Summary

Modellering af neonatal intraventrikulær blødning gennem intraventrikulær injektion af hæmoglobin

Published: August 25, 2022
doi:

Summary

Vi præsenterer en model af neonatal intraventrikulær blødning ved hjælp af rottehvalpe, der efterligner den patologi, der ses hos mennesker.

Abstract

Neonatal intraventrikulær blødning (IVH) er en almindelig konsekvens af for tidlig fødsel og fører til hjerneskade, posthemorragisk hydrocephalus (PHH) og livslang neurologisk underskud. Mens PHH kan behandles ved midlertidige og permanente cerebrospinalvæske (CSF) afledningsprocedurer (henholdsvis ventrikulært reservoir og ventriculoperitoneal shunt), er der ingen farmakologiske strategier til forebyggelse eller behandling af IVH-induceret hjerneskade og hydrocephalus. Dyremodeller er nødvendige for bedre at forstå patofysiologien af IVH og teste farmakologiske behandlinger. Mens der er eksisterende modeller af neonatal IVH, er de, der pålideligt resulterer i hydrocephalus, ofte begrænset af nødvendigheden af store volumeninjektioner, hvilket kan komplicere modellering af patologien eller indføre variabilitet i den observerede kliniske fænotype.

Nylige kliniske undersøgelser har impliceret hæmoglobin og ferritin i at forårsage ventrikulær udvidelse efter IVH. Her udvikler vi en ligetil dyremodel, der efterligner den kliniske fænotype af PHH ved hjælp af små volumen intraventrikulære injektioner af blodnedbrydningsproduktet hæmoglobin. Ud over pålideligt at inducere ventrikulær udvidelse og hydrocephalus resulterer denne model i hvidstofskade, betændelse og immuncelleinfiltration i periventrikulære og hvide stofområder. Dette papir beskriver denne klinisk relevante, enkle metode til modellering af IVH-PHH hos neonatale rotter ved hjælp af intraventrikulær injektion og præsenterer metoder til kvantificering af ventrikel størrelse efter injektion.

Introduction

Neonatal IVH stammer fra den germinale matrix, et sted med hurtig celledeling, der støder op til de laterale ventrikler i den udviklende hjerne. Denne meget vaskulære struktur er sårbar over for hæmodynamisk ustabilitet relateret til for tidlig fødsel. Blod frigives i de laterale ventrikler i germinal matrixblødning (GMH) -IVH, når skrøbelige blodkar inden for germinalmatrixen brister. I tilfælde af klasse IV IV kan periventrikulær hæmoragisk infarkt også bidrage til frigivelse af blodprodukter i hjernen. 1 Kombinationen af GMH-IVH kan forårsage PHH, især efter højkvalitetsblødning (grad III og IV)1. PHH kan behandles med placering af en ventriculoperitoneal shunt, men shuntplacering vender ikke den hjerneskade, der kan opstå ved IVH. Selvom moderne neonatal intensiv pleje har sænket satserne på IVH2, 3, er der ingen specifikke behandlinger for hjerneskade eller hydrocephalus forårsaget af IVH, når det er sket. En væsentlig begrænsning i udviklingen af forebyggende behandlinger for IVH-induceret hjerneskade og PHH er den ufuldstændige forståelse af IVH-patofysiologi.

For nylig har tidlige CSF-niveauer af vigtige blodnedbrydningsprodukthæmoglobin vist sig at være forbundet med den senere udvikling af PHH hos nyfødte med IVH4 af høj kvalitet. Desuden er CSF-niveauer af jernhåndteringsvejproteiner – hæmoglobin, ferritin og bilirubin – forbundet med ventrikelstørrelse i neonatal IVH. Dette blev også vist i en multicenterkohorte af spædbørn med for tidlig PHH, hvor højere ventrikulære CSF-niveauer af ferritin var forbundet med større ventrikel størrelse5.

I denne undersøgelse udviklede vi en klinisk relevant model af IVH-induceret hjerneskade og hydrocephalus ved hjælp af hæmoglobininjektion i hjernens ventrikler, hvilket muliggør kvantificering af hjerneskade og PHH og test af nye terapeutiske strategier (figur 1)6, 7. Denne IVH-model anvender neonatale rotteunger, som placeres under generel anæstesi i løbet af proceduren. Et midterlinjesnit foretages i hovedbunden, og koordinater afledt af kraniets landemærker – bregma eller lambda – bruges til at målrette de laterale ventrikler til injektion. Langsom injektion ved hjælp af en infusionspumpe leverer hæmoglobin ind i ventriklen. Denne protokol er nem at bruge, alsidig og kan modellere forskellige komponenter i IVH, der resulterer i PHH.

Protocol

BEMÆRK: Alle dyreprotokoller blev godkendt af institutionernes dyrepleje- og brugsudvalg. Se materialetabellen for detaljer om alle materialer, reagenser, udstyr og software, der bruges i denne protokol. 1. Fremstilling af hæmoglobin- og CSF-opløsninger Der fremstilles en steril kunstig CSF-opløsning (aCSF) ved at tilsætte 500 μL af aCSF-opløsningen til et 1,5 ml mikrorør og opbevares på is. Der fremstilles en steril 150 mg/ml hæm…

Representative Results

Succesen med injektion blev bekræftet af radiologiske og immunohistokemiske midler. Dyr, der gennemgik hæmoglobininjektion, udviklede moderat akut ventrikulomegali, når de blev vurderet via MR (figur 2A), med signifikant større laterale ventrikler ved 24 timer og 72 timer efter hæmoglobininjektion sammenlignet med dyr injiceret i aCSF (figur 2B, C). Selv om der ikke var nogen signifikant forskel i lateralt ventrikel volumen mellem hæmoglob…

Discussion

Denne IVH-model ved hjælp af hæmoglobininjektion giver mulighed for undersøgelse af patologien af IVH specifikt medieret af hæmoglobin. Til komplementære undersøgelser kan hæmoglobin også let leveres in vitro og forvirrer ikke biokemiske assays for proteiner fremstillet af microglia / makrofager, der er til stede i fuldblod.

De førende teorier om IVH-PHH inkluderer mekanisk obstruktion af CSF-cirkulation, forstyrrelse af cilia, der forer de ependymale vægge, betændelse, fib…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

JMS modtog finansiering fra NIH / NINDS R01 NS110793 og K12 (Neurosurgeon Research Career Development Program). BAM modtog finansiering fra NIH / NINDS K08 NS112580-01A1, University of Kentucky Neuroscience Research Priority Area Award og en Hydrocephalus Association Innovator Award.

Materials

0.3 mL insulin syringe BD Microfine + Insulin Syringe 230-4533 0.3-0.5 mL synringes will work
1.5 mL microtube USA Scientific 1615-5500 Lot No. K194642H -3 511
4.7T MRI Agilent/Varian 4.7T/33 cm Agilent/Varian DirectDrive 4.7-T (200-MHz) MRI system
6-0 monofilament suture ETHICON 667G
9.4T MRI Bruker BioSpec 94/20 Used in this protocol without the cryoprobe
Analytical balance CCURIS Instruments W3200-320
Artificial CSF (aCSF) Tocris Bioscience 3525 Batch No: 72A
Betadine Purdue Products L.P. 301005-00 NDC 67618-150-09
Carprofen (injectable) Zoetis Inc.  PI 4019448 Rimadyl
Ethanol Decon Laboratories 2701
Heating pad Sunbeam E12107-819 UL 612A, Z-1228-001
Hemoglobin MP Biomedicals 100714 LOT NO. SR02321
Isoflurane Piramal Critical Care NDC 66794-017-25
Isoflurane vaporizer VETEQUIP 911103
Light for stereotactic insturment Dolan-Jenner industries Fiber-Lite MI-150
Microinjection syringe pump World Precision Instruments MICRO21 Serial 184034 T08K
MRI software Bruker BioSpin Paravision 360 3.2
Oxygen Airgas Healthcare UN1072 LOT NUMBER S1432080XA02
Sprague Dawley rats Charles River Laboratories Strain code: 001
Stereotactic instrument KOPF Instuments Model 900LS Lazy Susan
Sterile cotton tipped applicator Fischerbrand 23-400-118
Surgical blade covetrus #10
Topical triple antibiotic Triple Antibiotic Ointment NDC 51672-2120-1
Ventricle volume quantification software ITK-SNAP ITK-SNAP 4.0.0 beta

References

  1. Robinson, S. Neonatal posthemorrhagic hydrocephalus from prematurity: Pathophysiology and current treatment concepts: A review. Journal of Neurosurgery: Pediatrics. 9 (3), (2012).
  2. Hasselager, A. B., Børch, K., Pryds, O. A. Improvement in perinatal care for extremely premature infants in Denmark from. Danish Medical Journal. 63 (1), (1994).
  3. Johnston, P. G., Gillam-Krakauer, M., Fuller, M. P., Reese, J. Evidence-Based Use of Indomethacin and Ibuprofen in the Neonatal Intensive Care Unit. Clinics in Perinatology. 39 (1), (2012).
  4. Mahaney, K. B., Buddhala, C., Paturu, M., Morales, D., Limbrick, D. D., Strahle, J. M. Intraventricular Hemorrhage Clearance in Human Neonatal Cerebrospinal Fluid: Associations with Hydrocephalus. Stroke. , (2020).
  5. Strahle, J. M., et al. Longitudinal CSF Iron Pathway Proteins in Posthemorrhagic Hydrocephalus: Associations with Ventricle Size and Neurodevelopmental Outcomes. Annals of Neurology. 90 (2), (2021).
  6. Strahle, J. M., et al. Role of Hemoglobin and Iron in hydrocephalus after neonatal intraventricular hemorrhage. Neurosurgery. 75 (6), (2014).
  7. Garton, T. P., He, Y., Garton, H. J. L., Keep, R. F., Xi, G., Strahle, J. M. Hemoglobin-induced neuronal degeneration in the hippocampus after neonatal intraventricular hemorrhage. Brain Research. 1635, (2016).
  8. Goulding, D. S., Caleb Vogel, ., Gensel, R., Morganti, J. C., Stromberg, J. M., Miller, A. J., A, B. Acute brain inflammation, white matter oxidative stress, and myelin deficiency in a model of neonatal intraventricular hemorrhage. Journal of Neurosurgery: Pediatrics. 26 (6), (2020).
  9. Strahle, J., Garton, H. J. L., Maher, C. O., Muraszko, K. M., Keep, R. F., Xi, G. Mechanisms of Hydrocephalus After Neonatal and Adult Intraventricular Hemorrhage. Translational Stroke Research. 3, (2012).
  10. Jinnai, M., et al. A Model of Germinal Matrix Hemorrhage in Preterm Rat Pups. Frontiers in Cellular Neuroscience. 14, (2020).
  11. Georgiadis, P., et al. Characterization of acute brain injuries and neurobehavioral profiles in a rabbit model of germinal matrix hemorrhage. Stroke. 39 (12), (2008).
  12. Cherian, S. S., Love, S., Silver, I. A., Porter, H. J., Whitelaw, A. G. L., Thoresen, M. Posthemorrhagic ventricular dilation in the neonate: Development and characterization of a rat model. Journal of Neuropathology and Experimental Neurology. 62 (3), (2003).
  13. Balasubramaniam, J., Xue, M., Buist, R. J., Ivanco, T. L., Natuik, S., del Bigio, ., R, M. Persistent motor deficit following infusion of autologous blood into the periventricular region of neonatal rats. Experimental Neurology. (1), (2006).
  14. Volpe, J. J. Brain injury in premature infants: a complex amalgam of destructive and developmental disturbances. The Lancet Neurology. 8 (1), (2009).
  15. Dobbing, J., Sands, J. Comparative aspects of the brain growth spurt. Early Human Development. 3 (1), (1979).
  16. Craig, A., et al. Quantitative analysis of perinatal rodent oligodendrocyte lineage progression and its correlation with human. Experimental Neurology. 181 (2), (2003).
  17. Lodygensky, G. A., Vasung, L., Sv Sizonenko, ., Hüppi, P. S. Neuroimaging of cortical development and brain connectivity in human newborns and animal models. Journal of Anatomy. 217 (4), (2010).
  18. Dean, J. M., et al. Strain-specific differences in perinatal rodent oligodendrocyte lineage progression and its correlation with human. Developmental Neuroscience. 33 (34), (2011).
  19. Engelhardt, B. Development of the blood-brain barrier. Cell and Tissue Research. 314 (1), (2003).
  20. Daneman, R., Zhou, L., Kebede, A. A., Barres, B. A. Pericytes are required for bloodĝ€"brain barrier integrity during embryogenesis. Nature. 468 (7323), (2010).
  21. Alles, Y. C. J., Greggio, S., Alles, R. M., Azevedo, P. N., Xavier, L. L., DaCosta, J. C. A novel preclinical rodent model of collagenase-induced germinal matrix/intraventricular hemorrhage. Brain Research. 1356, (2010).
  22. Christian, E. A., et al. Trends in hospitalization of preterm infants with intraventricular hemorrhage and hydrocephalus in the United States. Journal of Neurosurgery: Pediatrics. 17 (3), 2000-2010 (2016).
check_url/63345?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Miller, B. A., Pan, S., Yang, P. H., Wang, C., Trout, A. L., DeFreitas, D., Ramagiri, S., Olson, S. D., Strahle, J. M. Modeling Neonatal Intraventricular Hemorrhage Through Intraventricular Injection of Hemoglobin. J. Vis. Exp. (186), e63345, doi:10.3791/63345 (2022).

View Video