Summary

Isolering av mus megakaryocyt progenitorer

Published: May 20, 2021
doi:

Summary

Denna metod beskriver rening genom flöde cytometri av MEP och MKp från möss lårben, skenben och bäckenhålorna ben.

Abstract

Benmärg megakaryocyter är stora polyploida celler som säkerställer produktionen av blodplättar. De uppstår från hematopoetiska stamceller genom megakaryopoiesis. De sista stadierna av denna process är komplexa och klassiskt involvera bipotenta Megakaryocyte-Erythrocyte Progenitors (MEP) och den enpotenta Megakaryocyte Progenitors (MKp). Dessa populationer föregår bildandet av äkta megakaryocyter och som sådan kan deras isolering och karakterisering möjliggöra robust och opartisk analys av megakaryocytbildning. Detta protokoll presenterar i detalj förfarandet för att samla hematopoetiska celler från mus benmärg, berikning av hematopoetiska stamceller genom magnetisk utarmning och slutligen en cell sortering strategi som ger mycket renade MEP och MKp populationer. För det första samlas benmärgsceller in från lårbenet, skenbenet och även iliaca-krönet, ett ben som innehåller ett stort antal hematopoetiska stamceller. Användningen av iliaca crest ben ökar drastiskt det totala antalet erhållna per mus och bidrar därmed till en mer etisk användning av djur. En magnetisk härstamning utarmning optimerades med hjälp av 450 nm magnetiska pärlor vilket möjliggör en mycket effektiv cell sortering efter flöde cytometri. Slutligen presenterar protokollet märknings- och gatingstrategin för sortering av de två högt renade megakaryocytprogenitorpopulationerna: MEP (LinSca-1c-Kit+CD16/32CD150+CD9dim) och MKp (Lin Sca-1c-Kit+CD16/32CD150+CD9bright ). Denna teknik är lätt att implementera och ger tillräckligt cellulärt material för att utföra i) molekylär karakterisering för en djupare kunskap om deras identitet och biologi, ii) in vitro differentieringsanalyser, som kommer att ge en bättre förståelse för mekanismerna för mognad av megakaryocyter, eller iii) in vitro-modeller av interaktion med deras mikromiljö.

Introduction

Blodplättar produceras av megakaryocyter. Dessa stora polyploida celler finns i benmärgen och som för alla blodkroppar härrör de från hematopoetiska stamceller (HSC)1. Den klassiska produktionsvägen för megakaryocyter i benmärgen härstammar från HSC och involverar generering av olika föregångare som gradvis begränsar deras differentieringspotential2. Den första föregångaren som undertecknar åtagandet för den megakaryocytiska härstamningen är Megakaryocyte-Erythrocyte Progenitor (MEP), en bipotent stamfader som kan producera både erytroidceller och megakaryocyter3,4,5. Parlamentsledamoten producerar sedan en enpåtagen föregångare/föregångare (MKp) som kommer att differentieras till en mogen megakaryocyt som kan producera trombocyter. De mekanismer som är involverade i genereringen av dessa föregångare, liksom deras differentiering och mognad i megakaryocyter är komplexa och endast delvis förstådda. Dessutom är det fortfarande oklart om europaparlamentets befolkning är heterogen när det gäller differentieringspotential och den inneboende engagemangsnivån för dessa celler. För att dechiffrera dessa processer är det viktigt att få (eller ha tillgång till) renade populationer av parlamentsledamot och MKp för fina molekylära och encelliga analyser.

Flera studier har visat särskilda kombinationer av cellytans markörer för identifiering av stamceller som är engagerade i den megakaryocytiska härstamningen i musen6,7,8. Från dessa utformades en metod som möjliggör rening av parlamentsledamot och MKp från möss. Denna metod optimerades för att erhålla celler i tillräckligt antal och kvalitet för ett stort antal analyser. Med etiska överväganden i åtanke, och för att minimera antalet djur som deltar i experimenten, framkallade vi att skörda benmärgen från lårbenet och skenbenet, och även från iliaca crest. Detta ben innehåller en hög frekvens och antal hematopoetiska stamceller och skadas för det mesta under lång benskörd. Presenteras här är en detaljerad metod för tillförlitlig insamling av detta ben.

Det andra optimeringskriterierna är att producera högt renade cellpopulationer. Fluorescerande aktiverad cellsortering (FACS) är en valfri metod för att erhålla renade populationer av celler av intresse. Låga utbyten uppnås dock när cellpopulationen av intresse är mycket sällsynt. Anrikningsförfaranden är därför nödvändiga. I detta protokoll valdes en negativ urvalsprocedur med hjälp av magnetiska pärlor.

Protocol

Protokoll som gällde djur har utförts i enlighet med CREMEAS Committee on the Ethics of Animal Experiments vid universitetet i Strasbourg (Comité Régional d’Ethique en Matière d’Expérimentation Animale Strasbourg. Tillståndsnummer: E67-482-10). 1. Insamling av musben Offra djuret i enlighet med de institutionella riktlinjerna.OBS: De data som presenteras i detta manuskript erhölls från C57Bl/6 möss av 8 till 12 veckor gamla. Antalet celler som erhålls och frekvensen av…

Representative Results

Fenotypisk analys av de celler som identifierats som MEP och MKp utfördes av flöde cytometri. Cellerna var märkt med fluorescence konjugerade antikroppar mot CD41a och CD42c, klassiska markörer för megakaryocytic och trombocyt härstamningar. Båda markörerna uttrycktes av cellerna i MKp-populationen medan dessa markörer ännu inte har upptäckts vid ytan av cellerna i den mesiska befolkningen (figur 4Ai,4Aii). Polyploidy är ett kännetecken för megakaryocyter. DNA-…

Discussion

Metoden som beskrivs i detta dokument möjliggör extraktion och rening av mus mep och MKp. En viktig parameter i optimeringen av protokollet var att få tillräckligt antal celler som skulle vara kompatibla med de flesta molekylär- och cellbaserade analyser. Den allmänna praxisen för musben insamling för hematopoetisk cell extraktion består vanligtvis i att skörda både lårbenet och skenbenet i varje mus. Bäckenbenet, en annan källa till hematopoetetiskt material, förbises därför ofta. Anledningen till att i…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka Monique Freund, Catherine Ziessel och Ketty för tekniskt stöd. Detta arbete stöddes av ARMESA (Association de Recherche et Développement en Médecine et Santé Publique) och av Grant ANR-17-CE14-0001-01 till Henri.de la. Salle.

Materials

21-gauge needles BD Microlance 301155
7AAD Sigma-Aldrich A9400
Antibody Gr-1-biotin eBioscience 13-5931-85 Magnetic depletion
Antibody B220-biotin eBioscience 13-0452-85 Magnetic depletion
Antibody Mac-1-biotin eBioscience 13-0112-85 Magnetic depletion
Antibody CD3e-biotin eBioscience 13-0031-85 Magnetic depletion
Antibody CD4-biotin eBioscience 13-9766-82 Magnetic depletion
Antibody CD5-biotin eBioscience 13-0051-85 Magnetic depletion
Antibody CD8a-biotin eBioscience 13-0081-85 Magnetic depletion
Antibody TER119-biotin eBioscience 13-5921-85 Magnetic depletion
Antibody CD127-biotin eBioscience 13-1271-85 Magnetic depletion
Antibody CD45-FITC eBioscience 11-0451-85 Cell sorting
Antibody CD45-PE eBioscience 12-0451-83 Cell sorting
Antibody TER119-APC eBioscience 17-5921-83 Cell sorting
Antibody CD45-PECy7 eBioscience 25-0451-82 Cell sorting
Antibody CD45-biotin eBioscience 13-0451-85 Cell sorting
Antibody CD9-FITC eBioscience 11-0091-82 Cell sorting
Antibody  c-kit-APC eBioscience 17-1171-83 Cell sorting
Antibody Sca-1-PE eBioscience 12-5981-83 Cell sorting
Antibody CD16/32-PE eBioscience 12-0161-83 Cell sorting
Antibody CD150-PECy7 eBioscience 25-1502-82 Cell sorting
Culture medium StemSpan-SFEM Stemcell technologies #09650
Dissection pad Fisher Scientific 10452395
DPBS Life Technologies 14190-094
Ethanol vWR Chemicals 83813.360
Forceps Euronexia P-120-AS
Glass pasteur pipette Dutscher 42011
Magnet :  DynaMag-5 Thermo Fisher Scientific 12303D
Magnetic beads: Dynabeads Sheep Anti-Rat IgG Thermo Fisher Scientific 11035
Megacult Stemcell technologies #04970
MethoCult SF M3436 Stemcell technologies #03436
Newborn Calf Serum Dutscher 50750-500
Red Cell Lysis solution BD Bioscience 555899
Scalpels Fisher Scientific 12308009
Scissors Euronexia C-165-ASB
Sterile 1 mL syringes BD Bioscience 303172
Sterile 15mL tubes Sarstedt 62.554.502
Sterile 5mL polypropylene tubes Falcon 352063
Sterile 5mL polystyrene tubes Falcon 352054
Sterile tubes with 70µm cell strainer cap Falcon 352235
Sterile petri dish Falcon 353003
Streptavidin-APC-Cy7 BD Biosciences 554063 Cell sorting
Tube roller Benchmark Scientific R3005

References

  1. Kaushansky, K. Historical review: megakaryopoiesis and thrombopoiesis. Blood. 111 (3), 981-986 (2008).
  2. Akashi, K., Traver, D., Miyamoto, T., Weissman, I. L. A clonogenic common myeloid progenitor that gives rise to all myeloid lineages. Nature. 404 (6774), 193-197 (2000).
  3. Debili, N., et al. Characterization of a bipotent erythro-megakaryocytic progenitor in human bone marrow. Blood. 88 (4), 1284-1296 (1996).
  4. Forsberg, E. C., Serwold, T., Kogan, S., Weissman, I. L., Passegué, E. New evidence supporting megakaryocyte-erythrocyte potential of flk2/flt3+ multipotent hematopoietic progenitors. Cell. 126 (2), 415-426 (2006).
  5. Vannucchi, A. M., et al. Identification and characterization of a bipotent (erythroid and megakaryocytic) cell precursor from the spleen of phenylhydrazine-treated mice. Blood. 95 (8), 2559-2568 (2000).
  6. Pronk, C. J., et al. Elucidation of the phenotypic, functional, and molecular topography of a myeloerythroid progenitor cell hierarchy. Cell Stem Cell. 1 (4), 428-442 (2007).
  7. Nakorn, T. N., Miyamoto, T., Weissman, I. L. Characterization of mouse clonogenic megakaryocyte progenitors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (1), 205-210 (2003).
  8. Ng, A. P., et al. Characterization of thrombopoietin (TPO)-responsive progenitor cells in adult mouse bone marrow with in vivo megakaryocyte and erythroid potential. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (7), 2364-2369 (2012).
  9. Strassel, C., et al. Hirudin and heparin enable efficient megakaryocyte differentiation of mouse bone marrow progenitors. Experimental Cell Research. 318 (1), 25-32 (2012).
  10. Brouard, N., et al. A unique microenvironment in the developing liver supports the expansion of megakaryocyte progenitors. Blood Advances. 1 (21), 1854-1866 (2017).
  11. Boscher, J., Gachet, C., Lanza, F., Léon, C. Megakaryocyte culture in 3D methylcellulose-based hydrogel to improve cell maturation and study the impact of stiffness and confinement. Journal of Visualized Experiments:JOVE. , (2021).
  12. Sanjuan-Pla, A., et al. Platelet-biased stem cells reside at the apex of the haematopoietic stem-cell hierarchy. Nature. 502 (7470), 232-236 (2013).
  13. Haas, S., et al. Inflammation-driven fast-track differentiation of HSCs into the megakaryocytic lineage. Experimental Hematology. 42 (8), 14 (2014).
  14. Shin, J. Y., Hu, W., Naramura, M., Park, C. Y. High c-Kit expression identifies hematopoietic stem cells with impaired self-renewal and megakaryocytic bias. The Journal of Experimental Medicine. 211 (2), 217-231 (2014).
check_url/62498?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Kimmerlin, Q., Tavian, M., Gachet, C., Lanza, F., Brouard, N. Isolation of Mouse Megakaryocyte Progenitors. J. Vis. Exp. (171), e62498, doi:10.3791/62498 (2021).

View Video