Summary

Estabelecimento de um modelo de pancreatite aguda grave do rato usando injeção retrógrada de taurocholate de sódio no ducto biliopancreático

Published: April 01, 2022
doi:

Summary

Um modelo de rato de pancreatite aguda grave é descrito aqui. O procedimento aqui apresentado é muito rápido, simples e acessível, permitindo, assim, potencialmente o estudo dos mecanismos moleculares e diferentes intervenções terapêuticas na pancreatite aguda de forma conveniente.

Abstract

A prevalência de pancreatite aguda (AP), especialmente pancreatite aguda grave (SAP), está aumentando anualmente em faixas etárias mais jovens. No entanto, faltam tratamentos eficazes na prática clínica atual. Com a fácil acessibilidade das cepas transgênicas e eliminatórias e seu pequeno tamanho, que permite doses mínimas de medicamentos necessários para avaliação in vivo , um modelo experimental bem estabelecido em camundongos é preferido para a pesquisa ap. Além disso, a SAP induzida através de taurocholate de sódio (TC) é atualmente um dos modelos mais utilizados e caracterizados. Este modelo tem sido investigado para novas terapias e possíveis eventos moleculares durante o processo de AP. Aqui, apresentamos a geração de um modelo de mouse AP usando taurocholate de sódio e uma simples microsinga caseira. Além disso, também fornecemos a metodologia para a histologia subsequente e testes sorológicos.

Introduction

Pancreatite aguda (AP) é uma inflamação aguda do pâncreas caracterizada pela obstrução do duto pancreático principal com distensão ductal subsequente e autogestão do pâncreas por suas enzimas anormalmente ativadas. Suas manifestações clínicas incluem inflamação local ou sistêmica, dor abdominal e elevação do amilase sérico1,2. De acordo com a classificação de gravidade3, a AP pode apresentar-se em formas leves, moderadas e graves, e entre elas, a pancreatite aguda grave (SAP) é a condição mais preocupante devido à sua alta taxa de mortalidade superior a 30%4. Nos Estados Unidos, a AP é uma das razões mais comuns para a internação, afetando mais de 200.000 pacientes5. Além disso, a AP, especialmente a SAP, está aumentando anualmente e afetando as faixas etárias mais jovens6. No entanto, faltam opções de tratamento eficazes na prática clínica atual6,7. Portanto, é necessário explorar os mecanismos moleculares envolvidos na AP, facilitando assim a melhoria do tratamento.

Modelos experimentais de animais bem estabelecidos são necessários para estudar os mecanismos envolvidos na AP e avaliar a eficácia de diferentes modalidades de tratamento. Com a fácil acessibilidade das cepas transgênicas e eliminatórias e seu pequeno tamanho, o que minimiza as doses de medicamentos necessários para avaliação in vivo, os camundongos são preferidos para a pesquisa ap. Portanto, vários modelos de AP foram desenvolvidos em camundongos8,9.

Trabalhando a partir de um modelo leve de rato de pancreatite induzido através da administração intravenosa de caerulein10, Niederau et al. desenvolveram um modelo de rato SAP apresentado com necrose celular acinar induzida usando a mesma droga e rota de injeção11. Embora este modelo possua várias vantagens, incluindo invasividade, indução rápida, reprodutibilidade ampla e aplicabilidade, a maior desvantagem é que apenas uma forma leve de AP é desenvolvida na maioria dos casos, limitando assim sua relevância clínica. O álcool é considerado um dos principais fatores etiológicos da AP; no entanto, Foitzik et al. relataram que causa lesão pancreática apenas quando combinado com outros fatores, como hiperestimulação exócrina12. Além disso, embora os modelos ap induzidos pelo álcool tenham sido desenvolvidos através de diferentes rotas de administração, e as doses de drogas tenham sido relatadas13,14,15, sua maior desvantagem é a dificuldade em reproduzi-los. A administração intraperitoneal de L-arginina também pode induzir AP em camundongos16; no entanto, sua baixa relevância clínica dificulta sua aplicação. Taurocholate, um sal bile, foi proposto pela primeira vez por Creutzfeld et al. em 1965 por induzir uma condição semelhante à AP humana através da infusão de ducto pancreático17. Embora existam controvérsias quanto à sua relevância clínica na fisiopatologia18,19, a pancreatite induzida por taurocolato continua sendo um modelo indispensável para a SAP.

Como este modelo é simples de perceber e também é eficaz em camundongos, é hoje um dos modelos AP mais utilizados para pequenos estudos in vivo. Perides et al. empregaram taurocholate de sódio (TC) para induzir SAP em camundongos20, fornecendo insights para entender sua patologia. Combinado com técnicas de modificação genética, este modelo nos permitiu confirmar vários genes específicos envolvidos na AP. Por exemplo, Bicozo et al. mostraram que um nocaute do gene CD38 protegeu contra um modelo de pancreatite de infusão TC e atribuiu os mecanismos a alterações na sinalização intracelular Ca2+21. Fanczal et al. investigaram a implicação fisiológica da expressão TRPM2 na membrana plasmática do acinar pancreático do rato e células ductais, e demonstraram gravidade reduzida da SAP induzida por TC em camundongos nocautes TRPM222. Além disso, este modelo também fornece uma maneira simples e eficaz de testar muitas drogas novas in vivo. Por exemplo, este método permitiu a validação dos efeitos terapêuticos da cafeína23, ácido desiddrocólico24, e vários antioxidantes e anticoagulantes25,26. Esta evidência demonstra a versatilidade do modelo SAP induzido por TC. Embora Wittel et al. tenham descrito um modelo semelhante de mouse27, a falta de detalhes sobre os procedimentos de implementação poderia resultar em uma incapacidade de reproduzir os achados. Neste artigo, focamos em métodos utilizando uma simples microsinga caseira e estudamos SAP induzida por TC, fornecendo assim uma possível orientação não apenas para um estudo mais aprofundado da patogênese e tratamento da AP, mas também para um método experimental perfeitamente adaptável para muitas outras substâncias.

Protocol

Todos os experimentos envolvendo animais foram aprovados pelo Comitê de Ética Animal da Universidade de Soochow. Todos os procedimentos cirúrgicos foram realizados sob anestesia total. Os analgésicos não foram utilizados para evitar interferências no curso natural da doença segundo as literaturas anteriores28,29. A aprovação da falta de analgesia também foi concedida pelo Comitê de Ética Animal da Universidade de Soochow. <st…

Representative Results

Seguindo cuidadosamente as instruções acima, obtivemos uma duração média da cirurgia de aproximadamente 40 min. Os camundongos estavam ligeiramente inativos e perderam aproximadamente 0,5-1,75 g, 0,85-1,85 g e 0,5-4,73 g de peso em 24 h, 48 h e 72 h pós-operação, respectivamente (Figura 2). Desde o momento da conclusão da cirurgia até 24 horas após a operação, à medida que a doença se desenvolveu, os camundongos ficaram inativos e apresentaram respo…

Discussion

O modelo SAP induzido pelo TC é uma excelente ferramenta de pesquisa. Como mostrado neste estudo, este modelo é muito facilmente realizado em laboratórios gerais sem empregar dispositivos específicos. Quando usado em combinação com histologia e análise bioquímica, fornece uma abordagem de custo (reagentes baratos) e economia de tempo (24h de janela de tempo) para induzir e avaliar AP. Ajustar a concentração de TC também oferece a possibilidade de produzir ap. Perides et al. também empregaram TC para induzir S…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Somos gratos pelo apoio das seguintes bolsas: uma Bolsa de Pesquisa Translacional da NCRCH [2020WSA01], uma Bolsa Científica KJXW da Comissão de Saúde para Jovens Acadêmicos de Suzhou [KJXW2020002], um Plano de Ciência e Tecnologia da Cidade de Suzhou (SKY2021038 e SKJY2021050), uma bolsa do Programa Acadêmico Prioritário de Desenvolvimento das Instituições de Ensino Superior de Jiangsu (PAPD) e um Plano de Pesquisa Primária & Desenvolvimento Social da Província de Jiangsu (BE2018659).

Materials

0.5% iodophor Shanghai Likang Disinfectant 310102 4 mL/mouse
0.9% sodium chloride Sinopharm Group Co., Ltd. 10019318 0.8 mL/mouse
1% Pentobarbital sodium Sigma P3761 0.2 -0.25 mL/mouse
25 μL flat tip Microliter syringe Gaoge, Shanghai A124019
4% Paraformaldehyde Beyotime, Nantong, China P0099-500ml
5% sodium taurocholate (TC) Aladdin S100834-5g 10 μL/SAP mouse
6-0 Sterile nylon microsuture with threaded needle (1/2 circle) Cheng-He 20093
75% alcohol Sinopharm Group Co., Ltd. 10009218 4 mL/mouse
8-0 Sterile nylon microsuture with threaded needle (3/8 circle) Cheng-He 19064
ALT Activity Assay Kit EPNK, Anhui, China ALT0012
Amylase Assay Kit EPNK, Anhui, China AMY0012
Angled small bulldog clamp with 12 mm jaw (3 cm) Cheng-He HC-X022
aspen shavings or shreds for mouse bedding Beijing Vital River Laboratory Animal Technology VR03015
AST Activity Assay Kit EPNK, Anhui, China AST0012
Blood Urea Nitrogen (BUN) Assay Kit EPNK, Anhui, China BUN0011
C57BL/6 mouse Beijing Vital River Laboratory Animal Technology 213
Creatine Assay Kit EPNK, Anhui, China CRE0012
Feature microtome blade Beyotime, Nantong, China E0994
Hemostatic Forceps (9.5 cm, Curved) JZ, Shanghai Medical Instruments Co. Ltd. JC3901
Lipase Assay Kit Jiancheng, Nanjing, China A054-2-1
Microtome Leica biosystem, Germany RM2245
Mindray biochemistry analyzer Mindray, Shenzhen, China BS-420
MPO Assay Kit Jiancheng, Nanjing, China A044-1-1
Normal mouse chow Trophic, Nantong, China LAD 1000
Phosphate buffered saline Beyotime, Nantong, China C0221A
Straight micro-bulldog clamp with 5 mm jaw (1.5 cm) JZ, Shanghai Medical Instruments Co. Ltd. W40130
Straight or curved forceps (11.0 cm) Cheng-He HC-X091A or HC-X090A
Straight Scissors (10.0 cm) Cheng-He, Ningbo, China HC-J039102
Thermo Scientific Centrifuge Thermo Scientific, USA Multifuge X1R

References

  1. Lee, P. J., Papachristou, G. I. New insights into acute pancreatitis. Nature Reviews Gastroenterology and Hepatology. 16 (8), 479-496 (2019).
  2. Mandalia, A., Wamsteker, E. J., DiMagno, M. J. Recent advances in understanding and managing acute pancreatitis. F1000Research. 7, 959 (2018).
  3. Banks, P. A., et al. Classification of acute pancreatitis-2012: revision of the Atlanta classification and definitions by international consensus. Gut. 62 (1), 102-111 (2013).
  4. Munir, F., et al. Advances in immunomodulatory therapy for severe acute pancreatitis. Immunology Letters. 217, 72-76 (2020).
  5. Peery, A. F., et al. Burden of gastrointestinal disease in the United States: 2012 update. Gastroenterology. 143 (5), 1179-1187 (2012).
  6. Hines, O. J., Pandol, S. J. Management of severe acute pancreatitis. BMJ. 367, 6227 (2019).
  7. James, T. W., Crockett, S. D. Management of acute pancreatitis in the first 72 hours. Current Opinion in Gastroenterology. 34 (5), 330-335 (2018).
  8. Silva-Vaz, P., et al. Murine models of acute pancreatitis: a critical appraisal of clinical relevance. International Journal of Molecular Sciences. 20 (11), 2794 (2019).
  9. Hyun, J. J., Lee, H. S. Experimental models of pancreatitis. Clinical Endoscopy. 47 (3), 212-216 (2014).
  10. Renner, I. G., Wisner, J. R., Rinderknecht, H. Protective effects of exogenous secretin on ceruletide-induced acute pancreatitis in the rat. Journal of Clinical Investigation. 72 (3), 1081-1092 (1983).
  11. Niederau, C., Ferrell, L. D., Grendell, J. H. Caerulein-induced acute necrotizing pancreatitis in mice: protective effects of proglumide, benzotript, and secretin. Gastroenterology. 88 (5), 1192-1204 (1985).
  12. Foitzik, T., et al. Exocrine hyperstimulation but not pancreatic duct obstruction increases the susceptibility to alcohol-related pancreatic injury. Archives in Surgery. 129 (10), 1081-1085 (1994).
  13. Schneider, L., Dieckmann, R., Hackert, T., Gebhard, M. M., Werner, J. Acute alcohol-induced pancreatic injury is similar with intravenous and intragastric routes of alcohol administration. Pancreas. 43 (1), 69-74 (2014).
  14. Huang, W., et al. Fatty acid ethyl ester synthase inhibition ameliorates ethanol-induced Ca2+-dependent mitochondrial dysfunction and acute pancreatitis. Gut. 63 (8), 1313-1324 (2014).
  15. Sun, J., et al. NRF2 mitigates acute alcohol-induced hepatic and pancreatic injury in mice. Food and Chemical Toxicology. 121, 495-503 (2018).
  16. Kui, B., et al. New insights into the methodology of L-arginine-induced acute pancreatitis. PLoS One. 10 (2), 0117588 (2015).
  17. Creutzfeldt, W., Schmidt, H., Horbach, I. Studies on the effects of a trypsin inhibitor (Trasylol) on Enzyme activities and morphology in taurocholate and calciphylaxis pancreatitis of the rat (a contribution to the pathogenesis of pancreatitis). Klin Wochenschr. 43, 15-22 (1965).
  18. Liu, Z. H., et al. A simple taurocholate-induced model of severe acute pancreatitis in rats. World Journal of Gastroenterology. 15 (45), 5732-5739 (2009).
  19. Cavdar, F., et al. Controversial issues in biliary pancreatitis: when should we perform MRCP and ERCP. Pancreatology. 14 (5), 411-414 (2014).
  20. Perides, G., van Acker, G. J., Laukkarinen, J. M., Steer, M. L. Experimental acute biliary pancreatitis induced by retrograde infusion of bile acids into the mouse pancreatic duct. Nature Protocols. 5 (2), 335-341 (2010).
  21. Orabi, A. I., et al. Cluster of differentiation 38 (CD38) mediates bile acid-induced acinar cell injury and pancreatitis through cyclic ADP-ribose and intracellular calcium release. Journal of Biological Chemistry. 288 (38), 27128-27137 (2013).
  22. Fanczal, J., et al. TRPM2-mediated extracellular Ca(2+) entry promotes acinar cell necrosis in biliary acute pancreatitis. Journal of Physiology. 598 (6), 1253-1270 (2020).
  23. Huang, W., et al. Caffeine protects against experimental acute pancreatitis by inhibition of inositol 1,4,5-trisphosphate receptor-mediated Ca2+ release. Gut. 66 (2), 301-313 (2017).
  24. Zhang, X., et al. Dehydrocholic acid ameliorates sodium taurocholate-induced acute biliary pancreatitis in mice. Biology and Pharmaceutical Bulletin. 43 (6), 985-993 (2020).
  25. Hagiwara, S., et al. Antithrombin III prevents cerulein-induced acute pancreatitis in rats. Pancreas. 38 (7), 746-751 (2009).
  26. Hagiwara, S., et al. Danaparoid sodium prevents cerulein-induced acute pancreatitis in rats. Shock. 32 (1), 94-99 (2009).
  27. Wittel, U. A., et al. Taurocholate-induced pancreatitis: a model of severe necrotizing pancreatitis in mice. Pancreas. 36 (2), 9-21 (2008).
  28. Barlass, U., et al. Morphine worsens the severity and prevents pancreatic regeneration in mouse models of acute pancreatitis. Gut. 67 (4), 600-602 (2018).
  29. Wu, D., et al. A systematic review of NSAIDs treatment for acute pancreatitis in animal studies and clinical trials. Clinical Research in Hepatology and Gastroenterology. 44, 100002 (2020).
  30. Schmidt, J., et al. A better model of acute pancreatitis for evaluating therapy. Annals in Surgery. 215 (1), 44-56 (1992).
  31. Junyuan, Z., et al. Quercetin protects against intestinal barrier disruption and inflammation in acute necrotizing pancreatitis through TLR4/MyD88/p38MAPK and ERS inhibition. Pancreatology. 18 (7), 742-752 (2018).
  32. Waldron, R. T., et al. The Orai Ca(2+) channel inhibitor CM4620 targets both parenchymal and immune cells to reduce inflammation in experimental acute pancreatitis. Journal of Physiology. 597 (12), 3085-3105 (2019).
  33. Petersen, O. H., Gerasimenko, J. V., Gerasimenko, O. V., Gryshchenko, O., Peng, S. The roles of calcium and ATP in the physiology and pathology of the exocrine pancreas. Physiological Reviews. 101 (4), 1691-1744 (2021).
check_url/63129?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zhou, X., Chen, H., Wei, X., He, Y., Xu, C., Weng, Z. Establishment of a Mouse Severe Acute Pancreatitis Model using Retrograde Injection of Sodium Taurocholate into the Biliopancreatic Duct. J. Vis. Exp. (182), e63129, doi:10.3791/63129 (2022).

View Video