Summary

En rottelungetransplantasjonsmodell av varm iskemi / reperfusjonsskade: optimaliseringer for å forbedre resultatene

Published: October 28, 2021
doi:

Summary

Her presenterer vi optimaliseringer til en rottelungetransplantasjonsmodell som tjener til å forbedre resultatene. Vi tilbyr en størrelsesguide for mansjetter basert på kroppsvekt, en målestrategi for å fastslå det 4. interkostalrommet, og metoder for sårlukking og BAL (bronkoalveolær skylling) væske- og vevsoppsamling.

Abstract

Fra vår erfaring med rottelungetransplantasjon har vi funnet flere forbedringsområder. Informasjon i eksisterende litteratur om metoder for å velge passende mansjettstørrelser for lungevenen (PV), lungearterien (PA) eller bronkus (Br) er variert, noe som gjør bestemmelsen av riktig mansjettstørrelse under rottelungetransplantasjon til en øvelse og feiling. Ved å standardisere mansjettteknikken for å bruke den minste effektive mansjetten som passer for størrelsen på karet eller bronkusen, kan man gjøre transplantasjonsprosedyren tryggere, raskere og mer vellykket. Siden diametrene til PV, PA og Br er relatert til kroppsvekten til rotta, presenterer vi en strategi for å velge en passende størrelse ved hjelp av en vektbasert guide. Siden lungevolum også er relatert til kroppsvekt, anbefaler vi at dette forholdet også bør vurderes når du velger riktig luftvolum for donorlungeinflasjon under varm iskemi, samt for riktig volum av PBS som skal innsettes under væskeansamling av bronkoalveolær skylling (BAL). Vi beskriver også metoder for interkostal romdisseksjon, sårlukking og prøvetaking fra både de innfødte og transplanterte.

Introduction

I over tre tiår har forskere modifisert og forbedret rottelungetransplantasjonsmodeller slik at dataene som genereres er mer konsistente og mer reflekterende for den faktiske kliniske tilstanden. I laboratoriets tid med å utføre denne modellen har vi bestemt fire forbedringsområder: mansjettteknikker for anastomoser, identifisering av mottakerens 4. interkostalrom, lungeinflasjon og sårlukking under mottakerens prosedyre, og høsting av prøver for analyse.

Modifikasjoner av mansjettteknikk for anastomoser kan forbedre hele transplantasjonsprosedyren ved å forkorte håndteringstiden for donorlungen 1,2,3,4,5,6 og gjøre anastomoseprosedyren raskere og teknisk enklere for mikrokirurgen. Selv om det er viktig å bruke mansjettene av riktig størrelse for å levere nødvendig blod og luftstrøm til den transplanterte lungen, er det begrenset veiledning om hvordan man skal velge størrelsen på mansjettene for lungevenen (PV), lungearterien (PA) eller bronkus (Br) 5,7,8,9. Siden diametrene til PV, PA og Br er relatert til kroppsvekten til donor- og mottakerrottene, foreslår vi at mansjettstørrelsen er basert på kroppsvekt. Denne rapporten gir en størrelsesguide for mansjetter basert på rottens kroppsvekt (180 g til over 270 g) som tjener til å optimalisere blod- og lufttilførselen til den transplanterte lungen (tabell 1).

Mens en nyere mikrokirurg med hell og enkelt kan skaffe en donorlunge under donorprosedyren, er transplantasjon av lungen under mottakerens prosedyre mer komplisert og avhengig av mikrokirurgens erfaring. Forsøk på å finne den 4. interkostalplassen for å få tilgang til mottakerens venstre lunge er en av de vanskeligere trinnene som holder litt subjektivitet og kan øke prosedyretiden. Derfor introduserer vi en enkel og objektiv metode for å hjelpe til med identifiseringen av 4. interkostalromplassering ved å bruke brystmålinger og hjertebank for å finne riktig område brystvegg for å dissekere 4,5,6,10,11,12.

Vi foreslår også en forbedring av donorlungeinflasjonen, som er en potensiell kilde til skade på organet. Donorlungen deflateres inntil reperfusjonen starter. Under suturering av 4th intercostal plass, blir donorlungen vanligvis oppblåst ved å øke PEEP fra 2 cmH 2 O til 6cmH2O. For å minimere lungeskade fra overinflasjon, foreslår vi en teknikk der tre 6-0 nylonsuturer plasseres rundt den 4. ribben dårligere enn 5-ribben med enkle doble knuter. Når det er tid for sårlukking, holdes endene av de tre suturene med hemostater i begge hender, såret lukkes på en gang ved å trekke opp på hver side, og PEEP reduseres umiddelbart til 2 cmH2O. På denne måten får lungen utvide seg kortest mulig10.

Ved avslutningen av et eksperiment ønsker forskeren ofte å samle inn mange typer prøver for mange typer analyser fra hver transplantasjon. For eksempel kan snap frosset vev, formalin fast vev, vev for våt-til-tørr vektforhold for å bestemme lungeødem, og bronkoalvelolær skylling (BAL) væske alle kan brukes til å vurdere hvor godt transplantasjonen gikk. Den tradisjonelle metoden for å samle BAL-væske tillater en blandet samlet prøve fra både mottakerens innfødte lober og donorens transplanterte lobe13,14,15. For å overvinne dette presenterer vi en metode for å klemme inn hilarområdene som kan gi mer presis innsikt i tilstanden til de transplanterte og innfødte lungene. I tillegg er volumet av PBS som brukes til å samle BAL-væske fra hver side av lungene, viktig å vurdere fordi BAL-væske inneholder mange løselige faktorer som cytokiner og kjemokiner som måles ved konsentrasjon. Normalisering av volumet av væsken som er innpodet til det estimerte volumet av lungekapasitet kan hjelpe til med sammenligning. Med fire fliker på høyre side og en på venstre side, har hver av rottens fem fliker forskjellig volum og overflateareal16. Ifølge en tidligere studie om volummåling av lungelapper av Backer og medarbeidere er volumet av høyre lunge av det totale volumet av hele lungen 63 % (4400 mm 3) og venstre 37 % (2500 mm3). Vi anbefaler derfor at volumet av PBS som brukes til å samle opp BAL-væske beregnes som to ganger tidalvolumet (7,2 ml/kg) multiplisert med 63 % for høyre lunge og 37 % for venstre lunge. Ved å bruke denne tilnærmingen kan man bedre kontrollere for variabler som kroppsvekt og timing10,16.

Alt i alt vil vi i denne rapporten demonstrere noen modifikasjoner av standard eksperimentell modell for rottelungetransplantasjon som kan gjøre prosedyren mer effektiv og øke evnen til å generere mer nøyaktige og rikelig data fra hvert eksperiment.

Protocol

Mannlige Sprague-Dawley-rotter (180-270 g kroppsvekt) ble kjøpt kommersielt (f.eks. Envigo) og ble plassert under patogenfrie forhold ved Ohio State University Animal Facility. Alle prosedyrer ble humant utført i henhold til NIH og National Research Council’s Guide for Humane Care and Use of Laboratory Animals og med godkjenning av The Ohio State University Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC protokoll # 2012A00000135-R2). 1. Første oppsett Sett opp kirurgiske enhet…

Representative Results

For å måle lungeødem ble våt-til-tørrvektforholdet beregnet. Donorens stedegne, den transplanterte og mottakerens opprinnelige ble samlet inn som beskrevet i protokollen og veid umiddelbart for våtvekt, tørket ved 60 °C i 48 timer og veide deretter igjen for tørrvekten. Et økt våt-til-tørr vektforhold vil være en indikasjon på lungeødem. Våre resultater indikerer at den transplanterte hadde en signifikant økning i våt-til-tørr-vektforhold sammenlignet med donorens eller mot…

Discussion

I denne rapporten har vi grepet inn på flere kritiske trinn i en rottelungetransplantasjonsprotokoll for å optimalisere prosedyren. Mens ulike mansjettteknikker for rottelungetransplantasjon har blitt rapportert 1,2,3,4,5,6,7,8,9,15<…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ingen.

Materials

12 Gauge angio-catheter BD 382277
14 Gauge angio-catheter B. Braun 4251717-02
16 Gauge angio-catheter B. Braun 4252586-02
18 Gauge angio-catheter B. Braun 4251679-02
20 Gauge angio-catheter B. Braun 4252527-02
4-0 silk suture Surgical Specialties Corp. SP116
6-0 nylon suture AD Surgical S-N618R13
7-0 nylon suture AD Surgical S-N718SP13
8-0 nylon suture AD Surgical XXS-N807T6
Betadine Spray Avrio Health L.P UPC 367618160039
Clippers VWR MSPP-023326
Castroviejo micro dissecting spring scissors Roboz Surgical Instrument Co RS-5668
Dumont #5 – Fine Forceps Fine Science Tools 11254-20
Electrocautery Macan MV-7A
Endotracheal intubation kit Kent Scientific ETI-MSE
Forceps Fine Science Tools 11027-12
Halsted-mosquito hemostat Roboz Surgical Instrument Co RS-7112
Heparin Fresnius Medical Care C504701
Insulin syringe Life Technologies B328446
Isoflurane Piramal Critical Care NDC 66794-017-25
Isopropyl Alcohol Swabs BD 326895
Ketamine Hikma Pharmaceuticals PLC NDC 0413-9505-10
Dieffenbach Bulldog Clamp World Precision Instruments WPI14117
Needle holder/Forceps, Curved Micrins MI1542
Needle holder/Forceps, Straight Micrins MI1540
Perfadex Plus (Organ Preservation Solution) XVIVO Perfusion AB REF# 19950
PhysioSuite Kent Scientific PS-MSTAT-RT Used to check SpO2 and heartbeat
Retractor Roboz Surgical Instrument Co RS-6560
Saline PP Pharmaceuticals LLC NDC 63323-186-10
Scissors Fine Science Tools 14090-11
SomnoSuite Small Animal Anesthesia System Kent Scientific SS-MVG-Module
Sterile  Cotton Gauze Pad Fisherbrand 22-415-469
Surgical Microscope Leica M500-N w/ OHS
Syringe 5mL BD 309646
Vannas-Tubingen Spring Scissors Fine Science Tools 15008-08
Xylazine Korn Pharmaceuticals Corp NDC 59399-110-20
Yasargil Clamp Aesculap, Inc FT351T Used to clamp bronchus
Yasargil Clamp Aesculap, Inc FT261T Used to clamp hilum
Yasargil Clamp Applicator Aesculap, Inc FT484T

References

  1. Mizuta, T., Kawaguchi, A., Nakahara, K., Kawashima, Y. Simplified rat lung transplantation using a cuff technique. Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 97 (4), 578-581 (1989).
  2. Zhai, W., et al. Simplified rat lung transplantation by using a modified cuff technique. Journal of Investigative Surgery. 21 (1), 33-37 (2008).
  3. Goto, T., et al. Simplified rat lung transplantation using a new cuff technique. Annals of Thoracic Surgery. 93 (6), 2078-2080 (2012).
  4. Guo, H., et al. Improvements of surgical techniques in a rat model of an orthotopic single lung transplant. European Journal of Medical Research. 18, 1 (2013).
  5. Tian, D., Shiiya, H., Sato, M., Nakajima, J. Rat lung transplantation model: modifications of the cuff technique. Annals of Translational Medicine. 8 (6), 407 (2020).
  6. Rajab, T. K. Anastomotic techniques for rat lung transplantation. World Journal of Transplantation. 8 (2), 38-43 (2018).
  7. Reis, A., Giaid, A., Serrick, C., Shennib, H. Improved outcome of rat lung transplantation with modification of the nonsuture external cuff technique. Journal of Heart and Lung Transplantation. 14 (2), 274-279 (1995).
  8. Sugimoto, R., et al. Experimental orthotopic lung transplantation model in rats with cold storage. Surgery Today. 39 (7), 641-645 (2009).
  9. Santana Rodriguez, N., et al. Technical modifications of the orthotopic lung transplantation model in rats with brain-dead donors. Archivos de Bronconeumología. 47 (10), 488-494 (2011).
  10. Gielis, J. F., et al. A murine model of lung ischemia and reperfusion injury: tricks of the trade. Journal of Surgical Research. 194 (2), 659-666 (2015).
  11. Rajab, T. K. Techniques for lung transplantation in the rat. Experimental Lung Research. 45 (9-10), 267-274 (2019).
  12. Iskender, I., et al. Effects of Warm Versus Cold Ischemic Donor Lung Preservation on the Underlying Mechanisms of Injuries During Ischemia and Reperfusion. Transplantation. 102 (5), 760-768 (2018).
  13. Lin, X., et al. Five-year update on the mouse model of orthotopic lung transplantation: Scientific uses, tricks of the trade, and tips for success. Journal of Thoracic Disease. 4 (3), 247-258 (2012).
  14. Song, J. A., et al. Standardization of bronchoalveolar lavage method based on suction frequency number and lavage fraction number using rats. Toxicological Research. 26 (3), 203-208 (2010).
  15. Chang, J. E., Kim, H. J., Yi, E., Jheon, S., Kim, K. Reduction of ischemia-reperfusion injury in a rat lung transplantation model by low-concentration GV1001. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 50 (5), 972-979 (2016).
  16. De Backer, J. W., et al. Study of the variability in upper and lower airway morphology in Sprague-Dawley rats using modern micro-CT scan-based segmentation techniques. Anatomical Record. 292 (5), 720-727 (2009).
  17. Nelson, K., et al. Method of isolated ex vivo lung perfusion in a rat model: lessons learned from developing a rat EVLP program. Journal of Visualized Experiments. (96), e52309 (2015).
  18. Suzuki, H., Fan, L., Wilkes, D. S. Development of obliterative bronchiolitis in a murine model of orthotopic lung transplantation. Journal of Visualized Experiments. (65), e3947 (2012).
  19. Jia, Y., et al. Treatment of acute lung injury by targeting MG53-mediated cell membrane repair. Nature Communications. 5, 4387 (2014).
  20. Kim, J. L., et al. Pegylated-Catalase Is Protective in Lung Ischemic Injury and Oxidative Stress. Annals of Thoracic Surgery. , (2020).
  21. Beal, E. W., et al. D-Ala(2), D-Leu(5)] Enkephalin Improves Liver Preservation During Normothermic Ex Vivo Perfusion. Journal of Surgical Research. 241 (2), 323-335 (2019).
  22. Akateh, C., et al. Intrahepatic Delivery of Pegylated Catalase Is Protective in a Rat Ischemia/Reperfusion Injury Model. Journal of Surgical Research. 238, 152-163 (2019).
check_url/62445?article_type=t&slug=a-rat-lung-transplantation-model-warm-ischemiareperfusion-injury

Play Video

Cite This Article
Lee, Y. G., Kim, J., Palmer, A. F., Reader, B. F., Ma, J., Black, S. M., Whitson, B. A. A Rat Lung Transplantation Model of Warm Ischemia/Reperfusion Injury: Optimizations to Improve Outcomes. J. Vis. Exp. (176), e62445, doi:10.3791/62445 (2021).

View Video