Denne artikkelen beskriver en prøveprepareringsmetode basert på varmeinaktivering for å bevare endogene peptider som unngår nedbrytning etter mortem, etterfulgt av relativ kvantisering ved hjelp av isotopisk merking pluss LC-MS.
Peptidomikk kan defineres som kvalitativ og kvantitativ analyse av peptider i en biologisk prøve. Dens viktigste anvendelser inkluderer å identifisere peptidbiomarkører av sykdom eller miljøstress, identifisere nevropeptider, hormoner og bioaktive intracellulære peptider, oppdage antimikrobielle og nutraceutical peptider fra proteinhydrolysater, og kan brukes i studier for å forstå de proteolytiske prosessene. Det nylige fremskrittet innen prøvepreparering, separasjonsmetoder, massespektrometriteknikker og beregningsverktøy relatert til proteinsekvensering har bidratt til økningen av det identifiserte peptidnummeret og peptidomer karakterisert. Peptidomiske studier analyserer ofte peptider som er naturlig generert i celler. Her beskrives en prøveforberedelsesprotokoll basert på varmeinaktivering, som eliminerer proteaseaktivitet og ekstraksjon med milde forhold, så det er ingen peptidbindinger spalting. I tillegg er den relative mengden peptider ved hjelp av stabil isotopmerking ved reduktiv metylering av aminer også vist. Denne merkingsmetoden har noen fordeler ettersom reagensene er kommersielt tilgjengelige, billige sammenlignet med andre, kjemisk stabile og tillater analyse av opptil fem prøver i en enkelt LC-MS-kjøring.
“Omics” vitenskaper er preget av den dype analysen av et molekylsett, som DNA, RNA, proteiner, peptider, metabolitter, etc. Disse genererte store datasett (genomikk, transkripsjon, proteomikk, peptidomikk, metabolomikk, etc.) har revolusjonert biologien og ført til en avansert forståelse av biologiske prosesser1. Begrepet peptidomikk begynte å bli introdusert tidlig på 1900-tallet, og noen forfattere har referert til det som en gren av proteomikk2. Peptidomi har imidlertid distinkte særegenheter, hvor hovedinteressen er å undersøke det naturlig genererte peptidinnholdet under cellulære prosesser, samt karakterisering av biologisk aktivitet av disse molekylene3,4.
I utgangspunktet var bioaktive peptidstudier begrenset til nevropeptider og hormonpeptider gjennom Edman nedbrytning og radioimmunoassay. Imidlertid tillater disse teknikkene ikke en global analyse, avhengig av isolasjon av hvert peptid i høye konsentrasjoner, tid for generering av antistoffer, i tillegg til kryssreaktivitetsmulighet5.
Peptidomikkanalyse ble først gjort mulig etter flere fremskritt innen væskekromatografi koblet massespektrometri (LC-MS) og genomprosjekter som leverte omfattende datapooler for proteomikk/peptidomikkstudier6,7. Videre måtte det etableres en spesifikk peptidekstraksjonsprotokoll for peptidomer fordi de første studiene som analyserte nevropeptider globalt i hjerneprøver, viste at deteksjon ble påvirket av massiv nedbrytning av proteiner, som hovedsakelig forekommer i dette vevet etter 1 min post-mortem. Tilstedeværelsen av disse peptidfragmentene maskerte nevropeptidsignalet og representerte ikke peptidomet in vivo. Dette problemet ble løst hovedsakelig ved bruk av rask oppvarming av proteaser ved hjelp av mikrobølgebestråling, noe som drastisk reduserte tilstedeværelsen av disse artefaktfragmentene og tillot ikke bare identifisering av nevropeptidfragmenter, men avslørte tilstedeværelsen av et sett med peptider fra cytosyosolic, mitokondrie og kjerneproteiner, forskjellig fra degradome6,8,9.
Disse metodologiske prosedyrene tillot en utvidelse av peptidomet utover de kjente nevropeptidene, hvor hundrevis av intracellulære peptider generert hovedsakelig ved virkningen av proteasomer har blitt identifisert i gjær10, sebrafisk11, gnagervev12 og menneskelige celler13. Dusinvis av disse intracellulære peptidene har vist seg å ha både biologiske og farmakologiske aktiviteter14,15. Videre kan disse peptidene brukes som sykdomsbiomarkører og muligens ha klinisk betydning, som vist i cerebrospinalvæske fra pasienter med intrakraniell saccular aneurisme16.
For tiden, i tillegg til identifisering av peptidsekvenser, er det mulig gjennom massespektrometri å skaffe data om absolutt og relativ kvantifisering. I absolutt kvantasjon sammenlignes peptidnivåene i en biologisk prøve med syntetiske standarder, mens peptidnivåene i den relative mengden sammenlignes mellom to eller flere prøver17. Relativ kvantgering kan utføres ved hjelp av følgende tilnærminger: 1) “etikettfri”18; 2) in vivo metabolsk merking eller 3) kjemisk merking. De to siste er basert på bruk av stabile isotopiske former innlemmet i peptider19,20. I etikettfri analyse estimeres peptidnivåene ved å vurdere signalstyrken (spektraltall) under LC-MS18. Imidlertid kan isotopisk merking oppnå mer nøyaktige relative nivåer av peptider.
Mange peptotomiske studier brukte trimethylammonium butyrate (TMAB) merking reagenser som kjemisk merking, og mer nylig, Reduktiv metylering av aminer (RMA) med deuterated og ikke-deutered former for formaldehyd og natrium cyanoborohydrid reagenser har blitt brukt11,21,22. TMAB-etikettene er imidlertid ikke kommersielt tilgjengelige, og synteseprosessen er veldig arbeidskrevende. På den annen side, i RMA, er reagensene kommersielt tilgjengelige, billige sammenlignet med andre etiketter, prosedyren er enkel å utføre, og de merkede peptidene er stabile23,24.
Bruken av RMA innebærer å danne en Schiff-base ved å la peptidene reagere med formaldehyd, etterfulgt av en reduksjonsreaksjon gjennom cyanoborohydridet. Denne reaksjonen forårsaker dimetylering av frie aminogrupper på N-terminaler og lysin sidekjeder og monometylater N-terminal prolines. Hvordan prolinrester ofte er sjeldne på N-terminalen, er praktisk talt alle peptider med frie aminer på N-terminus merket med to metylgrupper23,24,25.
I de fleste peptidomikkstudier er et av de kritiske trinnene uten tvil prøvepreparatet som bør utføres nøye for å unngå tilstedeværelse av peptidfragmenter generert av proteaser etter noen minutter etter mortem. De første studiene på hjerneekstrakter utarbeidet fra ikke-mikrobølgede prøver viste et stort antall proteinfragmenter som skulle være til stede i mikrofiltreringene på 10 kDa. Ulike tilnærminger har blitt beskrevet for å unngå peptidspektra fra proteinforringelse: fokusert mikrobølgebestråling …
The authors have nothing to disclose.
Utviklingen og bruken av teknikkene beskrevet her ble støttet av Det brasilianske nasjonale forskningsrådets tilskudd 420811/2018-4 (LMC); Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo (www.fapesp.br) tilskudd 2019/16023-6 (LMC), 2019/17433-3 (LOF) og 21/01286-1 (MEME). Finansiører hadde ingen rolle i studiedesign, datainnsamling og analyse, beslutning om publisering eller utarbeidelse av artikkelen.
10 kDa cut-off filters | Merck Millipore | UFC801024 | Amicon Ultra-4, PLGC Ultracel-PL Membrane, 10 kDa |
Acetone | Sigma-Aldrich | 179124 | |
Acetonitrile | Sigma-Aldrich | 1000291000 | |
Ammonium bicarbonate | Sigma-Aldrich | 11213 | |
analytical column (EASY-Column) | EASY-Column | (SC200) | 10 cm, ID75 µm, 3 µm, C18-A2 |
Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate | Sigma-Aldrich | E10521 | MS-222 |
Fluorescamine | Sigma-Aldrich | F9015 | |
Formaldehyde solution | Sigma-Aldrich | 252549 | |
Formaldehyde-13C, d2, solution | Sigma-Aldrich | 596388 | |
Formaldehyde-d2 solution | Sigma-Aldrich | 492620 | |
Formic acid | Sigma-Aldrich | 33015 | |
Fume hood | Quimis | Q216 | |
Hydrochloric acid – HCl | Sigma-Aldrich | 258148 | |
LoBind-Protein retention tubes | Eppendorf | EP0030108116-100EA | |
LTQ-Orbitrap Velos | Thermo Fisher Scientific | LTQ Velos | |
Microwave oven | Panasonic | NN-ST67HSRU | |
n Easy-nLC II nanoHPLC | Thermo Fisher Scientific | LC140 | |
PEAKS Studio | Bioinformatics Solutions Inc. | VERSION 8.5 | |
Phosphate-buffered saline | Invitrogen | 3002 | tablets |
precolumn (EASY-Column) | Thermo Fisher Scientific | (SC001) | 2 cm, ID100 µm, 5 µm, C18-A1 |
Refrigerated centrifuge | Hermle | Z326K | for conical tubes |
Refrigerated centrifuge | Vision | VS15000CFNII | for microtubes |
Reversed-phase cleanup columns (Oasis HLB 1 cc Cartridge) | Waters | 186000383 | Oasis HLB 1 cc Cartridge |
Sodium cyanoborodeuteride – NaBD3CN | Sigma-Aldrich | 190020 | |
Sodium cyanoborohydride – NaBH3CN | Sigma-Aldrich | 156159 | |
Sodium phosphate dibasic | Sigma-Aldrich | S9763 | NOTE: 0.2 M PB= 0.1 M phosphate buffer pH 6.8 (26.85 mL of Na2HPO3 1M) plus 0.1 M phosphate buffer pH 6.8 (23.15 mL of NaH2PO3 1M) to 250 ml of water |
Sodium phosphate monobasic | Sigma-Aldrich | S3139 | |
Sonicator | Qsonica | Q55-110 | |
Standard peptide | Proteimax | amino acid sequence: LTLRTKL | |
Triethylammonium buffer – TEAB 1 M | Sigma-Aldrich | T7408 | |
Trifluoroacetic acid – TFA | Sigma-Aldrich | T6508 | |
Ultra purified water | Milli-Q | Direct-Q 3UV | |
Vacuum centrifuge | GeneVac | MiVac DNA concentrator | |
Water bath | Cientec | 266 | |
Xcalibur Software | ThermoFisher Scientific | OPTON-30965 |