Summary

Tværgående brud på museårbenet med stabiliserende stift

Published: December 29, 2021
doi:

Summary

Denne protokol beskriver en metode til at udføre brud på voksne mus og overvåge helingsprocessen.

Abstract

Frakturreparation er en væsentlig funktion af skelettet, der ikke pålideligt kan modelleres in vitro. En museskademodel er en effektiv tilgang til at teste, om et gen, genprodukt eller lægemiddel påvirker knoglereparation, fordi murine knogler rekapitulerer de stadier, der observeres under helbredelse af menneskelige brud. Når en mus eller et menneske brækker en knogle, initieres en inflammatorisk reaktion, og periosteum, en stamcelleniche, der omgiver selve knoglen, aktiveres og udvides. Celler, der bor i periosteum, differentierer derefter for at danne en vaskulariseret blød callus. Overgangen fra den bløde callus til en hård callus sker, når de rekrutterede skeletstamceller differentierer sig til mineraliserende celler, og brobygningen mellem de brudte ender resulterer i knogleforeningen. Den mineraliserede callus gennemgår derefter ombygning for at genoprette den oprindelige form og struktur af den helede knogle. Frakturheling er blevet undersøgt hos mus ved hjælp af forskellige skadesmodeller. Alligevel er den bedste måde at rekapitulere hele denne biologiske proces på at bryde igennem tværsnittet af en lang knogle, der omfatter begge kortikater. Denne protokol beskriver, hvordan en stabiliseret, tværgående lårbensbrud sikkert kan udføres for at vurdere heling hos voksne mus. En kirurgisk protokol, der omfatter detaljerede høst- og billeddannelsesteknikker til at karakterisere de forskellige stadier af brudheling, er også tilvejebragt.

Introduction

Frakturer, brud i kontinuiteten af knogleoverfladen, forekommer i alle segmenter af befolkningen. De bliver alvorlige hos mennesker, der har skrøbelige knogler på grund af aldring eller sygdom, og sundhedsomkostningerne ved skrøbelighedsfrakturer forventes at overstige 25 milliarder dollars om 5 år 1,2,3,4,5. Forståelse af de biologiske mekanismer, der er involveret i reparation af brud, ville være et udgangspunkt for at udvikle nye terapier, der sigter mod at forbedre helingsprocessen. Tidligere forskning har vist, at der ved brud forekommer fire væsentlige trin, der gør det muligt for knoglen at helbrede: (1) dannelse af hæmatomet; (2) dannelse af en fibrocartilaginous callus; (3) mineralisering af den bløde callus til dannelse af knogle; og (4) ombygning af den helede knogle 6,7. Mange biologiske processer aktiveres for at helbrede bruddet med succes. For det første initieres et akut proinflammatorisk respons umiddelbart efter et brud 6,7. Derefter aktiveres periosteum og udvides, og periosteale celler differentierer sig til chondrocytter for at danne en brusk callus, der vokser for at udfylde det hul, der efterlades af de forstyrrede knoglesegmenter 6,7,8,9. Neurale og vaskulære celler invaderer den nydannede callus for at tilvejebringe yderligere celler og signalmolekyler, der er nødvendige for at lette reparation 6,7,8,9,10. Ud over at bidrage til callusdannelse differentierer periosteale celler sig også til osteoblaster, der lægger vævet knogle i brobygningscallus. Endelig ombygger osteoklaster den nydannede knogle for at vende tilbage til sin oprindelige form og lamellære struktur 7,8,9,10,11. Mange grupper udviklede musemodeller af brudreparation. En af de tidligere og oftest anvendte brudmodeller hos mus er Einhorn-tilgangen, hvor en vægt falder på benet fra en bestemt højde12. Manglen på kontrol over vinklen og den kraft, der påføres for at fremkalde bruddet, skaber en masse variation i placeringen og størrelsen af knoglediskontinuiteten. Efterfølgende resulterer det i variationer i det specifikke frakturhelingsrespons, der observeres. Andre populære tilgange er kirurgisk indgreb for at producere en tibial monokortikal defekt eller stressfrakturer, procedurer, der inducerer forholdsvis mildere helbredende reaktioner10,13. Variabilitet i disse modeller skyldes primært den person, der udfører proceduren14.

Her giver en detaljeret museknoglebenskademodel mulighed for kontrol over bruddet for at give en reproducerbar skade og muliggøre kvantitativ og kvalitativ vurdering af reparation af lårbensbrud. Specifikt introduceres et fuldstændigt gennembrud i lårbenene hos voksne mus og stabiliserer brudenderne for at tage højde for den rolle, fysisk belastning spiller i knogleheling. Metoderne til høst af væv og billeddannelse af de forskellige trin i helingsprocessen ved hjælp af histologi og mikrocomputertomografi (microCT) er også detaljeret angivet.

Protocol

Alle beskrevne dyreforsøg blev godkendt af Institutional Animal Care and Use Committee i Harvard Medical Area. 12 uger gamle C57BL/6J-mus (hanner og hunner) blev anvendt i denne protokol. C57BL/6J han- og hunmus opnår maksimal knoglemasse omkring 12 ugers alderen med lårben, der er brede nok til at passe til en stabiliserende stift, hvilket gør dem til en passende stamme at bruge til denne protokol15. 1. Forberedelse til operationen Autokl…

Representative Results

I C57BL / 6J-mus fuldender en vellykket operation de tidligere nævnte helingstrin med ringe eller ingen lokal inflammatorisk respons eller periosteal involvering i det sham-opererede kontralaterale lårben. Et hæmatom dannes et par timer efter operationen, og periosteum aktiveres for at rekruttere skeletstam til chondrogenese. Forskellige cellepopulationer, såsom Prx1+ mesenkymale forfædre, kan spores under reparationsprocessen ved hjælp af kommercielt tilgængelige fluorescerende reportermusmodeller (<st…

Discussion

Skadesmodellen, der er beskrevet i denne protokol, omfatter alle fire væsentlige trin, der observeres under helingen af spontane brud, herunder (1) proinflammatorisk respons med dannelsen af hæmatomet, (2) rekruttering af skeletstamfædre fra periosteum til dannelse af den bløde callus, (3) mineralisering af callus ved osteoblaster og (4) ombygning af knoglen ved osteoklaster.

Den kirurgiske procedure, der er beskrevet i dette manuskript, er optimeret til voksne mus, der er mindst 12 uger g…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Dr. Vicki Rosen for økonomisk støtte og vejledning med projektet. Vi vil også gerne takke veterinær- og IACUC-personalet på Harvard School of Medicine for konsultation vedrørende steril teknik, dyrevelfærd og de materialer, der bruges til at udvikle denne protokol.

Materials

23 G x 1 TW IM (0.6 mm x 2 5mm) needle BD precision 305193 Use as guide needle
27 G x 1 ¼ (0.4 mm x 30 mm) BD precision 305136 Use as stabilizing pin
9 mm wound autoclip applier/remover/clips kit Braintree Scientific, INC ACS-KIT
Alcian Blue 8 GX Electron Microscopy Sciences 10350
Ammonium hydroxide Millipore Sigma AX1303
Circular blade X926.7 THIN-FLEX Abrasive technologies CELBTFSG633
DREMEL 7700-1/15, 7.2 V Rotary Tool Kit Dremel 7700 1/15
Eosin Y ThermoScientific 7111
Fine curved dissecting forceps VWR 82027-406
Hematoxulin Gill 2 Sigma-Aldrich GHS216
Hydrochloric acid Millipore Sigma HX0603-4
Isoflurane Patterson Veterinary 07-893-1389
Microsurgical kit VWR 95042-540
Orange G Sigma-Aldrich 1625
Phloxine B Sigma-Aldrich P4030
Povidone-Iodine Swabs PDI S23125
SCANCO Medical µCT35 Scanco
Slow-release buprenorphine Zoopharm

References

  1. Black, D. M., Rosen, C. J. Postmenopausal osteoporosis. The New England Journal of Medicine. 374, 2096-2097 (2016).
  2. Curtis, E. M., Moon, R. J., Harvey, N. C., Cooper, C. The impact of fragility fracture and approaches to osteoporosis risk assessment worldwide. Bone. 104, 29-38 (2017).
  3. Laurent, M. R., Dedeyne, L., Dupont, J., Mellaerts, B., Dejaeger, M., Gielen, E. Age-related bone loss and sarcopenia in men. Maturitas. 122, 51-56 (2019).
  4. NOF – Just for men. National Osteoporosis Foundation Available from: https://cdn.nof.org/wp-content/uploads/2015/12/Osteoporosis-Fast-Facts.pdf (2019)
  5. Williams, S. A., et al. Economic burden of osteoporotic fractures in US managed care enrollees. The American Journal of Managed Care. 26, 142-149 (2020).
  6. Sheen, J. R., Garla, V. V. Fracture healing overview. StatPearls. , (2021).
  7. Holmes, D. Closing the gap. Nature. 550, 194-195 (2017).
  8. Duchamp de Lageneste, O., et al. Periosteum contains skeletal stem cells with high bone regenerative potential controlled by Periostin. Nature Communications. 9, 773 (2018).
  9. Bahney, C. S., et al. Cellular biology of fracture healing. Journal of Orthopaedic Research. 37, 35-50 (2019).
  10. Li, Z., et al. Fracture repair requires TrkA signaling by skeletal sensory nerves. Journal of Clinical Investigation. 129, 5137-5150 (2019).
  11. Colnot, C., Thompson, Z., Miclau, T., Werb, Z., Helms, J. A. Altered fracture repair in the absence of MMP9. Development. 130, 4123-4133 (2003).
  12. Bonnarens, F., Einhorn, T. A. Production of a standard closed fracture in laboratory animal bone. Journal of Orthopaedic Research. 2, 97-101 (1984).
  13. Hu, K., Olsen, B. R. Osteoblast-derived VEGF regulates osteoblast differentiation and bone formation during bone repair. Journal of Clinical Investigation. 126, 509-526 (2016).
  14. Collier, C. D., et al. Characterization of a reproducible model of fracture healing in mice using an open femoral osteotomy. Bone Reports. 12, 100250 (2020).
  15. Glatt, V., Canalis, E., Stadmeyer, L., Bouxsein, M. L. Age-related changes in trabecular architecture differ in female and male C57BL/6J mice. Journal of Bone and Mineral Research. 22, 1197-1207 (2007).
  16. Garcia, P., et al. A new technique for internal fixation of femoral fractures in mice: impact of stability on fracture healing. Journal of Biomechanics. 41, 1689-1696 (2008).
  17. Holstein, J. H., et al. Advances in the establishment of defined mouse models for the study of fracture healing and bone regeneration. Journal of Orthopaedic Trauma. 23, 31-38 (2009).
  18. Garcia, P., et al. Rodent animal models of delayed bone healing and non-union formation: a comprehensive review. European Cells & Materials. 26 (1-12), 12-14 (2013).
  19. Histing, T., et al. Ex vivo analysis of rotational stiffness of different osteosynthesis techniques in mouse femur fracture. Journal of Orthopaedic Research. 27, 1152-1156 (2009).
  20. Williams, J. N., Li, Y., Valiya Kambrath, A., Sankar, U. The Generation of closed femoral fractures in mice: A model to study bone healing. Journal of Visualized Experiments. (138), e58122 (2018).
  21. Haffner-Luntzer, M., et al. A novel mouse model to study fracture healing of the proximal femur. Journal of Orthopaedic Research. 38, 2131-2138 (2020).
check_url/63074?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Moore, E. R., Feigenson, M., Maridas, D. E. Transverse Fracture of the Mouse Femur with Stabilizing Pin. J. Vis. Exp. (178), e63074, doi:10.3791/63074 (2021).

View Video