Summary

Hale vene transsektion blødning model i fuldt bedøvet hæmofili A mus

Published: September 30, 2021
doi:

Summary

Den raffinerede halevenetranssektion (TVT) blødningsmodel i bedøvede mus er en følsom in vivo-metode til vurdering af hæmofil blødning. Denne optimerede TVT-blødningsmodel bruger blodtab og blødningstid som endepunkter, forfiner andre modeller og undgår død som et endepunkt.

Abstract

Haleblødningsmodeller er vigtige værktøjer i hæmofiliforskning, specifikt til vurdering af prokoagulerende virkninger. Overlevelsesmodellen for halevenetranssektion (TVT) er blevet foretrukket i mange indstillinger på grund af følsomhed over for klinisk relevante doser af FVIII, mens andre etablerede modeller, såsom haleclipsmodellen, kræver højere niveauer af prokoagulerende forbindelser. For at undgå at bruge overlevelse som endepunkt udviklede vi en TVT-model, der etablerede blodtab og blødningstid som endepunkter og fuld bedøvelse under hele eksperimentet. Kort fortalt placeres bedøvede mus med halen nedsænket i tempereret saltvand (37 ° C) og doseres med testforbindelsen i højre laterale halevene. Efter 5 min krydses den venstre laterale halevene ved hjælp af en skabelonguide, halen returneres til saltvandet, og alle blødningsepisoder overvåges og registreres i 40 minutter, mens blodet opsamles. Hvis der ikke opstår blødning 10 min, 20 min eller 30 min efter skaden, udfordres blodproppen forsigtigt ved at tørre snittet to gange med en våd gazepind. Efter 40 minutter kvantificeres blodtab ved mængden af hæmoglobin, der blødte ind i saltvandet. Denne hurtige og relativt enkle procedure resulterer i ensartede og reproducerbare blødninger. Sammenlignet med TVT-overlevelsesmodellen bruger den en mere human procedure uden at gå på kompromis med følsomheden over for farmakologisk intervention. Desuden er det muligt at bruge begge køn, hvilket reducerer det samlede antal dyr, der skal opdrættes, i overensstemmelse med principperne i 3R’er. En potentiel begrænsning i blødningsmodeller er den stokastiske karakter af hæmostase, som kan reducere reproducerbarheden af modellen. For at imødegå dette sikrer manuel blodpropforstyrrelse, at blodproppen udfordres under overvågning, hvilket forhindrer primær (blodplade) hæmostase i at stoppe blødningen. Denne tilføjelse til kataloget over blødningsskademodeller giver mulighed for at karakterisere prokoagulerende virkninger på en standardiseret og human måde.

Introduction

Dyremodeller er afgørende for at forstå patogenesen af hæmofili og udvikle og teste behandlingsregimer og terapier. Faktor VIII knock-out mus (F8-KO) er en meget anvendt model til undersøgelse af hæmofili A 1,2. Disse mus rekapitulerer nøglefunktioner i sygdommen og er blevet brugt i vid udstrækning til udvikling af behandlinger, såsom rekombinante FVIII-produkter 3,4,5 og genterapistrategier 6,7.

Der er forskellige blødningsskademodeller til evaluering af de farmakologiske virkninger af forskellige hæmostatiske forbindelser in vivo. En af disse koagulationsmodeller er overlevelsesmodellen for halevenetranssektion hos mus 8,9,10,11,12,13,14, der måler hæmofile mus evne til at overleve ekssanguination efter haletranssektion. Denne metode blev introduceret for mere end fire årtier siden15 og bruges stadig 9,16,17. Modellen bruger dog overlevelse som endepunkt og kræver observation af dyrene over en periode på op til 24 timer, hvor dyrene er ved bevidsthed og dermed kan opleve smerte og angst.

Blødningsmodeller af kortere varighed og under fuld bedøvelse er tidligere beskrevet, såsom haleclipsmodellen (også kendt som halespidsen)8,18,19,20,21,22,23,24,25,26,27,28 . Ikke desto mindre kræver disse modeller doser af prokoagulerende forbindelser (f.eks. FVIII) langt højere end dem, der administreres klinisk29 for en fuldstændig normalisering af blodtab efter blødningsudfordringen. En anden skadesmodel under anæstesi, vena saphena blødningsmetoden, er følsom over for lavere doser af prokoagulerende forbindelser30, men kræver et højt niveau af eksperimentatorintervention, da blodpropperne skal forstyrres ofte (i modsætning til 3 gange i den præsenterede model).

Standardisering i retning af en fælles protokol til test af nye prokoagulerende forbindelser ville i høj grad lette datasammenligningen mellem laboratorier 31,32,33. I TVT-modeller er der endnu ikke en fælles aftale om studerede endepunkter (blodtab 7,26, blødningstid 9,34 og overlevelsesrate35,36), og eksperimentel længde varierer mellem undersøgelse13.

Vores primære mål er at beskrive og karakterisere en optimeret model med høj reproducerbarhed, muligheden for at studere on-demand samt en profylaktisk behandling, følsomhed over for farmakologisk intervention svarende til overlevelsesmodellen, men ikke ved at bruge død eller nærdød som endepunkter. For at mindske smerte og angst bør dyrene ikke være bevidste under blødning, og der skal gennemføres et mere etisk endepunkt37.

Haleclipsmodeller udføres generelt i en af to varianter, enten amputering af halespidsen, f.eks. amputation af 1-5 mm 18,19,20,21,23,24 eller i en mere alvorlig variant transekteret med en halediameter omkring 1-3 mm 8,22,25 . Dette medfører en kombineret arteriovenøs blødning, da laterale og dorsale vener og ventral arterie normalt afskæres, og generelt jo større amputationen er, desto lavere er følsomheden over for en prokoagulerende forbindelse. Da halespidsen er amputeret, udsættes den arteriovenøse skade desuden uden noget modsat væv; således er det i det mindste i teorien forskelligt fra de mest almindelige hæmofile blødninger.

Som navnet antyder, er det kun venen, der er skadet i halevenetranssektionsmodeller som beskrevet i dette papir, hvilket resulterer i en udelukkende venøs blødning. Da karret ikke er helt afskåret, forventes skaden at være mindre end i amputationsmodellerne, og vævet omkring snittet, som en blodprop kan klæbe til, bevares. Derudover er der lavere blodtryk i venen i modsætning til arterien. Disse faktorer bidrager til en øget følsomhed i forhold til amputationsmodeller, således at normalisering af blødning kan opnås med klinisk relevante doser substitutionsterapi, fx med rFVIII i hæmofili A, hvilket er nyttigt til evaluering af størrelsen og holdbarheden af virkningerne af prokoagulerende behandling 26,38,39.

Protocol

Alle procedurer, der er beskrevet i denne protokol, er godkendt af Dyrevelfærdsorganet hos Novo Nordisk A/S og Dyreforsøgstilsynet, Ministeriet for Fødevarer, Landbrug og Fiskeri. Den optimerede 40 minutters metode inkluderer anæstesi og doseringstid i designet (figur 1). Hæmofile mus af begge køn mellem 10-16 uger er nødvendige for denne procedure. 1. Forberedelser før undersøgelsen Forbered doseringsopløsningerne i de korrekte koncentrationer…

Representative Results

For at vurdere anvendeligheden af den optimerede model blev der udført en undersøgelse i F8-KO (C57BL genetisk baggrund) mus administreret med en kommercielt tilgængelig rekombinant faktor VIII substitutionsterapi (rFVIII); fire forskellige doser blev testet: 1 IE/kg, 5 IE/kg, 10 IE/kg og 20 IE/kg. Desuden testede vi den tilsvarende køretøjs (negative) kontrol i F8-KO-mus og vildtype (WT) gruppe ved hjælp af C57BL-mus som en positiv kontrolgruppe for at vurdere responsområdet i modellen. <p class="jove_content…

Discussion

Denne optimerede metode til halevenetranssektion (TVT) har flere fordele sammenlignet med TVT-overlevelsesmetoden. Dyrene bedøves fuldt ud i hele forsøgsperioden, hvilket gør musehåndtering lettere og øger dyrenes trivsel. I modsætning til TVT-overlevelsesmodellen er der ikke behov for observation natten over, og denne optimerede model giver mulighed for at måle blodtab og observere den nøjagtige blødningstid over 40 minutter. Også længere perioder med blødning hos bevidste dyr kan forårsage død ved ekssang…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Esther Bloem og Thomas Nygaard er anerkendt for støtte med målinger af FVIII i plasma. Bo Alsted er anerkendt for at tegne og bearbejde skabelonen og skæreblokkene.

Materials

#11 Scalpel blade Swann-Morton 503
15 mL centrifuge tubes Greiner Bio-One, Austria 188271
30 G needles connected to 300 µL precision (insulin) syringes for dosing BD Micro-Fine + U-100 insulin syringe 320830
Advate Takeda, Japan Recombinant factor VIII replacement therapy (rFVIII)
Alcohol pads 70% ethanol Hartmann, Soft-Zellin 999 979
Centrifuge Omnifuge 2.0 RS, Heraus Sepatech
Cutting template (Stainless steel) Self produced, you are welcomed to contact the authors for the exact drawings Supplementary Figure 2: Size specifications: 20 mm x 40 mm x 10 mm (L x B x H). Groove: 3 mm depth and 3 mm width; radius 1.5 mm
Erythrocytes (RBC) lysing solution Lysebio, ABX Diagnostics 906012
Gauze
Haematological analyser Sysmex CT-2000iv
Heating lamp on stand Phillips IR250
Heating pad with thermostat CMA model 150
Hemoglobin standards and controls – 8.81 mmol / l batch dependent HemoCue, Denmark HemoCue calibrator, 707037 Standards and controls are made from 2 different glasses of HemoCue calibrator. The value is determined against the International Reference Method for Hemoglobin (ICSH).
Isofluorane anaesthesia system complete with tubes, masks and induction box Sigma Delta Dameca
Isoflurane Baxter 26675-46-7
Magnifier with lights Eschenbach
Measuring template (Aluminum) Self produced, you are welcomed to contact the authors for the exact drawings Supplementary Figure 1: Size specifications: 20 mm x 40 mm x 10 mm (L x B x H). Groove: 2.5 mm depth and 2.5 mm width; radius 1.25 mm
Micropipettes + tips Finnpipette
Photometer Molecular Devices Corporation, CA, USA SpectraMax 340 photometer
Prism Software GraphPad, San Diego, CA, USA Version 9.0.1
Saline 0.9% NaCl Fresenius Kabi, Sweden 883264
Special tail marker block for TVT tail cut
Tail holder
Vacuum liquid suction Vacusafe comfort, IBS
Waterbath and thermostat TYP 3/8 Julabo

References

  1. Bi, L., et al. Targeted disruption of the mouse factor VIII gene produces a model of haemophilia A. Nature Genetics. 10 (1), 119-121 (1995).
  2. Bi, L., et al. Further characterization of factor VIII-deficient mice created by gene targeting: RNA and protein studies. Blood. 88 (9), 3446-3450 (1996).
  3. Stennicke, H. R., et al. A novel B-domain O-glycoPEGylated FVIII (N8-GP) demonstrates full efficacy and prolonged effect in hemophilic mice models. Blood. 121 (11), 2108-2116 (2013).
  4. Shapiro, A. D. Anti-hemophilic factor (recombinant), plasma/albumin-free method (octocog-alpha; ADVATE) in the management of hemophilia A. Vascular Health and Risk Management. 3 (5), 555-565 (2007).
  5. Recht, M., et al. Clinical evaluation of moroctocog alfa (AF-CC), a new generation of B-domain deleted recombinant factor VIII (BDDrFVIII) for treatment of haemophilia A: demonstration of safety, efficacy, and pharmacokinetic equivalence to full-length recombinant factor VIII. Haemophilia. 15 (4), 869-880 (2009).
  6. Miao, C. H., et al. CD4+FOXP3+ regulatory T cells confer long-term regulation of factor VIII-specific immune responses in plasmid-mediated gene therapy-treated hemophilia mice. Blood. 114 (19), 4034-4044 (2009).
  7. Milanov, P., et al. Engineered factor IX variants bypass FVIII and correct hemophilia A phenotype in mice. Blood. 119 (2), 602-611 (2012).
  8. Dumont, J. A., et al. Prolonged activity of a recombinant factor VIII-Fc fusion protein in hemophilia A mice and dogs. Blood. 119 (13), 3024-3030 (2012).
  9. Pan, J., et al. Enhanced efficacy of recombinant FVIII in noncovalent complex with PEGylated liposome in hemophilia A mice. Blood. 114 (13), 2802-2811 (2009).
  10. Liu, T., et al. Improved coagulation in bleeding disorders by Non-Anticoagulant Sulfated Polysaccharides (NASP). Journal of Thrombosis and Haemostasis. 95 (1), 68-76 (2006).
  11. Brooks, A. R., et al. Glycoengineered factor IX variants with improved pharmacokinetics and subcutaneous efficacy. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 11 (9), 1699-1706 (2013).
  12. Baru, M., et al. Factor VIII efficient and specific non-covalent binding to PEGylated liposomes enables prolongation of its circulation time and haemostatic efficacy. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 93 (6), 1061-1068 (2005).
  13. Molina, E. S., Fujita, A., Sogayar, M. C., Demasi, M. A. A quantitative and humane tail bleeding assay for efficacy evaluation of antihaemophilic factors in haemophilia A mice. Haemophilia. 20 (6), 392-398 (2014).
  14. Broze, G. J., Yin, Z. F., Lasky, N. A tail vein bleeding time model and delayed bleeding in hemophiliac mice. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 85 (4), 747-748 (2001).
  15. Dejana, E., Callioni, A., Quintana, A., de Gaetano, G. Bleeding time in laboratory animals. II – A comparison of different assay conditions in rats. Thrombosis Research. 15 (1-2), 191-197 (1979).
  16. Girard, T. J., Lasky, N. M., Grunz, K., Broze, G. J. Suppressing protein Z-dependent inhibition of factor Xa improves coagulation in hemophilia A. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 17 (1), 149-156 (2019).
  17. Zhang, J. P., et al. Curing hemophilia A by NHEJ-mediated ectopic F8 insertion in the mouse. Genome Biology. 20 (1), 276 (2019).
  18. Sambrano, G. R., Weiss, E. J., Zheng, Y. W., Huang, W., Coughlin, S. R. Role of thrombin signalling in platelets in haemostasis and thrombosis. Nature. 413 (6851), 74-78 (2001).
  19. Tranholm, M., et al. Improved hemostasis with superactive analogs of factor VIIa in a mouse model of hemophilia A. Blood. 102 (10), 3615-3620 (2003).
  20. Mei, B., et al. Rational design of a fully active, long-acting PEGylated factor VIII for hemophilia A treatment. Blood. 116 (2), 270-279 (2010).
  21. Karpf, D. M., et al. Prolonged half-life of glycoPEGylated rFVIIa variants compared to native rFVIIa. Thrombosis Research. 128 (2), 191-195 (2011).
  22. Ivanciu, L., et al. A zymogen-like factor Xa variant corrects the coagulation defect in hemophilia. Nature Biotechnology. 29 (11), 1028-1033 (2011).
  23. Ostergaard, H., et al. Prolonged half-life and preserved enzymatic properties of factor IX selectively PEGylated on native N-glycans in the activation peptide. Blood. 118 (8), 2333-2341 (2011).
  24. Maroney, S. A., et al. Absence of hematopoietic tissue factor pathway inhibitor mitigates bleeding in mice with hemophilia. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (10), 3927-3931 (2012).
  25. Holmberg, H. L., Lauritzen, B., Tranholm, M., Ezban, M. Faster onset of effect and greater efficacy of NN1731 compared with rFVIIa, aPCC and FVIII in tail bleeding in hemophilic mice. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 7 (9), 1517-1522 (2009).
  26. Johansen, P. B., Tranholm, M., Haaning, J., Knudsen, T. Development of a tail vein transection bleeding model in fully anaesthetized haemophilia A mice – characterization of two novel FVIII molecules. Haemophilia. 22 (4), 625-631 (2016).
  27. Ferrière, S., et al. A hemophilia A mouse model for the in vivo assessment of emicizumab function. Blood. 136 (6), 740-748 (2020).
  28. Elm, T., et al. Pharmacokinetics and pharmacodynamics of a new recombinant FVIII (N8) in haemophilia A mice. Haemophilia. 18 (1), 139-145 (2012).
  29. Björkman, S. Prophylactic dosing of factor VIII and factor IX from a clinical pharmacokinetic perspective. Haemophilia. 9, 101-108 (2003).
  30. Pastoft, A. E., et al. A sensitive venous bleeding model in haemophilia A mice: effects of two recombinant FVIII products (N8 and Advate). Haemophilia. 18 (5), 782-788 (2012).
  31. Saito, M. S., et al. New approaches in tail-bleeding assay in mice: improving an important method for designing new anti-thrombotic agents. International Journal of Experimental Pathology. 97 (3), 285-292 (2016).
  32. Liu, Y., Jennings, N. L., Dart, A. M., Du, X. J. Standardizing a simpler, more sensitive and accurate tail bleeding assay in mice. World Journal of Experimental Medicine. 2 (2), 30-36 (2012).
  33. Greene, T. K., et al. Towards a standardization of the murine tail bleeding model. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 8 (12), 2820-2822 (2010).
  34. Cerullo, V., et al. Correction of murine hemophilia A and immunological differences of factor VIII variants delivered by helper-dependent adenoviral vectors. Molecular Therapy. 15 (12), 2080-2087 (2007).
  35. Shi, Q., et al. Factor VIII ectopically targeted to platelets is therapeutic in hemophilia A with high-titer inhibitory antibodies. Journal of Clinical Investigation. 116 (7), 1974-1982 (2006).
  36. Parker, E. T., Lollar, P. A quantitative measure of the efficacy of factor VIII in hemophilia A mice. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 89 (3), 480-485 (2003).
  37. Stokes, W. S. Reducing Unrelieved Pain and Distress in Laboratory Animals Using Humane Endpoints. ILAR Journal. 41 (2), 59-61 (2000).
  38. Stagaard, R., et al. Abrogating fibrinolysis does not improve bleeding or rFVIIa/rFVIII treatment in a non-mucosal venous injury model in haemophilic rodents. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 16 (7), 1369-1382 (2018).
  39. Stagaard, R., et al. Absence of functional compensation between coagulation factor VIII and plasminogen in double-knockout mice. Blood Advances. 2 (22), 3126-3136 (2018).
  40. Bolton-Maggs, P. H., Pasi, K. J. Haemophilias A and B. Lancet. 361 (9371), 1801-1809 (2003).
  41. Lloyd Jones, M., Wight, J., Paisley, S., Knight, C. Control of bleeding in patients with haemophilia A with inhibitors: a systematic review. Haemophilia. 9 (4), 464-520 (2003).
  42. Sixma, J. J., vanden Berg, A. The haemostatic plug in haemophilia A: a morphological study of haemostatic plug formation in bleeding time skin wounds of patients with severe haemophilia A. British Journal of Haematology. 58 (4), 741-753 (1984).
  43. Proulle, V., et al. Recombinant activated factor VII-induced correction of bleeding tendency in genetically engineered von Willebrand disease type 2B mice evaluated using new tail transection bleeding models. International Society on Thrombosis and Haemostasis Congress. , (2017).
  44. Rode, F., et al. Preclinical pharmacokinetics and biodistribution of subcutaneously administered glycoPEGylated recombinant factor VIII (N8-GP) and development of a human pharmacokinetic prediction model. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 16 (6), 1141-1152 (2018).
  45. Holmberg, H., et al. GlycoPEGylated rFVIIa (N7-GP) has a prolonged hemostatic effect in hemophilic mice compared with rFVIIa. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 9 (5), 1070-1072 (2011).
  46. Kawecki, C., et al. Posters Abstracts – Thrombin-mediated Activation of Factor VIII is Insufficient to Produce All Necessary Cofactor Activity in vivo. Research and Practice in Thrombosis and Haemostasis. 3, 1 (2019).
  47. Johansen, P., et al. In vivo effect of recombinant FVIIA (NOVOSEVEN®) and RFIX in a refined tail vein transection bleeding model in mice with haemophilia A and B: PO147-MON. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 13, (2015).
  48. Enoksson, M., et al. Enhanced potency of recombinant factor VIIa with increased affinity to activated platelets. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 18 (1), 104-113 (2020).
check_url/62952?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Carol Illa, A., Baumgarten, S., Danielsen, D., Larsen, K., Elm, T., Johansen, P. B., Knudsen, T., Lauritzen, B., Tranholm, M., Ley, C. D. Tail Vein Transection Bleeding Model in Fully Anesthetized Hemophilia A Mice. J. Vis. Exp. (175), e62952, doi:10.3791/62952 (2021).

View Video