Summary

小鼠窦房和房室结的全卡口免疫荧光染色、共聚焦成像和 3D 重建

Published: December 22, 2020
doi:

Summary

我们为鼠心脏窦房结(SAN)和房室结(AVN)的全安装免疫荧光染色提供了分步方案。

Abstract

窦房结(SAN)中起搏器细胞在生理上产生的电信号通过传导系统(包括房室结(AVN))传导,以允许整个心脏的兴奋和收缩。SAN 或 AVN 的任何功能障碍都会导致心律失常,表明它们在电生理学和心律失常发生中起根本作用。小鼠模型广泛用于心律失常研究,但SAN和AVN的具体研究仍然具有挑战性。

SAN位于终末嵴与上腔静脉的交界处,AVN位于科赫三角形的顶点,由冠状窦的孔,三尖瓣环和Todaro的肌腱形成。然而,由于体积小,传统组织学的可视化仍然具有挑战性,并且不允许在其3D环境中研究SAN和AVN。

在这里,我们描述了一种全接口免疫荧光方法,该方法允许标记的小鼠SAN和AVN的局部可视化。 全接口免疫荧光染色适用于较小的组织切片,无需手动切片。为此,解剖小鼠心脏,去除不需要的组织,然后固定,透化和阻塞。然后将SAN和AVN内传导系统的细胞用抗HCN4抗体染色。共聚焦激光扫描显微镜和图像处理可以区分淋巴结细胞和工作心肌细胞,并清楚地定位SAN和AVN。此外,还可以结合其他抗体来标记其他细胞类型,例如神经纤维。

与传统的免疫组织学相比,全卡口免疫荧光染色保留了心脏传导系统的解剖完整性,从而可以研究AVN;特别是它们的解剖结构以及与周围工作心肌和非肌细胞的相互作用。

Introduction

心律失常是影响数百万人的常见疾病,是全世界发病率和死亡率高的原因。尽管在治疗和预防方面取得了巨大进展,例如心脏起搏器的发展,但心律失常的治疗仍然具有挑战性,主要是由于对潜在疾病机制的了解非常有限1,23更好地了解心律失常的正常电生理学和病理生理学可能有助于在未来开发新颖、创新和因果治疗策略。此外,为了全面研究心律失常发生,重要的是定位和可视化小鼠等动物模型中的特定心脏传导系统,因为小鼠广泛用于电生理学研究。

心脏传导系统的主要部分是窦房结(SAN),电脉冲在专门的起搏器细胞中产生,以及房室结(AVN),这是心房和心室之间唯一的电连接4。每当SAN和AVN的电生理特性改变时,就会发生病态窦房结综合征或房室传导阻滞等心律失常,这可能导致血流动力学恶化,晕厥甚至死亡,从而强调了SAN和AVN在电生理学和心律失常发生中的重要作用5。

对SAN或AVN的全面研究需要对这两种结构进行精确的定位和可视化,最好是在它们的生理环境中。然而,由于它们的体积小且在工作心肌中的位置很小,如果没有建立清晰的宏观可见结构,研究SAN和AVN的解剖学和电生理学具有挑战性。解剖标志可用于粗略识别包含 SAN 和 AVN678 的区域。简而言之,SAN位于右心房的腔间区域,毗邻肌肉末端嵴(CT),AVN位于由三尖瓣,冠状窦的开口和Todaro的肌腱建立的Koch三角形内。到目前为止,这些解剖标志主要用于定位,去除然后研究SAN和AVN作为单个结构(例如,通过常规组织学)。然而,为了更好地了解SAN和AVN的复杂电生理学(例如,工作心肌相邻细胞的调节作用),有必要研究生理3D环境中的传导系统。

全卡口免疫荧光染色是一种用于原 研究解剖结构同时保持周围组织完整性的方法9。利用共聚焦显微镜和图像分析软件,可以使用荧光标记的抗体可视化SAN和AVN,这些抗体靶向在这些区域中特异性表达的离子通道。

以下协议解释了为SAN和AVN显微镜定位和可视化执行成熟的全安装染色方法的必要步骤。具体来说,该协议描述了如何(1)通过解剖标志定位SAN和AVN,以制备这些样品以进行染色和显微镜分析(2)对参考标记物HCN4和Cx43进行全卡口免疫荧光染色(3)制备SAN和AVN样品用于共聚焦显微镜(4)以执行SAN和AVN的共聚焦成像。我们还描述了如何修改该协议以包括对周围工作心肌或非肌细胞(如自主神经纤维)进行额外染色,从而可以彻底研究心脏内的心脏传导系统。

Protocol

动物护理和所有实验程序均按照慕尼黑大学动物护理和伦理委员会的指导方针进行,对小鼠进行的所有程序均获得德国慕尼黑巴伐利亚州政府的批准(ROB-55.2-2532.Vet_02-16-106,ROB-55.2-2532.Vet_02-19-86)。C57BL6 / J小鼠从杰克逊实验室购买。 注意: 图1 显示了实验所需的仪器。图2显示了大体心脏解剖结构的 ?…

Representative Results

通过使用上述协议,可以可靠地执行SAN和AVN的共聚焦显微镜成像。使用靶向HCN4的荧光抗体对传导系统进行特异性染色,并使用靶向Cx43的荧光抗体对工作心肌进行染色,可以清晰地识别完整解剖结构内的SAN(图5,视频1)和AVN(图6,视频2)。 <img alt="Figure 1"…

Discussion

传统上,心脏解剖学研究使用薄的组织学切片11。然而,这些方法不保留传导系统的三维结构,因此仅提供2D信息。此处描述的全卡口免疫荧光染色方案可以克服这些限制,并且可以常规用于SAN和AVN成像。

与需要石蜡包埋、切片和抗原修复的常规免疫组织化学等标准方法相比,全卡口方法有利于解决SAN和AVN的精确3D定位和形态,并检查与周围组织的关系,因?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项工作得到了中国国家留学基金委(CSC,对R. Xia),德国心血管研究中心(DZHK;81X2600255给S. Clauss,81Z0600206给S. Kääb),科罗纳基金会(S199/10079/2019给S. Clauss),SFB 914(项目Z01给H. Ishikawa-Ankerhold和S. Massberg,项目A10到C. Schulz),ERA-NET心血管疾病(ERA-CVD;01KL1910给S. Clauss)和Heinrich-and-Lotte-Mühlfenzl Stiftung(给S. Clauss)的支持。资助者在手稿准备中没有任何作用。

Materials

Anesthesia
Isoflurane vaporizer system  Hugo Sachs Elektronik 34-0458, 34-1030, 73-4911, 34-0415, 73-4910 Includes an induction chamber, a gas evacuation unit and charcoal filters
Modified Bain circuit Hugo Sachs Elektronik 73-4860 Includes an anesthesia mask for mice
Surgical Platform Kent Scientific SURGI-M
In vivo instrumentation
Fine forceps Fine Science Tools 11295-51
Iris scissors Fine Science Tools 14084-08
Spring scissors Fine Science Tools 91500-09
Tissue forceps Fine Science Tools 11051-10
Tissue pins Fine Science Tools 26007-01 Could use 27G needles as a substitute
General lab instruments
Orbital shaker Sunlab D-8040
Magnetic stirrer IKA  RH basic
Pipette,volume 10 µL, 100 µL, 1000 µL Eppendorf Z683884-1EA
Microscopes
Dissection stereo- zoom microscope  VWR 10836-004
Laser Scanning Confocal microscope Zeiss LSM 800
Software
Imaris 8.4.2 Oxford instruments
ZEN 2.3 SP1 black Zeiss
General Lab Material
0.2 µm syringe filter Sartorius 17597
100 mm petri dish Falcon 351029
27G needle BD Microlance 3 300635
50 ml Polypropylene conical Tube Falcon 352070
5ml Syringe Braun 4606108V
Cover slips Thermo Scientific 7632160
Eppendorf Tubes Eppendorf 30121872
Chemicals
0.5 M EDTA Sigma 20-158 Components of TEA
16% Formaldehyde Solution Thermo Scientific  28908 use as a 4% solution 
Acetic acid Merck 100063 Components of TEA
Agarose Biozym 850070
Bovine Serum Albumin Sigma A2153-100G
DPBS (1X) Dulbecco's Phosphate Buffered Saline Gibco 14190-094
Normal goat serum Sigma NS02L
Sucrose Sigma S1888-1kg
Tris-base Roche TRIS-RO Components of TEA
Triton X-100 Sigma T8787-250ml Diluted to 1% in PBS
Tween 20 Sigma P2287-500ml
Drugs
Fentanyl 0.5 mg/10 mL Braun Melsungen
Isoflurane 1 mL/mL Cp-pharma 31303
Oxygen 5 L Linde 2020175 Includes a pressure regulator
Antibodies
Goat anti-Rabbit IgG Alexa Fluor 488  Cell Signaling Technology #4412 diluted to 1:200
Goat anti-Rat IgG Alexa Fluor 647 Invitrogen #A-21247 diluted to 1:200
Hoechst 33342, Trihydrochloride, Trihydrate (DAPI) Invitrogen H3570 diluted to 1:1000
Rabbit Anti-Connexin-43 Sigma C6219 diluted to 1:200
Rat anti-HCN4 (SHG 1E5) Invitrogen MA3-903 diluted to 1:200
Other
Plastic ring Self-designed and 3D printed
Plasticine Cernit 49655005
Silikonpasten, Baysilone VWR 291-1220
Animals
Mouse, C57BL/6 The Jackson Laboratory

References

  1. Clauss, S., et al. Animal models of arrhythmia: classic electrophysiology to genetically modified large animals. Nature Reviews Cardiology. 16 (8), 457-475 (2019).
  2. Clauss, S., et al. Characterization of a porcine model of atrial arrhythmogenicity in the context of ischaemic heart failure. PLoS One. 15 (5), 0232374 (2020).
  3. Schuttler, D., et al. Animal Models of Atrial Fibrillation. Circulation Research. 127 (1), 91-110 (2020).
  4. van Weerd, J. H., Christoffels, V. M. The formation and function of the cardiac conduction system. Development. 143 (2), 197-210 (2016).
  5. Vogler, J., Breithardt, G., Eckardt, L. Bradyarrhythmias and Conduction Blocks. Revista Española de Cardiología (English Edition. 65 (7), 656-667 (2012).
  6. Wen, Y., Li, B. Morphology of mouse sinoatrial node and its expression of NF-160 and HCN4. International Journal of Clinical and Experimental Medicine. 8 (8), 13383-13387 (2015).
  7. Verheijck, E. E., et al. Electrophysiological features of the mouse sinoatrial node in relation to connexin distribution. Cardiovascular Research. 52 (1), 40-50 (2001).
  8. Glukhov, A. V., Fedorov, V. V., Anderson, M. E., Mohler, P. J., Efimov, I. R. Functional anatomy of the murine sinus node: high-resolution optical mapping of ankyrin-B heterozygous mice. American Journal of Physiology Heart and Circulatory Physiology. 299 (2), H482-H491 (2010).
  9. Sillitoe, R. V., Hawkes, R. Whole-mount immunohistochemistry: a high-throughput screen for patterning defects in the mouse cerebellum. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 50 (2), 235-244 (2002).
  10. Hulsmans, M., et al. Macrophages Facilitate Electrical Conduction in the Heart. Cell. 169 (3), 510-522 (2017).
  11. Liu, J., Dobrzynski, H., Yanni, J., Boyett, M. R., Lei, M. Organisation of the mouse sinoatrial node: structure and expression of HCN channels. Cardiovascular Research. 73 (4), 729-738 (2007).
  12. Muller-Taubenberger, A. Application of fluorescent protein tags as reporters in live-cell imaging studies. Methods Mol Biol. 346, 229-246 (2006).
  13. Müller-Taubenberger, A., Ishikawa-Ankerhold, H. C., Eichinger, L., Rivero, F. . Dictyostelium discoideum Protocol. , 93-112 (2013).
  14. Shaw, P. J., Pawley, J. B. . Handbook Of Biological Confocal Microscopy. , 453-467 (2006).
  15. Huff, J. The Airyscan detector from ZEISS: confocal imaging with improved signal-to-noise ratio and super-resolution. Nature Methods. 12 (12), (2015).
  16. Rysevaite, K., et al. Immunohistochemical characterization of the intrinsic cardiac neural plexus in whole-mount mouse heart preparations. Heart Rhythm. 8 (5), 731-738 (2011).
  17. Acar, M., et al. Deep imaging of bone marrow shows non-dividing stem cells are mainly perisinusoidal. Nature. 526 (7571), 126-130 (2015).
  18. Brahmajothi, M. V., Morales, M. J., Campbell, D. L., Steenbergen, C., Strauss, H. C. Expression and distribution of voltage-gated ion channels in ferret sinoatrial node. Physiological Genomics. 42 (2), 131-140 (2010).
  19. Mesirca, P., et al. Cardiac arrhythmia induced by genetic silencing of ‘funny’ (f) channels is rescued by GIRK4 inactivation. Nature Communication. 5, 4664 (2014).
  20. Liang, X., et al. HCN4 dynamically marks the first heart field and conduction system precursors. Circulation Research. 113 (4), 399-407 (2013).
  21. Verheule, S., Kaese, S. Connexin diversity in the heart: insights from transgenic mouse models. Frontiers in Pharmacology. 4, 81 (2013).
  22. van der Velden, H. Cardiac gap junctions and connexins: their role in atrial fibrillation and potential as therapeutic targets. Cardiovascular Research. 54 (2), 270-279 (2002).
check_url/62058?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Xia, R., Vlcek, J., Bauer, J., Kääb, S., Ishikawa-Ankerhold, H., van den Heuvel, D. A., Schulz, C., Massberg, S., Clauss, S. Whole-Mount Immunofluorescence Staining, Confocal Imaging and 3D Reconstruction of the Sinoatrial and Atrioventricular Node in the Mouse. J. Vis. Exp. (166), e62058, doi:10.3791/62058 (2020).

View Video