Summary
在农村或与军事相关的情景中,开放全球眼损伤可能连续多日得不到治疗,导致失明。需要治疗,以尽量减少视力损失。在这里,我们详细介绍了器官文化开放地球伤害模型。通过这个模型,可以正确评估稳定这些伤害的潜在治疗方法。
Abstract
开放地球损伤的视觉效果不佳,往往导致永久性视力丧失。部分原因是在农村环境的伤害和医疗干预与无法随时获得眼科护理的军事医学应用之间拖延了一段时间。未经治疗的损伤在眼睛失去防水密封后容易受到感染,以及因血管内低血压而丧失组织生存能力。治疗暂时密封开放球损伤,如果适当开发,也许能够恢复眼内压力和防止感染,直到适当的眼科护理是可能的。为了促进产品开发,这里详细介绍了使用前段器官培养开放地球损伤平台,用于跟踪至少 72 小时受伤后的治疗性能。猪前段组织可在定制设计的器官培养皿中保持,并按生理内压举行。穿刺伤害可以使用气动供电系统创建,该系统能够产生直径高达 4.5 mm 的伤害大小,类似于与军事相关的伤害大小。受伤后72小时可观察到眼内压力损失,确认适当的损伤感应和眼睛防水密封的损失。治疗效果可以通过在损伤感应后应用于眼睛,然后跟踪眼内压力多日来跟踪。此外,前段损伤模型适用于广泛使用的功能和生物学跟踪前段生理学的方法,如评估透明度、眼部力学、角膜上皮健康和组织生存能力。总的来说,这里描述的方法是开发生物材料疗法的必要下一步,用于在眼科护理不易获得时暂时密封开放性地球损伤。
Introduction
开放球 (OG) 受伤可能导致永久性视力丧失时,不治疗或至少稳定后受伤1。然而,在偏远地区,如农村地区或军事场景中的战场上,眼科干预的渠道不易获得,因此出现延误的情况十分普遍。当治疗不是现成的时,目前的护理标准是用硬盾保护眼睛,直到医疗干预是可能的。在军事医学方面,这种延迟目前高达24小时,但预计在未来的作战行动中,在无法进行空中疏散的城市环境中,这一延迟将增加到72小时。这些延迟可以更长的时间在农村,偏远的民用应用,在那里获得眼科干预是有限的5,6。未经治疗的OG损伤极易感染和失去眼内压力(IOP),由于眼睛的防水密封被损害7,8。IOP的丧失会影响组织的生存能力,如果损伤和治疗之间的延迟时间过长,任何医疗干预都不太可能恢复视力。
为了在眼科专家到达之前开发易于应用的密封OG损伤治疗方法,以前开发了10,11台式OG损伤模型。有了这个模型,高速伤害在全猪的眼睛,而IOP被压力传感器捕获。然后,可以应用治疗方法来评估他们密封OG损伤现场12的能力。然而,由于该模型使用整个猪眼,它只能评估即时治疗性能,无法跟踪长期性能跨越可能的72小时窗口,其中治疗必须稳定损伤部位,直到患者达到特殊护理。因此,一个前段器官培养(ASOC)OG损伤模型被开发并详细在本协议作为一个平台,跟踪长期治疗性能13。
ASOC是一种广泛使用的技术,用于维持前段的血管组织,如角膜,在核化后多星期14,15,16,17。前段在生理IOP下维持,通过按生理流动速率给液体灌注,并在ASOC设置18、19期间保留负责调节IOP的组织——气管网状外流区域。ASOC平台可以保持组织生理,诱导OG损伤使用气动驱动的设备,应用治疗,并跟踪损伤稳定至少72小时后受伤13。
在此,该协议提供了使用 ASOC 平台的分步方法。首先,它详细说明了如何建立和构建ASOC平台。接下来,协议详细说明了如何无能地解剖前段并维护导管网格,然后在定制的器官培养皿中设置前段组织。然后,它详细说明了如何创建开放式地球伤害,并在受伤后立即应用治疗。最后,协议提供了一个概述的特征参数,可用于此方法,评估眼睛的功能,机械和生物特性,以及伤害稳定程度。总体而言,该模型为加快产品开发、稳定和治疗开放式地球损伤以及改善损伤后视力不良预后提供了急需的平台。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
在执行此协议之前,请注意,在研究和培训中使用动物有法律和道德要求。如果活体动物被用作眼组织来源,请在开始前获得当地道德或法律权威机构(IACUC 或道德委员会等)的批准。如果在获得动物使用批准方面有任何问题,请不要继续。我们之前确定并报告说,新鲜的猪眼获得和使用在24小时验尸相比,最接近体内生理学和表现良好,这些研究(动物技术,泰勒,德克萨斯州,美国)10,13。在整个协议中,没有使用活的动物,使用组织供应商在24小时内获得组织。
注:在组织到达之前,制作器官培养皿(补充议定书1)、夹紧环(补充议定书1)、餐具支架(补充议定书1)、压力传感器数据收集设置(补充议定书2)和气动穿刺平台(补充议定书3)。消毒盘子、工具和用品,并准备工作区域。有一个非无菌区域对眼睛进行大解剖是有用的,因为它们通常附带结缔的额外轨道组织。在开放、干净的工作表面上执行这些第一步,然后无所事事地将眼睛转移到 BSC II 柜中进行微剖(柜子 #1)。最佳地,用于微解剖的 BSC II 机柜与餐盘装配件 BSC II 柜(柜式 #2)分离,以最大限度地减少气流并最大化工作空间。设置显微解剖柜,配有解剖显微镜和可视化工作表面(从柜子中伸出的相机或目镜)。
1. 消毒步骤、耗材(详情请参阅材料表)和设置
- 准备和气体消毒以下项目(每只眼睛1套):ASOC盘,夹环,两个流体连接器与O环,两个18G针头,四个螺丝,两个长度PE-100管(长度的距离应足够长,从孵化器内的盘延伸到注射器泵和压力传感器数据收集设置), 两个 18 G 90° 弯曲针头,两个三向阀门。
- 准备并自动保存以下套件。
- 准备和自动解剖微解剖仪器套件,包含一对细钳,一对Vannas剪刀,一对中齿钳,一对大剪刀,棉签,以及剃刀刀片或手术刀。
- 准备和自动化的组装仪器套件,包含一对中齿钳,一对手术剪刀和一把L键。
- 准备和自动化每日套件(数量:每天一个文化),包含一个L键,以收紧夹环,每天根据需要的菜肴。
- 自动切割四个 100 mL 烧饼,用于消毒和存储眼睛和前段。
- 自动将穿刺对象解密。
- 收集以下无菌物品:培养皿(1盘/眼)、纱布(1-2/眼)、菜架、20 mL注射器(1/眼)、10 mL注射器(1/眼)、尼龙注射器过滤器(1/眼睛)。
- 准备无菌介质: DMEM 与 4% FBS, 1x 古塔马克斯, 1x 根塔米辛, 1x 抗生素抗肌菌 (AA; 约 30-40 mL 完整媒体/眼睛).
- 准备 AA-PBS: PBS 与 1x AA (+500 mL).。
- 准备总解剖工具包:干净干燥的大手术剪刀和钳子。
- 设置非无菌解剖工作空间:从总解剖工具包收集用品,将发能的猪眼浸入PBS和冰上,手术窗帘,100 mL烧嘴与PBS。铺好手术窗帘和大解剖所需的物品。
- 设置无菌解剖工作空间:从微解剖仪器套件、无菌纱布、解剖显微镜、贝塔丁溶液、无菌PBS、无菌介质、四个消毒的100mL烧饼、无菌培养皿中收集耗材。无能地转移到 BSC II 机柜 #1。设置柜子,可视化解剖显微镜上的眼睛。
- 设置 ASOC 组装工作空间:收集气体消毒套件(菜包和盖套件)、装配仪表套件、无菌介质、餐具支架、无菌培养皿、无菌注射器和注射器过滤器。无能地转移到 BSC II 机柜 #2。设置餐柜进行菜装。
- 当眼睛稳定并准备穿刺(72小时后设置),无能地将其转移到BSC II柜。设置OG损伤感应工作空间:气动动力损伤感应装置(装配详细 附在补充3)和实验室杰克和交叉跟踪小维斯举行ASOC盘。
2. 组织解剖
- 使用非无菌解剖工作空间准备猪组织。
- 从当地的屠宰场、动物研究或供应商采购被传染的猪眼。在交货期间保持对浸在 PBS 中的冰的眼睛,并在收到时立即使用。
- 切掉外层组织,修剪结膜,只留下角膜壳和视神经。在非无菌条件下用大手术剪刀和钳子在毛解剖工具包中执行解剖。
- 将眼睛放回冰上新鲜的 PBS 中,直到对实验设置所需的所有眼睛进行初步/粗切解剖。
- 将眼睛浸入 10% 贝塔丁溶液中,在封闭容器中浸入 2 分钟,并无所作为地转移到 BSC II 柜 #1。在无菌条件下执行所有后续工作,以最大限度地减少设置过程中的污染。
- 无菌解剖前段。
- 在β丁溶液中2分钟后,将眼睛转移到无菌AA-PBS的三次连续洗涤中,以去除眼部表面多余的β丁溶液,同时保持眼部组织的不育性。洗三次后,将组织保持在AA-PBS中,直到进一步使用。
- 用剃刀刀片/刀片和弯曲的剪刀将眼睛切开。将眼睛放在AA-PBS浸泡的纱布上,在眼睛赤道附近用无菌剃须刀刀片或手术刀创建切口(前侧为60/40,前侧为40)。使用弯曲的手术剪刀,将眼睛分隔,以隔离前眼(角膜的一半)。
注:前段周围的切口需要连续,以防止在器官培养中设置后产生流体泄漏的硬囊中锯齿状粗糙的边缘。 - 使用微丝作为铲子,从前部分挖掘活泼的幽默。使用显微镜从前段取出镜头。将前段留在 AA-PBS 中,直到进一步解剖步骤。
注:所有将被解剖的眼睛都可以在此步骤中保持,并在解剖过程的其余部分逐一进行。 - 通过解剖显微镜,逐渐将虹膜切回虹膜根部,直至可见透镜网状(TM)。TM 是一种色素组织,由围绕角膜壳的纤维组成。小心地切入虹膜根部,将暴露组织下的 TM 深度。
- 在虹膜周围切开 360°,其深度与初始切入组织时相同,以暴露整个 TM 区域。根据需要清理覆盖 TM 的任何剩余虹膜。
- 修剪TM后部的辅助身体残留物,只留下一条薄薄的组织带到TM区域(约1毫米)。
- 将解剖前段 (AS) 放在媒体中,直到在 BSC II 柜 #2 中进一步设置 ASOC。
注:如果单个用户正在执行解剖和器官培养菜组装,则所有眼睛都可以在 ASOC 设置之前保持此时。
3. 在器官培养皿中设置前段
- 将单个 AS 放到带有 AS 倒置(杯具)的培养皿中。使用棉签,湿在介质和轻轻地在角膜中心涂抹,以去除任何色素。用钳子握住眼睛和同样的拭子,擦拭硬囊周围的棉签,以去除额外的色素。
- 倒置 AS,将菜底部分放在高架区域的顶部,将角膜与盘中的高架区域围绕。将夹紧环放在新放置的 AS 的顶部。
- 将四个螺丝放入相应的孔中,将环与环下的 AS 保持到位。用 L 键轻轻拧紧螺丝。
注:在整个实验过程中,紧固步骤每天都会发生,因此此处初始收紧的目标是确保媒体不会泄漏,同时避免打破夹紧环。 - 配上无菌的培养皿套装,将顶部放在菜上,并倒置设置。连接菜架。将带有 O 环的流体连接器连接到盘底的螺纹端口。
- 在一个流体连接器上,连接一个 18 G 90° 弯曲针头、一个管子长度、一个 18 G 针头轮毂、一个尼龙注射器过滤器、一个三向阀和一个充满介质的 20 mL 注射器。
- 在第二个流体连接器上,连接一个 18 G 90° 度弯曲针头、管子长度、18 G 针头轮毂、三向阀门以及无菌 10 mL 注射器的桶部分(这将充当从 ASOC 捕获液体和气泡的储液库)。
- 通过向注射器适当打开三向阀门,使用第 3.5 步确定的流体连接器端口轻轻推动介质穿过系统,以充气 AS,填充管中的介质,并最终将储液池填充。
注:如果介质泄漏到 ASOC 盘中,则 AS 的夹紧环无法足够紧密地固定。 - 通过轻轻地将介质推入盘中并倒置盘以推出气泡并推入储层,去除气泡。
- 放菜,直立。将培养皿的底部放在支架脚下,小心不要缠住管子。
4. 启动前段器官文化
- ASOC现已做好孵化准备。将ASOC菜放入细胞培养孵化器(37 °C,5% CO2)。确保压力传感器上方孵化器中的ASOC盘的高度为已知,并考虑准确计算IOP(补充协议4)。
- 将管线引导到 37 °C、5% CO2 孵化器门的底部,以免干扰门的打开和关闭。将 20 mL 注射器连接到以 2.5 μL/min 为设置的注射器泵上。
- 将管线与储层一起放置在压力传感器仪上。将侧三向阀连接到压力传感器设置,同时将 PBS 流过管道,以避免气泡进入管线。
注:系统建立后,从储层中清空PBS,以减少器官培养期间微生物生长导致水库污染的可能性。 - 首先确保存在用于保存数据文件的 microSD 卡,从而启动 IOP 数据收集。然后,打开压力传感器设置开始数据收集。
注 :《补充议定书》第2条提供了设置压力传感器数据收集装置的详细信息。
5. ASOC的日常维护
- 在 ASOC 有 24 小时的平衡后,从 37 °C、5% CO2 孵化器中取出盘子,并将其放入 BSC II 柜中。
注:在压力数据采集方面,当 ASOCs 从孵化器中取出(高度变化)并在机柜中调整时,这些时间段看起来像是峰值。 - 检查佩特里盘子上每道菜下是否有泄漏。如果存在,请检查盘下是否有紧密的流体连接,如有必要,请重新收紧。使用无菌 L 键检查盘顶部是否有泄漏,以拧紧夹紧环中的螺丝。
注:AS硬化组织将压缩和减少厚度24小时,夹紧环将需要拧紧。 - 把媒体从盘子里吸好。
注:气管网状体正在过滤被泵入ASOC的介质中的流体。因此,媒体将出现在ASOC菜沿边缘。 - 重复步骤 3.7 和 3.8 以消除任何捕获的气泡。
- 在注射器泵上重新填充注射器,确保注射器泵运行,并确认灌注阀与 ASOC 的对齐。将 ASOC 菜肴返回到 37 °C、5% CO2 孵化器。
注:最好每天执行这些步骤。但是,使用 20 mL 的介质启动体积、ASOC 盘井体积和 2.5 μL/分钟的泵速率应该足以让系统运行数天不受干扰。
6. 使用气动动力穿刺装置的OG损伤感应
注:气动穿刺装置的建造详见 补充议定书3。OG 损伤在 IOP 稳定后诱发,通常在培养 3 天后发生。可接受的 IOP 值基于生理 IOP 的 5-20 mmHg,可以通过评估 IOP 数据文件或在压力测量系统中设置 LED 指标来确定,如 补充协议 2所述。
- 准备 BSC II 柜,以备 OG 损伤感应,详见第 1.10 步。将穿刺平台连接到压缩的空气线路。将无菌穿刺对象连接到夹头。
注:空气压缩机可用于为设备供电,但如果压力大于 50 psi,储罐压缩空气或内置实验室线路就足够了。 - 将穿刺平台上的压力调节器设置为 50 psi,以便对直径达 4.5 mm 的物体施加足够的穿刺力。将交叉跟踪的 vise 放置在穿刺平台前的实验室插孔上,以便在受伤感应期间保持 ASOC 盘。
- 从 37 °C、5% CO2 孵化器中取出 ASOC 设置,并在取下盖子并将其放在与穿刺平台垂直的交叉跟踪边缘(图 2)中。保持前段的香水,但关闭三向阀端口到压力传感器,以防止过度加压损坏传感器。
- 将活塞臂扩展到最大距离,并将角膜顶点放置在穿刺物体的 1 毫米以内。收回活塞臂,使前段离穿刺物体近1厘米。
注:此距离已优化为高效伤害感应,而不会击中 ASOC 盘。 - 打开穿刺装置并打开电磁阀,并在设备上打开第二个开关,从而点燃该穿刺装置。要收回设备,请再次按下第二个开关,从眼睛中取出穿刺装置。通过目视检查和从伤害现场泄漏的介质验证适当的伤害感应。
- 从小盘中取出 ASOC 盘;将盖子放回盘面组装上,将流体线打开到压力传感器上。将 ASOC 放回 37 °C、5% CO2 孵化器中。
注:此时,治疗可以应用于 AS,以评估其密封 OG 损伤的疗效。
7. 将 ASOC 从文化中删除
注:根据端点分析(参见 代表结果 ,了解可能的端点方法),AS 需要保持在 ASOC 盘中充气,而其他方法则要求 AS 组织与培养室隔离。下面的方法描述了如何从器官培养皿中取出 AS 并删除其余设置。
- 从 37 °C、5% CO2 孵化器中取出 ASOC 菜肴。将三向阀关闭至注射器和储层,并断开管子与系统连接。丢弃注射器、储层和过滤器。将三向阀门、管子和针头轮毂放在一个单独的容器中进行清洗和消毒。
- 断开针头与盘底的流体连接。解开流体连接器和 O 环。将所有物品放放在容器中进行清洗和消毒。
- 使用 L 键从夹紧环中取出四个螺丝。小心地取下夹紧环。
- 使用钳子,从盘子中取出 AS,并根据端点分析和图像,放置固定或适当的生物危害废物。
8. IOP 数据分析
- 将 microSD 卡连接到计算机,以删除包含最新实验运行中数据 的.txt 文件。
注:该文件在控制微控制器的代码中被命名,并且应针对每个实验进行更新(参见补充协议 2)。 - 将数据导入电子表格。
- 将数据组织成 12 列:11 个压力传感器通道中每个通道的时间(最小)和 mV 信号。前十个通道对应于十个ASOC实验设置。最终的传感器信号是用于传感器作为控制通道向空气开放,以确认 mV 信号不会因输入信号的变化而改变。情节控制通道与确认 mV 信号的时间始终一致。
- 使用每个传感器初始校准产生的斜坡拦截方程将十个通道的 mV 信号转换为 mmHg(参见补充协议 4)。
- 绘图时间(转换为天数以简化数据解释)与确定 IOP 在实验时间过程中如何波动的十个通道中的每一个。
- 确定数据中关键点的平均 IOP 值,以便更轻松地比较每个值之间的值,以及它们在 OG 损伤诱导前后的更改方式。平均 2-3 小时的数据,每 24 小时间隔确定 IOP 在 ASOC 的每一天。
注:代表 IOP 结果见图 4。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
通过光学相干断层扫描 (OCT) 拍摄的图像显示为 OG 受伤的眼睛,以说明成功的损伤感应外观。图3显示图像控制和OG受伤的AS组织受伤后立即受伤和72小时后。显示两种视图:通过伤害部位的横截面图像和自上而下的最大强度投影 (MIP),以可视化图像的表面积。控制眼睛显示角膜没有明显的损伤,而明显的损伤可以位于OG受伤后穿过整个角膜。从 MIP 中,很明显,损伤在形状和大小上是不规则的,但伤害大小确实会降低到 72 小时以上。以前,这种效果已被证明是显着的一些伤害大小测试13。
本协议中描述的 OG 损伤模型的主要数据输出是实验设置过程中的眼内压力。数据记录在毫伏单位作为每个压力传感器的输出,可以通过校准转换成 mmHg(补充协议 4)。示例 IOP 数据与实验时间过程为被认为可以接受的眼睛和其他被认为不可用的眼睛提供(图 4A)。从压力跟踪数据中,眼睛在培养物中24小时后被连接到传感器上,但IOP在培养物的前72小时继续波动。器官培养中AS组织的生理IOP约为8-10 mmHg,因此在值稳定下来(5-20 mmHg)后,2倍和1/2倍的范围被确定为可用IOP值的门。只有处于该范围的眼睛才允许在协议的其余部分使用。从以前的实验中,我们取得了90%的成功率,在ASOC设置的眼睛稳定在所需的范围内(图4B)。
还提供了因OG损伤和治疗干预而改变的IOP变化结果(图4C,D)。OG 损伤感应后,压力应显著下降,并保持这种状态,直到组织从 ASOC 中取出(图 4C)。如果受伤后感应后的眼睛不会降低压力,则表明没有诱导成功的伤害,因为如果眼睛的防水密封受到损害,IOP 应减少。然而,较小的损伤大小可能会自我愈合,这可能导致 IOP 恢复。如果在OG损伤诱导后对眼睛进行治疗,可以在ASOC期间跟踪IOP的恢复情况。这一概念通过数据显示适用于 2.4 毫米 OG 损伤的迪尔马邦德胶粘剂(图 4D)来证明。显示有治疗和不治疗的五个单独的ASOC实验的平均结果,很明显,治疗正在增加IOP。这种方法可以测量修复 IOP 的治疗效果,并跟踪该压力是否在关键的 72 h 后 OG 损伤中恢复。
此外,ASOC 协议具有广泛的特征端点,可适应最终用户的实验要求。在培养过程中,可以每天甚至每小时收集离开眼睛的外流介质,可用于跟踪在ASOC期间、OG损伤诱导后或治疗后发生的蛋白质水平变化。例如,明胶酶造影术以前曾用于检测基质金属蛋白酶水平,以跟踪伤口愈合和组织重塑20。通过传统的免疫造血化学方法从培养物中去除组织,以评估组织生存能力21,22,跟踪角膜23,24,或抗体为基础的染色任何感兴趣的蛋白质25,26的病理生理变化后,可以进一步的生物端点。
功能角膜指标也可以从ASOC中保持的眼睛中获取。康奈尔上皮的完整性可以通过荧光素眼渍和图像采集使用蓝光源27,28进行评估。从培养中去除后,角膜组织可以通过简单的图像采集13来评估透明度。传统的眼部成像也可以进行评估组织结构有或没有治疗干预。如图3所示,OCT图像可以通过角膜创建横截面图像,并且可以非侵入性地捕获,从而有可能在保持培养组织的同时进行图像采集。其他成像模式,如狭缝灯显微镜、超声波或体内共聚焦显微镜,也可以用于获取进一步的解剖信息。
最后,可以捕获前段的机械性能评估,以了解 OG 损伤或后续治疗对基础组织的影响。虽然仅 IOP 数据收集就突出了眼睛防水密封的完整性是如何受到损害的,但我们之前已经表明,可以测量额外的测试指标,以找出额外的机械特征10,11。眼部符合性,一个混合的机械属性,描述如何眼内压力变化,由于通货膨胀(体积的变化/压力的变化),可以用注射器泵测量注入突然少量的液体到眼睛,并记录由此产生的压力增加与压力传感器。更高的符合性表明组织不太僵硬,可用于跟踪治疗材料特性与基础角膜组织的差异。可以测量和计算来自眼睛或传统流出设施的泄漏率,以确定每单位压力20,29留下眼睛的精确流速。最后,关于治疗测试,可以测量突发压力,以确定眼睛在治疗失败之前所能承受的最大压力。这可以用来比较性能与未受伤的眼睛或跟踪性能的变化与时间12,13。
图1:ASOC设置图。 眼睛被放在定制的器官文化菜肴中,并用夹环保持到位。ASOC介质通过阀门A通过注射器泵注入并连接到压力传感器,随后的数据采集与阀门B。 每个阀门中的打开端口以蓝色突出显示,而黄色表示封闭通道。 请单击此处查看此图的较大版本。
图2:OG损伤设置概述。 (A) 气动动力损伤装置设置。从左到右,压缩空气通过压缩空气线引入设备,通过调节器将压力设定在 50 psi,由压力表测量。两个电磁阀连接到线性执行器,以直接展开/缩回持有穿刺物体的钻头夹头。Vise 位于穿刺装置前,以在适当的 x、y、z 定位处保持眼睛。(B) 代表ASOC被放置在伤害感应装置前。 补充议定书3详细介绍了该装置及其建造情况。 请单击此处查看此图的较大版本。
图3:ASOC OG损伤实验的光学相干断层扫描图像。图像显示控制眼睛(未受伤)和OG受伤的眼睛立即受伤后受伤和72小时受伤后。视图显示为横截面通过角膜(左侧)和自上而下的最大强度投影视图角膜表面(右侧)。这个数字是经斯奈德等人许可改编的,请点击这里查看这个数字的较大版本。
图4:ASOC实验的IOP代表结果。 (A) ASOC设置前72小时原始IOP数据。眼睛在 72 h 下被刺穿,因此对前 3 天的数据进行评估,以确定 IOP 是否稳定在可接受的 IOP 范围内(5-20 mmHg)。从代表性的结果看,五只眼睛中有三只在可接受的 IOP 范围内,而一只眼睛的 IOP 过高,一只眼睛的 IOP 过低(落在地块上突出的黄色区域之外)。(B) 稳定 IOP 为 n = 50 ASOC 设置从以前的实验,以证明典型的成功率与ASOC方法。(C) 与受伤诱导后 72 小时的三种不同的 OG 损伤大小相比, 未受伤眼睛的 IOP 。IOP的损失是显而易见的,没有复苏的迹象。(D) 受伤的 IOP 结果与用德马邦胶粘剂治疗的损伤相比。虽然错误率很高,由于一些眼睛被密封,而另一些没有,该方法可以跟踪变化到IOP在72小时后受伤期间。这个数字是经斯奈德等人许可改编的。请单击此处查看此图的较大版本。
补充文件。 请点击这里下载这些文件。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
ASOC OG 伤害平台有关键步骤,应予以强调,以提高使用该方法时成功的可能性。首先,在前段解剖过程中,保持导管网格是必不可少的,但要正确处理是具有挑战性的。如果 TM 中断,眼睛将无法维持生理压力,也不符合实验使用的资格标准。建议首先在正常条件下进行解剖过程,而不是引入额外的无菌技术挑战,直到获得适当的解剖。其次,在设置 ASOC 菜肴时,必须足够紧,以防止液体泄漏,但足够松动,以防止损坏 ASOC 菜肴。如果眼睛没有紧紧固定,液体会通过非生理手段从眼睛泄漏出来,导致很少或根本没有 IOP。但是,按住眼睛的夹紧环是塑料的,如果过于紧固,很容易被打破。有必要在2天内将眼睛夹住,因为环下的硬组织在前24小时会压缩和松开组织。建议在第 1 天感觉到对紧固的阻力之前收紧环,并在此之后,在文化中重新收紧到 24 小时后的类似水平,以获得最佳效果。
第三,在使用此模型时,必须充分了解流体流在何时向导的位置。每个 ASOC 盘都连接到多个三向阀门,以引导来自注射器泵或 10 mL 注射器储液器的流体流,并连接到压力传感器。设置过程的不同实例要求阀门以这样的方式定位,以便冲洗眼睛的气泡或保护压力传感器免受过度加压。在关键协议步骤之前,仍应注意了解什么是开放/关闭的。最后,在整个 ASOC OG 伤害协议中保持不育至关重要,但在多步骤、多日过程中很容易丢失。灌注介质含有高水平的抗生素和抗菌剂,以防止这种情况,眼睛在设置之前被淹没在βdine中,以防止污染,但仍有关键步骤,最有可能出错。在菜肴的初始设置中,避免与眼睛接触,同时拧紧夹紧环,并在不使用时随时盖上盘子的盖子。更可能的暴露步骤是在日常 ASOC 维护期间。在生物安全柜中执行这些常规步骤很重要,即使看起来它们可以在不从孵化器中移开眼睛的情况下迅速完成。仔细遵循协议并保持良好的无菌技术应尽量减少为期 6 天的 ASOC 实验中的污染风险。
总体而言,ASOC OG 伤害平台是独特的其他方法,从开放地球伤害由于两个关键标准。首先是损伤诱导方法。所使用的高速气动损伤装置能诱导高力损伤。这允许诱导伤害的对象不是特别尖锐,也不是小直径。这更密切地模仿形状不规则的伤害:高速弹片伤人引起的爆炸装置30,31。与以往使用激光、针头或手术刀刀片制造清洁、精确的损伤几何形状 32、33、34的方法相比,气动装置可以轻松安装不规则形状的弹片模拟物体,以制造更具挑战性的损伤愈合。其次,ASOC 方法允许跟踪初始伤害诱导后的伤害进展和治疗性能。能够跟踪到72小时是不可能的,在以前开发的台式OG受伤平台10,11,12,是开发这个协议背后的动机。事实上,在ASOC13中,角膜内皮的细胞生存能力至少维持了1周。ASOC 是唯一可以完成这种长期定性的方法,而无需过渡到昂贵的活体实验。
ASOC 平台的主要应用是双重的。首先,该模型可用于进一步描述开放地球伤害的特征,特别是考虑到它们如何随时间而变化。在先前的研究中,OG损伤的特点是这样,伤口愈合观察到超过72小时后受伤13。进一步跟踪不同伤害大小、形状、72 小时甚至更长时间发生的生物变化的位置,将告知 OG 受伤后必须做出的关键医疗决策。某些损伤参数可能允许角膜自我修复,或者如果在前 24 小时内不应用干预,其他参数可能更严重。当医疗用品或后送资源有限时,这些信息对于分流患者将是无价的。
其次,ASOC OG 平台可用于开发和测试产品开发。对于此应用,器官文化平台可以填补多个角色。在初始产品开发过程中,可以用一系列产品配方测试更短的时间框架,以确定什么最有效。器官培养系统可以配置为更大的高通量,为这个应用程序与额外的注射器泵,以超越十个同时实验可能与系统详细在这里。对于更精炼的产品,可以评估更长的时间点,以评估 72 小时或可能更长的性能。最后,在评估可能永久治疗OG损伤的生物活性产品时,可能进行伤口愈合评估,而不是暂时稳定。
但是,应考虑 ASOC OG 平台的局限性。首先,虽然该模型允许对治疗进行长期评估,但它缺少角膜壳外的所有眼睛组织,如虹膜和透镜。这些额外的组织可能受到OG损伤的影响,并可能在损伤进展中发挥作用。同样,一个孤立的前段缺少免疫反应元素,这些元素在从ASOC模型过渡到随后的动物测试时将包括在内。其次,该模型仅适用于造成角膜OG损伤和潜在的肢体OG损伤。使用此方法不能诱导硬化或后 OG 损伤。然而,许多这些伤害类型导致视网膜损伤,使任何暂时稳定治疗不太可能防止视力丧失35,36。最后,只有跟踪模型在受伤后达到 72 小时的伤害。ASOC已被用于其他应用程序超过2周,所以模型可能可用于这些应用程序,但它还没有测试在这个时候37,38,39。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
作者声明没有相互竞争的利益。本文所表达的观点是作者的观点,并不反映美国陆军医疗部、陆军部、国防部或美国政府的官方政策或立场。
Acknowledgments
这些材料基于美国国防部通过与临时角膜修复采购计划(美国陆军医疗物资开发局)签订的机构间协议(#19-1006-IM)支持的工作。
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
10-32 Polycarbonate straight plug, male threaded pipe connector | McMaster-Carr | 51525K431 | |
10-32 Socket cap screw, ½" | McMaster-Carr | 92196A269 | |
10 mL syringe | BD | 302995 | |
20 mL syringe | BD | 302830 | |
Anti-Anti | Gibco | 15240-096 | |
Ball-End L key | McMaster-Carr | 5020A25 | |
Betadine | Fisher Scientific | NC1696484 | |
BD Intramedic PE 160 Tubing | Fisher Scientific | 14-170-12E | |
Cotton swabs | Puritan | 25-8061WC | |
DMEM media | ATCC | 30-2002 | |
FBS | ATCC | 30-2020 | |
Fine forceps | World Precision Instruments | 15914 | |
Gauze | Covidien | 8044 | |
Gentamicin | Gibco | 15710-064 | |
Glutamax | Gibco | 35050-061 | |
High temperature silicone O-ring, 2 mm wide, 4 mm ID | McMaster-Carr | 5233T47 | |
Large forceps | World Precision Instruments | 500365 | |
Large surgical scissors | World Precision Instruments | 503261 | |
Medium toothed forceps | World Precision Instruments | 501217 | |
Nail (puncture object) | McMaster-Carr | 97808A503 | |
Nylon syringe filters | Fisher | 09-719C | |
PBS | Gibco | 10010-023 | |
Petri dish (100 mm) | Fisher | FB0875713 | |
Polycarbonate, three-way, stopcock with male luer lock | Fisher | NC9593742 | |
Razor blade | Fisher | 12-640 | |
Stainless steel 18 G 90 degree angle dispensing needle | McMaster-Carr | 75165A81 | |
Stainless steel 18 G straight ½'’ dispensing needle | McMaster-Carr | 75165A675 | |
Sterile 100 mL beakers with lids | VWR | 15704-092 | |
Vannas scissors | World Precision Instruments | WP5070 |
References
- Hilber, D., Mitchener, T. A., Stout, J., Hatch, B., Canham-Chervak, M. Eye injury surveillance in the US Department of Defense, 1996-2005. American Journal of Preventive Medicine. 38, 1 Suppl 78-85 (2010).
- Linde, A. S., McGinnis, L. J., Thompson, D. M. Multi-Battle domain-perspective in military medical simulation trauma training. Journal of Trauma & Treatment. 06 (04), (2017).
- Riesberg, J., Powell, D., Loos, P.
The loss of the golden hour. Special Warfare. , 49-51 (2017). - Townsend, S., Lasher, W. The US Army in Multi-Domain Operations 2028. (525-3-1), US Army. (2018).
- Blanch, R. J., Bishop, J., Javidi, H., Murray, P. I. Effect of time to primary repair on final visual outcome after open globe injury. The British Journal of Ophthalmology. 103 (10), 1491-1494 (2019).
- Lesniak, S. P., et al. Characteristics and outcomes of delayed open globe repair. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 53 (14), 4954 (2012).
- Loporchio, D., Mukkamala, L., Gorukanti, K., Zarbin, M., Langer, P., Bhagat, N. Intraocular foreign bodies: A review. Survey of Ophthalmology. 61 (5), 582-596 (2016).
- Jonas, J. B., Budde, W. M. Early versus late removal of retained intraocular foreign bodies. Retina. 19 (3), Philadelphia, Pa. 193-197 (1999).
- Watson, P. G., Jovanovik-Pandova, L. Prolonged ocular hypotension: would ciliary tissue transplantation help. Eye. 23 (10), 1916-1925 (2009).
- Snider, E. J., et al. Development and characterization of a benchtop corneal puncture injury model. Scientific Reports. 10 (1), 4218 (2020).
- Snider, E. J., et al. An open-globe porcine injury platform for assessing therapeutics and characterizing biological effects. Current Protocols in Toxicology. 86 (1), 98 (2020).
- Snider, E. J., Cornell, L. E., Gross, B., Zamora, D. O., Boice, E. N. Assessment of commercial off-the-shelf tissue adhesives for sealing military relevant corneal perforation injuries. Military Medicine. , (2021).
- Snider, E. J., Boice, E. N., Butler, J. J., Gross, B., Zamora, D. O. Characterization of an anterior segment organ culture model for open globe injuries. Scientific Reports. 11 (1), 8546 (2021).
- Erickson-Lamy, K., Rohen, J. W., Grant, W. M. Outflow facility studies in the perfused human ocular anterior segment. Experimental Eye Research. 52 (6), 723-731 (1991).
- Johnson, D. H., Tschumper, R. C. The effect of organ culture on human trabecular meshwork. Experimental Eye Research. 49 (1), 113-127 (1989).
- Johnson, D. H., Tschumper, R. C. Human trabecular meshwork organ culture. A new method. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 28 (6), 945-953 (1987).
- Snider, E. J., et al. Improving stem cell delivery to the trabecular meshwork using magnetic nanoparticles. Scientific Reports. 8 (1), 12251 (2018).
- Llobet, A., Gasull, X., Gual, A. Understanding trabecular meshwork physiology: a key to the control of intraocular pressure. Physiology. 18 (5), 205-209 (2003).
- Goel, M., Picciani, R. G., Lee, R. K., Bhattacharya, S. K. Aqueous humor dynamics: A review. The Open Ophthalmology Journal. 4, 52-59 (2010).
- Snider, E. J., et al. Development of a porcine organ-culture glaucoma model mimicking trabecular meshwork damage. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 62 (3), 18 (2021).
- Ren, H., Wilson, G.
Apoptosis in the corneal epithelium. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 37 (6), 1017-1025 (1996). - Komuro, A., Hodge, D. O., Gores, G. J., Bourne, W. M. Cell death during corneal storage at 4°C. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 40 (12), 2827-2832 (1999).
- Crespo-Moral, M., García-Posadas, L., López-García, A., Diebold, Y. Histological and immunohistochemical characterization of the porcine ocular surface. PLOS One. 15 (1), e0227732 (2020).
- Wilson, S. E., Medeiros, C. S., Santhiago, M. R. Pathophysiology of corneal scarring in persistent epithelial defects after prk and other corneal injuries. Journal of Refractive Surgery. 34 (1), Thorofare, NJ. 59-64 (2018).
- Auw-Haedrich, C., et al. Immunohistochemical expression of epithelial cell markers in corneas with congenital aniridia and ocular cicatrizing pemphigoid. Acta Ophthalmologica. 89 (1), 47-53 (2011).
- Lyngholm, M., et al. Immunohistochemical markers for corneal stem cells in the early developing human eye. Experimental Eye Research. 87 (2), 115-121 (2008).
- Bandamwar, K. L., Papas, E. B., Garrett, Q. Fluorescein staining and physiological state of corneal epithelial cells. Contact Lens & Anterior Eye: The Journal of the British Contact Lens Association. 37 (3), 213-223 (2014).
- Bandamwar, K. L., Garrett, Q., Papas, E. B. Sodium fluorescein staining of the corneal epithelium: What does it mean at a cellular level. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 52 (14), 6496 (2011).
- Sherwood, J. M., Reina-Torres, E., Bertrand, J. A., Rowe, B., Overby, D. R. Measurement of outflow facility using iPerfusion. PLoS One. 11 (3), (2016).
- Weichel, E. D., Colyer, M. H., Ludlow, S. E., Bower, K. S., Eiseman, A. S. Combat ocular trauma visual outcomes during operations iraqi and enduring freedom. Ophthalmology. 115 (12), 2235-2245 (2008).
- Colyer, M. H., et al. Delayed intraocular foreign body removal without endophthalmitis during Operations Iraqi Freedom and Enduring Freedom. Ophthalmology. 114 (8), 1439-1447 (2007).
- Geggel, H. S., Maza, C. E. Anterior stromal puncture with the Nd:YAG laser. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 31 (8), 1555-1559 (1990).
- Matthews, A., et al. Indentation and needle insertion properties of the human eye. Eye. 28 (7), 880-887 (2014).
- Rau, A., et al. The mechanics of corneal deformation and rupture for penetrating injury in the human eye. Injury. 49 (2), 230-235 (2018).
- Agrawal, R., Ho, S. W., Teoh, S. Pre-operative variables affecting final vision outcome with a critical review of ocular trauma classification for posterior open globe (zone III) injury. Indian Journal of Ophthalmology. 61 (10), 541 (2013).
- Knyazer, B., et al. Prognostic factors in posterior open globe injuries (zone-III injuries). Clinical & Experimental Ophthalmology. 36 (9), 836-841 (2008).
- Tan, J., et al. C3 Transferase-Expressing scAAV2 Transduces Ocular Anterior Segment Tissues and Lowers Intraocular Pressure in Mouse and Monkey. Molecular Therapy - Methods & Clinical Development. 17, 143-155 (2020).
- Bhattacharya, S. K., Gabelt, B. T., Ruiz, J., Picciani, R., Kaufman, P. L. Cochlin Expression in Anterior Segment Organ Culture Models after TGFβ2 Treatment. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 50 (2), 551-559 (2009).
- Zhu, W., Godwin, C. R., Cheng, L., Scheetz, T. E., Kuehn, M. H. Transplantation of iPSC-TM stimulates division of trabecular meshwork cells in human eyes. Scientific Reports. 10 (1), 2905 (2020).