로 모방하는 세포를생성합니다. 성숙한 지방 세포와의 유사성은 지방 세포의 세포 특성 및 대사 기능의 생리 학적 조사를 위해 ADSC의 광범위한 사용으로 이어졌습니다. 대사 기능 장애 및 장애의 발달이 세포 또는 조직 수준 9,10,11,12에서 시작된다는 생각을 뒷받침하는 증거가 증가하고 있습니다. 최적의 ADSC 분화는 충분한 지방 조직 확장, 적절한 지방 세포 기능 및 효과적인 대사 조절을 위해 필요합니다13.

이 원고에 설명 된 프로토콜은 표준 실험실 장비와 기본 시약을 사용하는 간단한 기술입니다. 원고는 먼저 기계적 및 효소 적 소화를 사용하여 신선한 지방 조직에서 1 차 ADSC를 분리하기위한 프로토콜을 설명합니다. 다음으로, 기질 매질에서 ADSC의 증식 및 계대에 대한 프로토콜이 설명된다. 마지막으로, ADSC의 지방 생성 분화를위한 프로토콜이 설명된다. 분화 후, 이러한 세포는 지방 세포 대사 및 기능 장애 메커니즘을 더 잘 이해하기위한 연구에 사용될 수 있습니다. 오일 레드 O 및 붕소-디피로메텐(BODIPY) 염색을 사용한 지방생성 분화 및 지질 액적 검출의 확인을 위한 프로토콜이 또한 기재되어 있다. 이 프로토콜의 세부 사항은 붉은 털 원숭이의 신선한 omental 지방 조직에서 분리 된 1 차 ADSC에 중점을 두었습니다. 우리와 다른 사람들은 이 프로토콜을 사용하여 붉은털 원숭이 피하 및 안달 지방 조직 저장소14,15에서 ADSC를 성공적으로 분리했습니다. 사용 된 동일한 양의 조직에 대해, 우리는 피하 지방 조직이 omental 지방 조직에 비해 더 조밀하고 단단하며 소화에서 더 적은 세포를 생성한다는 것을 관찰했습니다. 이 프로토콜은 또한 인간 지방 샘플(16)로부터 ADSC를 단리하는데 사용되었다.

Protocol

획득 된 모든 조직 및 절차는 루이지애나 주립 대학 건강 과학 센터의 기관 동물 관리 및 사용위원회의 승인을 받았으며 국립 보건원 (NIH 간행물 번호 85-12, 1996 년 개정)의 지침에 따라 수행되었습니다. 1. 완충액 및 용액의 제조 5x PBS에 5% 페니실린/스트렙토마이신(pen/strep) 및 0.25μg/mL의 진균 억제제를 추가하여 멸균 5-인산염 완충 식염수 세척 완충액(1-PBS) 용액을 준비?…

Representative Results

붉은털 원숭이 지방 조직 샘플에서 분리된 ADSC를 배양 플레이트에 시딩하고 그림 1에 나타내었다. 플레이팅 당일에, 세포는 비부착성이고 도 1A에 도시된 바와 같이 배양 접시에 부유한다. 72시간 이내에 ADSC는 80% 합류하여 지방세포 분화 준비가 됩니다(그림 1B). ADSC는 화학적 유도 후 강한 지방 생성 특성을 나타냅니다. 분화 14일 ?…

Discussion

ADSC 분리, 증식 및 분화 프로토콜은 간단하고 재현 가능하지만 적절한 분리, 건강한 확장 및 효율적인 차별화를 보장하기 위해 신중한 기술이 필요합니다. 멸균 작업 환경은 모든 세포 배양 실험에 매우 중요합니다. 박테리아 또는 곰팡이는 오염된 도구, 배지 또는 작업 환경을 통해 세포 배양에 도입될 수 있습니다. 곰팡이 오염은 배양 물에서 포자 성장으로 표시되는 반면 박테리아 오염은 배지?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

저자는 그의 기술 지원에 대해 Curtis Vande Stouwe에게 감사하고 싶습니다. 프로토콜 개발의 기초가되는 연구는 국립 알코올 남용 및 알코올 중독 연구소 (5P60AA009803-25, 5T32AA007577-20 및 1F31AA028459-01)의 보조금으로 지원되었습니다.

Materials

0.4 % trypan blue Thermo-Fisher 15250061
1.5-ml microcentrifuge tube Dot Scientific 707-FTG
100 % isopropanol Sigma-Aldrich PX1838-P
100-mm cell culture dish Corning 430167
3-Isobutyl-1-methylxanthine Sigma-Aldrich I7018
50-mL plastic conical tube Fisher Scientific 50-465-232
70-µm cell strainer Corning CLS431751
a-MEM Thermo-Fisher 12561056
Aluminum foil Reynolds Wrap
BODIPY Thermo-Fisher D3922
Bovine serum albumin (BSA) Sigma-Aldrich 05470
Centrifuge Eppendorf 5810 R
Collagenase, Type I Thermo-Fisher 17100017
Dexamethasone-Water Soluble Sigma-Aldrich D2915
Dimethyl sulfoxide, DMSO Sigma-Aldrich D2650
Distilled water Thermo-Fisher 15230162
Fetal Bovine Serum, USDA-approved Sigma-Aldrich F0926
Fungizone/Amphotericin B (250 ug/mL) Thermo-Fisher 15290018
Hanks' Balanced Salt Solution (HBSS) Thermo-Fisher 14175095
Hemacytometer with cover slip Sigma-Aldrich Z359629
Indomethacin Sigma-Aldrich I7378
Inverted light microscope Nikon DIAPHOT-TMD
L-glutamine (200 mM) Thermo-Fisher 25030081
Laboratory rocker, 0.5 to 1.0 Hz Reliable Scientific Model 55 Rocking
Neutral buffered formalin (10 %) Pharmco 8BUFF-FORM
Oil Red O Sigma-Aldrich O0625
Paraformeldehyde Sigma-Aldrich P6148
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Thermo-Fisher 15140122
Phosphate buffered saline (PBS), pH 7.4 Thermo-Fisher 10010023
Red blood cell (RBC) lysis buffer Qiagen 158904
Serological pipettes, 2 to 25 mL Costar Stripettes
Standard humidified cell culture incubator, 37 °C, 5 % CO2 Sanyo MCO-17AIC
Trypsin-EDTA (0.25%) Thermo-Fisher 25200056

References

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Cite This Article
Poret, J. M., Molina, P. E., Simon, L. Isolation, Proliferation and Differentiation of Rhesus Macaque Adipose-Derived Stem Cells. J. Vis. Exp. (171), e61732, doi:10.3791/61732 (2021).

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