Summary

将人类成纤维细胞直接重新编程到肌细胞中,以研究神经肌肉疾病的治疗方法

Published: April 03, 2021
doi:

Summary

此协议描述了皮肤成纤维细胞转化为肌细胞及其分化成肌管。细胞系来自神经肌肉疾病患者,可用于研究病理机制和测试治疗策略。

Abstract

对肌肉营养不良症的病理生理学和治疗靶点的调查都因人类肌细胞的增殖能力有限而受阻。已经创建了几个小鼠模型,但它们要么不能真正代表人类对这种疾病的生理病理学,要么不能代表人类中发现的广泛突变。人类原发性肌瘤的永生是这一局限性的一种替代:然而,它仍然依赖于肌肉活检,这是侵入性的,不容易获得。相比之下,皮肤活检更容易获得,对患者的侵入性更小。从皮肤活检中提取的纤维细胞可以永生并转导成肌细胞,提供具有极高肌原潜力的细胞来源。在这里,我们描述了一个快速和直接的重新编程方法的成纤维细胞成致远的血统。纤维细胞被两种扁豆病毒所传递 :hTERT 使原始文化永生,以及一种可诱导的 MYOD,在添加多氧环素后,诱导成纤维细胞转化为肌细胞,然后成熟肌管,表达后期分化标记。这种快速的异位治疗方案是研究病理机制和研究神经肌肉疾病的创新基因或药理生物疗法的有力工具。

Introduction

直接从人体组织获得的细胞模型有助于模拟许多人类遗传性疾病,其优点是具有原始的基因组背景,并在许多情况下复制患者观察到的相同分子和细胞特征。在神经肌肉疾病领域,肌肉活检一直是人类肌细胞的一大来源,有助于阐明病理机制。此外,它们是药物和基因疗法体内测试的重要工具。一方面,从肌肉碎片中提取肌细胞相对容易。另一方面,原发性肌细胞的培养和维持是具有挑战性的,因为它们的增殖率有限,体外1的复制衰老。这些局限性的一个替代方案是,通过插入人类端粒酶(hTERT)和/或环素依赖激酶4(CDK4)基因2,3,保持骨骼肌肉特征4,使肌细胞永生。然而,原发性肌细胞的衰减仍然依赖于肌肉活检,这是一种对患者不利的外科手术,在许多情况下,患者的肌肉处于晚期退化。因此,这些患者的肌肉由相当一部分纤维化和/或脂肪组织组成,产生更少的肌肉细胞,需要净化以前不朽的细胞。

与肌肉活检相比,皮肤活检更容易获得,对患者的危害也较小。原发性成纤维细胞可以从 体外的皮肤碎片中提取。虽然成纤维细胞主要不受导致神经肌肉紊乱的突变的影响,但它们可以转入肌细胞。这可以通过插入Myod基因来实现 ,Myod 基因是一种致幻调节转录因子5。在这份手稿中,我们描述了获得异化肌细胞的协议,从成纤维细胞文化的建立到分化肌管的消减( 图1中描述了该方法的代表性摘要)。

治疗策略的临床前测试取决于携带类似于人类患者突变的细胞和动物模型。虽然随着CRISPR/Cas96等基因编辑技术的进步,动物模型的发展变得更加可行,但它仍然具有挑战性和代价高昂。因此,患者衍生的细胞系是建立模型的可访问选项,涵盖大量疾病突变,如杜氏肌营养不良症 (DMD)。细胞模型的沉降和创建对于开发针对此类病理的个性化疗法至关重要。

在已调查的个性化疗法中,exon跳过策略是针对不同肌肉萎缩症的有希望的策略之一。此策略包括生产更短但功能性强的蛋白质。这是通过将外来定义隐藏到拼接体中来执行的,因此从最终信使中排除变异的外在定义。这是一个非常有前途的技术,已被FDA批准为DMD。因此,我们还在此协议中描述了用两种不同的外在跳过相关技术来转染肌细胞的方法:抗感寡核苷酸 (AON) 和 U7snRNA-腺相关病毒 (AAV)。AON变性是一个很好的工具,为初步筛选几个序列,旨在促进exon跳过9。但是,AON 的活动是短暂的。为了获得反感序列的持续表达,我们还探索了小型核RNA(snRNA)与AAV相结合,允许核定位和纳入拼接机械10。U7 是参与组蛋白 mRNA 处理的 snRNA,可设计为结合蛋白质,将其重定向到拼接体并提供抗感序列11。使用改性 U7 snRNA 与 AAV 向量相结合,克服了 AON 的局限性,从而继续表达 AON,并更好地传递感兴趣的组织12。我们使用来自DMD患者的细胞来说明免责策略。

Protocol

所有实验和活检都是按照国家儿童医院机构审查委员会批准的有关机构的道德规则进行的。 1. 皮肤成纤维细胞文化的开始 建立成纤维细胞文化 阿里引用 10 mL 的成纤维细胞介质 (表 1) 在 15 ml 圆锥管。皮肤活检应放置并运送到这种介质中。活检可以存储在4°C,直到它被处理,优先在同一天。注:在24-36小时内使用皮肤活检,以避免潜在的污染增…

Representative Results

此协议展示了如何建立人类皮肤衍生的成纤维细胞培养物,并将它们转化为肌细胞,然后转化为差异化肌管。这种类型的细胞系对于神经肌肉疾病的研究和潜在疗法的 体外 测试非常有用。 图 1中显示了成纤维细胞转换的示意图。 图 2A 显示了皮肤碎片和从皮肤上冒出的成纤维细胞。当达到交汇点(图2B)</stro…

Discussion

要获得高质量的调频细胞线,某些步骤至关重要。皮肤活检处理得越早,获得健康成纤维细胞的机会就越大。成纤维细胞文化的通过数量也很重要。原细胞的增殖能力有限,经过许多通道后,它们进入复制性衰老。因此,最好在低通道数下储存成纤维细胞,并尽早转化细胞。

另一个重要步骤是病毒生产具有最大的纯度和准确的量化。例如,使用 qPCR 的病毒基因组定量提供了?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

我们要感谢文森特·穆利博士分享他过去对模型的了解。这项工作得到了美国国家卫生研究院国家神经疾病和中风研究所(R01 NS043264(K.M.F., 和R.B.W.),美国国家卫生研究院国家关节炎和肌肉骨骼和皮肤疾病研究所(NIAMS)(P50 AR070604-01(K.M.F.,K.M,R.N.和N.W.)。N.W.得到了俄亥俄州立大学/全国儿童医院肌肉小组和菲利普基金会的奖学金支持。这项工作也得到了内部自由裁量基金的支持,第2号外逃工作的一部分也得到了CurreDuchenne(K.M.F.)和弗朗西丝·孔特雷·莱斯·米奥帕蒂斯协会的支持。IRB 编号:IRB #: IRB10-00358/CR00005138 和 IBCSC#:IBS00000123。

Materials

100 mm dish Corning 430167
0.25% Trypsin-EDTA, phenol red Thermo Fisher 2500056
10X Phosphate buffered saline (PBS) Fisher Scientific BP3994
12-well plate Corning 3513
20X Transfer buffer Thermo Fisher NP00061
20X Tris-acetate SDS running buffer Thermo Fisher LA0041
3-8% Tris-Acetate gel Thermo Fisher EA0378BOX
75 cm2 flask Corning 430641U
Antibiotic-Antimicotic 100X Thermo Fisher 15240062
Anti-myosin heavy chain, sarcomere antibody Developmental Studies Hybridome Bank MF20 supernatant Dilution 1:50
Antioxidant Thermo Fisher NP0005
BCA Protein Assay Thermo Fisher 23227
Chloroform Sigma-Aldrich C2432
DAPI Thermo Fisher D3571 Dilution 1:1000
Digitonin Millipore Sigma 300410250MG
Dimethyl sulfoxide Sigma-Aldrich D2438
DMEM, High glucose, GlutaMAX supplement, Pyruvate Thermo Fisher 10569044
DNAse I set (250U) Zymo Research Corporation E1010
Doxycycline Hydrochloride Fisher Scientific BP2653-5
Dup2 human primers Fw_5' GCTGCTGAAGTTTGTTGG
TTTCTC 3'
Rv_5' CTTTTGGCAGTTTTTGCC
CTGT 3'
Dystrophin antibody Abcam ab15277 Dilution 1:200
Fetal bovine serum Thermo Fisher 16000
Glycine Sigma-Aldrich G8898
Goat anti-mouse, Alexa Fluor 488 Thermo Fisher A11001 Dilution 1:1000
Halt Protease inhibitor cocktail 100X Thermo Fisher 78430
Hemocytometer Hausser Scientific 3100
Hygromycin B Thermo Fisher 10687010
IRDye 680RD goat anti-Rabbit IgG (H+L) Li-Cor 926-68071 Dilution 1:5000
Lab-Tek II CC2 chamber slide system Thermo Fisher 15852
Laemmli Bioworld 105700201
Lipofectamine 3000 Transfection Reagent Thermo Fisher L3000008
Matrigel GFR membrane matrix Corning 354230
Methanol Fisher Scientific A412P-4
Mr. Frosty Freezing Container Thermo Fisher 51000001
Nitrocellulose membrane 0.45 µm GE Healthcare Life Sciences 10600002
Normal Goat serum control Thermo Fisher 10000C
Odyssey Blocking Buffer (PBS) Li-Cor 927-40003 Blocking buffer for Western blot
Opti-MEM I Reduced Serum Medium Thermo Fisher 11058021
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich 158127
PCR master mix Thermo Fisher K0172
Phosphatase inhibitor Thermo Fisher A32957
Precision Plus Protein Dual Color Standards Bio Rad 1610374
Puromycin Thermo Fisher A1113803
Revert 700 Total Protein Stain for Western Blot Normalization Li-Cor 926-11021
RevertAid kit Thermo Fisher K1691
RNA Clean & Concentrator-25 Zymo Research Corporation R1018
Scalpels Aspen Surgical 372611
Skeletal Muscle Cell Differentiation medium Promocell C23061
Skeletal Muscle Cell Growth medium Promocell C23060
Triton X-100 Acros Organics 215682500
TRIzol reagent Thermo Fisher 15596026
Tween 20 Fisher Scientific BP337500
Ultra low temperature freezer Thermo Scientific 7402
UltraPure 0.5M EDTA, pH 8.0 Thermo Fisher 15575020
Vectashield antifade mounting medium Vector Labs H1000

References

  1. Bigot, A., et al. Replicative aging down-regulates the myogenic regulatory factors in human myoblasts. Biology of the Cell. 100 (3), 189-199 (2008).
  2. Mamchaoui, K., et al. Immortalized pathological human myoblasts: Towards a universal tool for the study of neuromuscular disorders. Skeletal Muscle. 1 (34), (2011).
  3. Pantic, B., et al. Reliable and versatile immortal muscle cell models from healthy and myotonic dystrophy type 1 primary human myoblasts. Experimental Cell Research. 342 (1), 39-51 (2016).
  4. Thorley, M., et al. Skeletal muscle characteristics are preserved in hTERT/cdk4 human myogenic cell lines. Skeletal Muscle. 6 (1), 43 (2016).
  5. Chaouch, S., et al. Immortalized skin fibroblasts expressing conditional MyoD as a renewable and reliable source of converted human muscle cells to assess therapeutic strategies for muscular dystrophies: Validation of an exon-skipping approach to restore dystrophin in duchen. Human Gene Therapy. 20 (7), 784-790 (2009).
  6. Zarei, A., Razban, V., Hosseini, S. E., Tabei, S. M. B. Creating cell and animal models of human disease by genome editing using CRISPR/Cas9. The Journal of Gene Medicine. 21 (4), 3082 (2019).
  7. Echevarría, L., Aupy, P., Goyenvalle, A. Exon-skipping advances for Duchenne muscular dystrophy. Human molecular genetics. 27 (2), 163-172 (2018).
  8. Hwang, J., Yokota, T. Recent advancements in exon-skipping therapies using antisense oligonucleotides and genome editing for the treatment of various muscular dystrophies. Expert reviews in molecular medicine. 21, 5 (2019).
  9. Wein, N., et al. Efficient Skipping of Single Exon Duplications in DMD Patient-Derived Cell Lines Using an Antisense Oligonucleotide Approach. Journal of Neuromuscular Diseases. 4 (3), 199-207 (2017).
  10. De Angelis, F. G., et al. Chimeric snRNA molecules carrying antisense sequences against the splice junctions of exon 51 of the dystrophin pre-mRNA induce exon skipping and restoration of a dystrophin synthesis in Δ48-50 DMD cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99 (14), 9456-9461 (2002).
  11. Gorman, L., Suter, D., Emerick, V., Schümperli, D., Kole, R. Stable alteration of pre-mRNA splicing patterns by modified U7 small nuclear RNAs. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 95 (9), 4929-4934 (1998).
  12. Wein, N., et al. Translation from a DMD exon 5 IRES results in a functional dystrophin isoform that attenuates dystrophinopathy in humans and mice. Nature Medicine. 20 (9), 992-1000 (2014).
  13. Auré, K., Mamchaoui, K., Frachon, P., Butler-Browne, G. S., Lombès, A., Mouly, V. Impact on oxidative phosphorylation of immortalization with the telomerase gene. Neuromuscular Disorders. 17 (5), 368-375 (2007).
  14. Barde, I., et al. Efficient control of gene expression in the hematopoietic system using a single Tet-on inducible lentiviral vector. Molecular Therapy. 13 (2), 382-390 (2006).
  15. Wang, X., McManus, M. Lentivirus production. Journal of Visualized Experiments. (32), e1499 (2009).
  16. Amack, J. D., Mahadevan, M. S. Myogenic defects in myotonic dystrophy. Developmental Biology. 265 (2), 294-301 (2004).
check_url/61991?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Almeida, C. F., Frair, E. C., Huang, N., Neinast, R., McBride, K. L., Weiss, R. B., Flanigan, K. M., Wein, N. Direct Reprogramming of Human Fibroblasts into Myoblasts to Investigate Therapies for Neuromuscular Disorders. J. Vis. Exp. (170), e61991, doi:10.3791/61991 (2021).

View Video