Summary

ट्यूमर के विकास में कैंसर से जुड़े फाइब्रोब्लास्ट की भूमिका की जांच करने के लिए एक माउस मॉडल

Published: December 22, 2020
doi:

Summary

कैंसर कोशिकाओं और फाइब्रोब्लास्ट्स को सह-इंजेक्ट करने और समय के साथ ट्यूमर के विकास की निगरानी करने के लिए एक प्रोटोकॉल प्रदान किया गया है। इस प्रोटोकॉल का उपयोग ट्यूमर के विकास के नियामकों के रूप में फाइब्रोब्लास्ट की भूमिका के लिए आणविक आधार को समझने के लिए किया जा सकता है।

Abstract

कैंसर से जुड़े फाइब्रोब्लास्ट (सीएएफ) ट्यूमर को बढ़ावा देने वाले माइक्रोएन्वायरमेंट बनाकर ट्यूमर के विकास में महत्वपूर्ण भूमिका निभा सकते हैं। ट्यूमर माइक्रोएन्वायरमेंट में सीएएफ की भूमिका का अध्ययन करने के लिए मॉडल फाइब्रोब्लास्ट, विभिन्न ऊतकों से फाइब्रोब्लास्ट और फाइब्रोब्लास्ट में विशिष्ट आनुवंशिक कारकों के कार्यात्मक महत्व को समझने के लिए सहायक हो सकते हैं। माउस मॉडल विवो संदर्भ में ट्यूमर के विकास और प्रगति के योगदानकर्ताओं को समझने के लिए आवश्यक हैं। यहां, एक प्रोटोकॉल जिसमें कैंसर कोशिकाओं को फाइब्रोब्लास्ट के साथ मिलाया जाता है और ट्यूमर विकसित करने के लिए चूहों में पेश किया जाता है। समय के साथ ट्यूमर के आकार और अंतिम ट्यूमर वजन निर्धारित किए जाते हैं और समूहों के बीच तुलना की जाती है। वर्णित प्रोटोकॉल ट्यूमर के विकास और प्रगति में सीएएफ की कार्यात्मक भूमिका में अधिक अंतर्दृष्टि प्रदान कर सकता है।

Introduction

ट्यूमर माइक्रोएन्वायरमेंट के भीतर, सबसे प्रमुख सेल प्रकार में से एक कैंसर से जुड़े फाइब्रोब्लास्ट (सीएएफ) 1 है। ये कार्सिनोमा से जुड़े फाइब्रोब्लास्ट ट्यूमर-दमनकारी भूमिका निभा सकते हैं 2,3. उदाहरण के लिए, एस 100 ए-व्यक्त फाइब्रोब्लास्ट कोलेजन का स्राव करते हैं जो कार्सिनोजेन्स को समाहित कर सकते हैं और कार्सिनोमा गठनसे बचा सकते हैं। इसके अलावा, अग्नाशय के कैंसर में α-चिकनी मांसपेशी एक्टिन (एसएमए) पॉजिटिव मायोफाइब्रोब्लास्ट की कमी इम्यूनोसप्रेशन का कारण बनती है और अग्नाशयके कैंसर की प्रगति में तेजी लाती है। सीएएफ कैंसर कोशिकाओं के साथ सह-विकसित हो सकते हैं और ट्यूमर की प्रगति 5,6,7,8 को बढ़ावा दे सकते हैं। फाइब्रोब्लास्ट बाह्य मैट्रिक्स प्रोटीन को संश्लेषित और स्रावित कर सकते हैं जो ट्यूमर को बढ़ावा देने वाला वातावरण बनातेहैं। ये बाह्य मैट्रिक्स प्रोटीन ऊतक की यांत्रिक कठोरता का कारण बन सकते हैं, जो ट्यूमर की प्रगति 9,10 से जुड़ा हुआ है। जमा बाह्य मैट्रिक्स एक भौतिक बाधा के रूप में कार्य कर सकता है जो प्रतिरक्षा घुसपैठ को रोकता है11. सीएएफ द्वारा मैट्रिक्स जमाव को ट्यूमर आक्रमण के साथ भी जोड़ा गया है क्योंकि सीएएफ द्वारा उत्पन्न फाइब्रोनेक्टिन को ट्यूमर आक्रमणको बढ़ावा देने के लिए दिखाया गया है। सीएएफ एंजियोजेनेसिस को बढ़ावा देते हैं और विकास कारक-β (टीजीएफ-β), संवहनी एंडोथेलियल ग्रोथ फैक्टर (वीईजीएफ), इंटरल्यूकिन -6 (आईएल -6), और सीएक्ससी-केमोकाइन लिगैंड 12 (आईएक्ससीएल 12) 13,14,15 को स्रावित करके ट्यूमर माइक्रोएन्वायरमेंट में इम्यूनोसप्रेसिव कोशिकाओं की भर्ती करते हैं। ट्यूमर के विकास को बढ़ावा देने में उनकी केंद्रीय भूमिका के कारण, कैंसर से जुड़े फाइब्रोब्लास्टकैंसर-विरोधी चिकित्सा 6,16,17,18 के लिए एक उभरते हुए लक्ष्य हैं।

नीचे दिया गया प्रोटोकॉल परीक्षण के लिए एक विधि का वर्णन करता है कि फाइब्रोब्लास्ट ट्यूमर के विकास के एक अच्छी तरह से स्थापित और व्यापक रूप से उपयोग किए जाने वाले माउस मॉडल में ट्यूमर के विकास को कैसे प्रभावित करते हैं। ट्यूमर माइक्रोएन्वायरमेंट में फाइब्रोब्लास्ट के महत्व को समझने के लिए, कैंसर कोशिकाओं को उनके विकास की निगरानी के लिए चूहों में पेश करने के लिए मानक प्रोटोकॉल को कैंसर सेल परिचय के साथ फाइब्रोब्लास्ट को शामिल करने के लिए संशोधित किया गया था। कैंसर कोशिकाओं को चमड़े के नीचे या इंट्राडर्मल रूप से पेश किया जा सकता है। इंट्राडर्मल परिचय के परिणामस्वरूप ट्यूमर होगा जो त्वचा से ही उत्पन्न होता है। जेनोग्राफ्ट्स जिसमें कैंसर कोशिकाओं और फाइब्रोब्लास्ट्स को चूहों में सह-इंजेक्शन दिया जाता है,कैंसर के विकास को बढ़ावा देने की क्षमता में फाइब्रोब्लास्ट, फाइब्रोब्लास्ट ्स की उप-आबादी और प्रोटीन कारकों की भूमिका को विच्छेदित करने के लिए एक महत्वपूर्ण पद्धतिगत उपकरण का प्रतिनिधित्व करते हैं। चूहों में कैंसर कोशिकाओं और फाइब्रोब्लास्ट के सह-इंजेक्शन के लिए एक विस्तृत प्रोटोकॉल प्रदान किया गया है। इस विधि का उपयोग फाइब्रोब्लास्ट की उपस्थिति या अनुपस्थिति की तुलना करने के लिए किया जा सकता है, विभिन्न स्रोतों से फाइब्रोब्लास्ट की तुलना करने के लिए20, या विशिष्ट प्रोटीन19 की अभिव्यक्ति के साथ और बिना फाइब्रोब्लास्ट की तुलना करने के लिए। कैंसर कोशिकाओं और फाइब्रोब्लास्ट पेश किए जाने के बाद, ट्यूमर के आकार की निगरानी समय के साथ की जा सकती है। प्रयोगों के अंत में, ट्यूमर को विच्छेदित और तौला जा सकता है। समय के साथ ट्यूमर के विकास की निगरानी करके, विभिन्न कारकों के महत्व को विच्छेदित किया जा सकता है।

ट्यूमर के विकास में फाइब्रोब्लास्ट की भूमिका का अध्ययन करने के लिए संभावित वैकल्पिक दृष्टिकोण हैं। एक उदाहरण के रूप में, क्रे-लॉक्स्ड आधारित मॉडल हैं जो फाइब्रोब्लास्ट में अधिमान्य रूप से व्यक्त ड्राइवरों के साथ जीन के ऊतक-विशिष्ट नॉकआउट प्रदान करते हैं। इस तरह के दृष्टिकोण ट्यूमर की प्रगति के लिए फाइब्रोब्लास्ट में विशिष्ट जीन और मार्गों की भूमिका की जांच करने के अवसर भी प्रदान करते हैं। क्रे-लॉक्स-आधारित दृष्टिकोणों की तुलना में, प्रदान किया गया प्रोटोकॉल फाइब्रोब्लास्ट की भूमिका की निगरानी के लिए काफी अधिक तेजी से दृष्टिकोण का प्रतिनिधित्व करेगा क्योंकि ट्यूमर के विकास की निगरानी कुछ हफ्तों में की जाएगी। प्रदान किया गया दृष्टिकोण भी काफी कम खर्चीला है क्योंकि इसे आनुवंशिक रूप से इंजीनियर चूहों की कॉलोनियों को उत्पन्न करने और आवास की आवश्यकता नहीं है। प्रदान किए गए प्रोटोकॉल का उपयोग माउस कॉलोनियों को विकसित करने की आवश्यकता के बजाय एसएचआरएनए का उपयोग करके विभिन्न जीनों के वध के प्रभाव का तेजी से परीक्षण करने के लिए किया जा सकता है। प्रदान किया गया दृष्टिकोण भी अधिक लचीला है क्योंकि यह फाइब्रोब्लास्ट की विभिन्न संख्याओं, कैंसर कोशिकाओं और फाइब्रोब्लास्ट्स के विभिन्न अनुपातों, विभिन्न जीनों के वध और यहां तक कि विभिन्न ऊतक साइटों या प्रजातियों से फाइब्रोब्लास्ट की तुलना की अनुमति देगा। क्रे-लॉक्स दृष्टिकोण का लाभ यह होगा कि फाइब्रोब्लास्ट अधिक शारीरिक संदर्भ में चूहों के भीतर मौजूद हैं।

यहां बताया गया प्रोटोकॉल उन वैज्ञानिकों के लिए मूल्यवान होगा जो ट्यूमर के विकास पर फाइब्रोब्लास्ट के प्रभावों की निगरानी करना चाहते हैं और प्रभावी ढंग से लागत करते हैं। यह प्रोटोकॉल ट्यूमर के विकास पर ट्यूमर के विकास पर विभिन्न स्रोतों से फाइब्रोब्लास्ट या फाइब्रोब्लास्ट के विभिन्न उपसमुच्चय की जांच करने वाले वैज्ञानिकों के लिए विशेष रूप से मूल्यवान है। यदि यह महत्वपूर्ण है कि ट्यूमर दीक्षा एक शारीरिक संदर्भ में होती है, तो आनुवंशिक रूप से इंजीनियर माउस मॉडल पर विचार किया जाना चाहिए।

इन प्रयोगों को करने के लिए कई संभावित दृष्टिकोण हैं। प्रतिरक्षा-सक्षम चूहों को मेजबान के रूप में इस्तेमाल किया जा सकता है, जो फाइब्रोब्लास्ट-प्रतिरक्षा कोशिका इंटरैक्शन की जांच की अनुमति देगा। प्रतिरक्षा-सक्षम माउस मॉडल के लिए, माउस कैंसर कोशिकाओं और माउस भ्रूण फाइब्रोब्लास्ट (एमईएफ) को इंजेक्ट किया जाना चाहिए। एमईएफ का उपयोग अन्वेषक को रुचि के जीन की उपस्थिति या अनुपस्थिति का परीक्षण करने के लिए नॉकआउट माउस उपभेदों की विस्तृत श्रृंखला का लाभ उठाने की अनुमति देता है। वैकल्पिक रूप से, प्रतिरक्षा की कमी वाले चूहों का उपयोग चूहों में ट्यूमर के विकास को बढ़ावा देने में मानव फाइब्रोब्लास्ट की भूमिका का परीक्षण करने के लिए किया जा सकता है जो मानव कैंसर कोशिकाओं से प्राप्त होते हैं। कैंसर कोशिकाओं का परिचय चमड़े के नीचे या ऑर्थोटोपिक रूप से किया जा सकता है। मेलेनोमा के लिए, जैसा कि नीचे वर्णित है, ट्यूमर-फाइब्रोब्लास्ट मिश्रण को ऑर्थोटोपिक इंजेक्शन के लिए इंट्राडर्मल रूप से इंजेक्ट किया जा सकता है जो त्वचा के भीतर उस स्थान को अधिक बारीकी से अनुकरण करता है जहां मेलेनोमा विकसित होगा।

Protocol

वर्णित सभी प्रयोगों को कैलिफोर्निया विश्वविद्यालय, लॉस एंजिल्स में पशु देखभाल समिति द्वारा अनुमोदित किया गया था। नोट: कैंसर कोशिकाओं और फाइब्रोब्लास्ट का चयन करें जो माउस तनाव के लिए मेजब?…

Representative Results

ए 2058 मानव मेलेनोमा कोशिकाओं और प्राथमिक मानव त्वचीय फाइब्रोब्लास्ट को बाँझ परिस्थितियों में सुसंस्कृत किया गया था। कोशिकाओं को पीबीएस के साथ तीन बार एकत्र और धोया गया था। इम्यूनोडेफिशिए…

Discussion

चित्रा 1 में प्रयोग में, मानव ए 2058 मेलेनोमा कोशिकाओं के साथ मानव त्वचीय फाइब्रोब्लास्ट को सह-पेश करने के परिणामस्वरूप मेलेनोमा कोशिकाओं को सह-इंजेक्शन फाइब्रोब्लास्ट के बिना पेश किए जाने क?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

लेखक सहायक इनपुट के लिए कोलर प्रयोगशाला के सभी सदस्यों को स्वीकार करना चाहते हैं। एच.ए.सी. रीता एलन फाउंडेशन के मिल्टन ई. कैसल विद्वान थे। हम एनआईएच /एनसीआई 1 आर01 सीए 221296-01 ए 1, एनआईएच 1 आर 01 एआर 070245-01 ए 1, मेलेनोमा रिसर्च एलायंस टीम साइंस अवार्ड, कैंसर रिसर्च इंस्टीट्यूट क्लिनिकल लेबोरेटरी इंटीग्रेशन प्रोग्राम अवार्ड, आईरिस कैंटर महिला स्वास्थ्य केंद्र / यूसीएलए सीटीएसआई एनआईएच ग्रांट यूएल 1टीआर 000124, कैलिफोर्निया विश्वविद्यालय कैंसर अनुसंधान समन्वय समिति, डेविड गेफेन स्कूल ऑफ मेडिसिन मेटाबोलिज्म अवार्ड, क्लिनिकल ट्रांसलेशनल साइंस इंस्टीट्यूट और जॉन्सन कॉम्प्रिहेंसिव कैंसर सेंटर को स्वीकार करते हैं। ब्रॉड स्टेम सेल रिसर्च सेंटर (रोज हिल्स और हा गाबा) से नवाचार पुरस्कार, प्रोस्टेट कैंसर में यूसीएलए एसपीओआर (पुरस्कार संख्या पी 50सीए092131 के तहत राष्ट्रीय स्वास्थ्य संस्थान के राष्ट्रीय कैंसर संस्थान) से एक पुरस्कार, ब्रॉड स्टेम सेल सेंटर, एली और एडिथ ब्रॉड सेंटर ऑफ रीजनरेटिव मेडिसिन एंड स्टेम सेल रिसर्च से एक नवाचार पुरस्कार, यूसीएलए में पुनर्योजी चिकित्सा और स्टेम सेल अनुसंधान के एली और एडिथ ब्रॉड सेंटर, ट्यूमर सेल बायोलॉजी ट्रेनिंग प्रोग्राम (यूएसएचएचएस रूथ एल किर्शस्टीन संस्थागत राष्ट्रीय अनुसंधान सेवा पुरस्कार # टी 32 सीए 009056), यूसीएलए एआर 071307 में त्वचाविज्ञान टी 32 कार्यक्रम, और यूसीएलए मांसपेशी कोशिका जीव विज्ञान, पैथोफिज़ियोलॉजी और चिकित्सीय टी 32 प्रशिक्षण कार्यक्रम 5 टी 32 एएफ 65972।

Materials

26G Needles Fisher Scientific 14-826-10
Alcohol swabs Fisher Scientific 326895
Animal clipper miniARCO with surgical blade #40 WAHL Professional 8787-450A
Athymic nude mice (NU/J) The Jackson labs 002019 These mice are immunocompromised and can be used for experiments in which human cells are introduced. Immunocompetent mice can also be used if mouse cancer cells and fibroblasts will be introduced.
Cancer cells ATCC ATCC® CRL-11147™ This is the catalog number for a primary human melanoma cell line. Other cancer cell types can also be used.
Cell Culture Multi Flasks Fisher Scientific 14-826-95
Centrifuge for conical tubes capable of reaching 180 x g Fisher Scientific 14-432-22
Countess Cell Counting Chamber Fisher Scientific C10228
Dulbecco's Modified Eagle Medium Fisher Scientific 11965-118
Fetal bovine serum Fisher Scientific MT35010CV
Fibroblasts  ATCC PCS-201-012 We isolate fibroblasts from skin in our lab. This is a catalog number for an adult primary human dermal fibroblast cell line. MEFs and fibroblasts derived from other sites can also be used.
Isoflurane Henry Schein Animal Health NDC 11695-6776-2
PBS USP grade for injection into mice Fisher Scientific 50-751-7476
Sterile 10 ml serological pipet Celltreat 667210B
Sterile 5 ml serological pipet Celltreat 229005B
Sterile 50 ml centrifuge tubes Genesee Scientific 28-108
Sterile Syringe Filters pore size 0.2 microns Fisher Scientific 09-740-61A
Sterile tissue culture-grade Trypsin-EDTA Fisher Scientific 15400054
Sterile tissue-culture grade PBS Fisher Scientific 50-751-7476
Sterle 25 ml serological pipet Celltreat 667225B
TC treated 100 x 20 mm dishes Genesee Scientific 25-202
TC treated 150 x 20 mm dishes Genesee Scientific 25-203
TC treated 60 x 15 mm dishes Genesee Scientific 25-260
Trypan blue Fisher Scientific C10228

References

  1. Liu, T., et al. Cancer-associated fibroblasts: an emerging target of anti-cancer immunotherapy. Journal of Hematology and Oncololgy. 12 (1), 86 (2019).
  2. Ozdemir, B. C., et al. Depletion of carcinoma-associated fibroblasts and fibrosis induces immunosuppression and accelerates pancreas cancer with reduced survival. Cancer Cell. 25 (6), 719-734 (2014).
  3. Rhim, A. D., et al. Stromal elements act to restrain, rather than support, pancreatic ductal adenocarcinoma. Cancer Cell. 25 (6), 735-747 (2014).
  4. Zhang, J., et al. Fibroblast-specific protein 1/S100A4-positive cells prevent carcinoma through collagen production and encapsulation of carcinogens. Cancer Research. 73 (9), 2770-2781 (2013).
  5. Ohlund, D., Elyada, E., Tuveson, D. Fibroblast heterogeneity in the cancer wound. Journal of Experimental Medicine. 211 (8), 1503-1523 (2014).
  6. Chen, X., Song, E. Turning foes to friends: targeting cancer-associated fibroblasts. Nature Reviews Drug Discovery. 18 (2), 99-115 (2019).
  7. Wang, W., et al. Crosstalk to stromal fibroblasts induces resistance of lung cancer to epidermal growth factor receptor tyrosine kinase inhibitors. Clinical Cancer Research. 15 (21), 6630-6638 (2009).
  8. Hwang, R. F., et al. Cancer-associated stromal fibroblasts promote pancreatic tumor progression. Cancer Research. 68 (3), 918-926 (2008).
  9. Tsujino, T., et al. Stromal myofibroblasts predict disease recurrence for colorectal cancer. Clinical Cancer Research. 13 (7), 2082-2090 (2007).
  10. Laklai, H., et al. Genotype tunes pancreatic ductal adenocarcinoma tissue tension to induce matricellular fibrosis and tumor progression. Nature Medicine. 22 (5), 497-505 (2016).
  11. Cukierman, E., Bassi, D. E. Physico-mechanical aspects of extracellular matrix influences on tumorigenic behaviors. Seminars in Cancer Biology. 20 (3), 139-145 (2010).
  12. Attieh, Y., et al. Cancer-associated fibroblasts lead tumor invasion through integrin-beta3-dependent fibronectin assembly. Journal of Cell Biology. 216 (11), 3509-3520 (2017).
  13. Ahmadzadeh, M., Rosenberg, S. A. TGF-beta 1 attenuates the acquisition and expression of effector function by tumor antigen-specific human memory CD8 T cells. Journal of Immunology. 174 (9), 5215-5223 (2005).
  14. Feig, C., et al. Targeting CXCL12 from FAP-expressing carcinoma-associated fibroblasts synergizes with anti-PD-L1 immunotherapy in pancreatic cancer. Proceedings of the National Academy of Science, U S A. 110 (50), 20212-20217 (2013).
  15. Kojima, Y., et al. Autocrine TGF-beta and stromal cell-derived factor-1 (SDF-1) signaling drives the evolution of tumor-promoting mammary stromal myofibroblasts. Proceedings of the National Academy of Science, U S A. 107 (46), 20009-20014 (2010).
  16. Kalluri, R. The biology and function of fibroblasts in cancer. Nature Reviews Cancer. 16 (9), 582-598 (2016).
  17. Ziani, L., Chouaib, S., Thiery, J. Alteration of the Antitumor Immune Response by Cancer-Associated Fibroblasts. Frontiers in Immunology. 9, 414 (2018).
  18. Sahai, E., et al. A framework for advancing our understanding of cancer-associated fibroblasts. Nature Reviews Cancer. 20 (3), 174-186 (2020).
  19. Grum-Schwensen, B., et al. Suppression of tumor development and metastasis formation in mice lacking the S100A4(mts1) gene. Cancer Research. 65 (9), 3772-3780 (2005).
  20. Kojima, M., et al. Human subperitoneal fibroblast and cancer cell interaction creates microenvironment that enhances tumor progression and metastasis. PLoS One. 9 (2), 88018 (2014).
  21. Noel, A., et al. Enhancement of tumorigenicity of human breast adenocarcinoma cells in nude mice by matrigel and fibroblasts. British Journal of Cancer. 68 (5), 909-915 (1993).
  22. Sullivan, L. M. Estimation from samples. Circulation. 114 (5), 445-449 (2006).
  23. Yamada, K. M., Cukierman, E. Modeling tissue morphogenesis and cancer in 3D. Cell. 130 (4), 601-610 (2007).
  24. Damianova, R., Stefanova, N., Cukierman, E., Momchilova, A., Pankov, R. Three-dimensional matrix induces sustained activation of ERK1/2 via Src/Ras/Raf signaling pathway. Cell Biology International. 32 (2), 229-234 (2008).
  25. Rhee, S. Fibroblasts in three dimensional matrices: cell migration and matrix remodeling. Experimental & Molecular Medicine. 41 (12), 858-865 (2009).
  26. Hoffman, R. M. Application of GFP imaging in cancer. Labortatory Investigation. 95 (4), 432-452 (2015).
  27. Orimo, A., et al. Stromal fibroblasts present in invasive human breast carcinomas promote tumor growth and angiogenesis through elevated SDF-1/CXCL12 secretion. Cell. 121 (3), 335-348 (2005).
  28. Naito, Y., et al. CD8+ T cells infiltrated within cancer cell nests as a prognostic factor in human colorectal cancer. Cancer Research. 58 (16), 3491-3494 (1998).
  29. Fu, C., Jiang, A. Dendritic Cells and CD8 T Cell Immunity in Tumor Microenvironment. Frontiers Immunolofy. 9, 3059 (2018).
  30. Lakins, M. A., Ghorani, E., Munir, H., Martins, C. P., Shields, J. D. Cancer-associated fibroblasts induce antigen-specific deletion of CD8 (+) T Cells to protect tumour cells. Nature Communications. 9 (1), 948 (2018).
  31. Kato, T., et al. Cancer-Associated Fibroblasts Affect Intratumoral CD8(+) and FoxP3(+) T Cells Via IL6 in the Tumor Microenvironment. Clinical Cancer Research. 24 (19), 4820-4833 (2018).
  32. Gorchs, L., et al. Human Pancreatic Carcinoma-Associated Fibroblasts Promote Expression of Co-inhibitory Markers on CD4(+) and CD8(+) T-Cells. Frontiers Immunology. 10, 847 (2019).
  33. Duscher, D., et al. Fibroblast-Specific Deletion of Hypoxia Inducible Factor-1 Critically Impairs Murine Cutaneous Neovascularization and Wound Healing. Plastic Reconstructive Surgery. 136 (5), 1004-1013 (2015).
  34. Zheng, B., Zhang, Z., Black, C. M., de Crombrugghe, B., Denton, C. P. Ligand-dependent genetic recombination in fibroblasts : a potentially powerful technique for investigating gene function in fibrosis. American Journal of Pathology. 160 (5), 1609-1617 (2002).
  35. Swonger, J. M., Liu, J. S., Ivey, M. J., Tallquist, M. D. Genetic tools for identifying and manipulating fibroblasts in the mouse. Differentiation. 92 (3), 66-83 (2016).
  36. Krtolica, A., Parrinello, S., Lockett, S., Desprez, P. Y., Campisi, J. Senescent fibroblasts promote epithelial cell growth and tumorigenesis: a link between cancer and aging. Proceedings of the National Academy of Science, U S A. 98 (21), 12072-12077 (2001).
  37. Ortiz-Montero, P., Londono-Vallejo, A., Vernot, J. P. Senescence-associated IL-6 and IL-8 cytokines induce a self- and cross-reinforced senescence/inflammatory milieu strengthening tumorigenic capabilities in the MCF-7 breast cancer cell line. Cell Communication and Signaling. 15 (1), 17 (2017).
  38. Coppe, J. P., et al. Senescence-associated secretory phenotypes reveal cell-nonautonomous functions of oncogenic RAS and the p53 tumor suppressor. PLoS Biology. 6 (12), 2853-2868 (2008).
  39. Coller, H. A., Sang, L., Roberts, J. M. A new description of cellular quiescence. PLoS Biolofy. 4 (3), 83 (2006).
  40. Mitra, M., et al. Alternative polyadenylation factors link cell cycle to migration. Genome Biolofy. 19 (1), 176 (2018).
  41. Lemons, J. M., et al. Quiescent fibroblasts exhibit high metabolic activity. PLoS Biology. 8 (10), 1000514 (2010).
  42. Suh, E. J., et al. A microRNA network regulates proliferative timing and extracellular matrix synthesis during cellular quiescence in fibroblasts. Genome Biology. 13 (12), 121 (2012).
  43. Legesse-Miller, A., et al. Quiescent fibroblasts are protected from proteasome inhibition-mediated toxicity. Molecular Biology of the Cell. 23 (18), 3566-3581 (2012).
  44. Evertts, A. G., et al. H4K20 methylation regulates quiescence and chromatin compaction. Molecular Biology of the Cell. 24 (19), 3025-3037 (2013).
  45. Johnson, L. A., et al. Matrix stiffness corresponding to strictured bowel induces a fibrogenic response in human colonic fibroblasts. Inflammatory Bowel Disease. 19 (5), 891-903 (2013).
  46. Marinkovic, A., Liu, F., Tschumperlin, D. J. Matrices of physiologic stiffness potently inactivate idiopathic pulmonary fibrosis fibroblasts. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 48 (4), 422-430 (2013).
  47. Tschumperlin, D. J. Fibroblasts and the ground they walk on. Physiology (Bethesda). 28 (6), 380-390 (2013).
  48. Tschumperlin, D. J., et al. Mechanotransduction through growth-factor shedding into the extracellular space. Nature. 429 (6987), 83-86 (2004).
  49. Doyle, A. D., Wang, F. W., Matsumoto, K., Yamada, K. M. One-dimensional topography underlies three-dimensional fibrillar cell migration. Journal of Cell Biology. 184 (4), 481-490 (2009).
  50. Alexander, J., Cukierman, E. Stromal dynamic reciprocity in cancer: intricacies of fibroblastic-ECM interactions. Current Opinions in Cell Biology. 42, 80-93 (2016).

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Jelinek, D., Zhang, E. R., Ambrus, A., Haley, E., Guinn, E., Vo, A., Le, P., Kesaf, A. E., Nguyen, J., Guo, L., Frederick, D., Sun, Z., Guo, N., Sevier, P., Bilotta, E., Atai, K., Voisin, L., Coller, H. A. A Mouse Model to Investigate the Role of Cancer-Associated Fibroblasts in Tumor Growth. J. Vis. Exp. (166), e61883, doi:10.3791/61883 (2020).

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