Summary

Modellering av neonatal intraventrikulär blödning genom intraventrikulär injektion av hemoglobin

Published: August 25, 2022
doi:

Summary

Vi presenterar en modell av neonatal intraventrikulär blödning med hjälp av råttungar som efterliknar den patologi som ses hos människor.

Abstract

Neonatal intraventrikulär blödning (IVH) är en vanlig följd av för tidig födsel och leder till hjärnskada, posthemorragisk hydrocefalus (PHH) och livslånga neurologiska underskott. Medan PHH kan behandlas med tillfälliga och permanenta cerebrospinalvätska (CSF) avledningsprocedurer (ventrikulär reservoar respektive ventrikuloperitoneal shunt), finns det inga farmakologiska strategier för att förebygga eller behandla IVH-inducerad hjärnskada och hydrocefalus. Djurmodeller behövs för att bättre förstå patofysiologin hos IVH och testa farmakologiska behandlingar. Även om det finns befintliga modeller av neonatal IVH, är de som på ett tillförlitligt sätt resulterar i hydrocephalus ofta begränsade av nödvändigheten av stora volyminjektioner, vilket kan komplicera modelleringen av patologin eller införa variation i den kliniska fenotypen som observerats.

Nya kliniska studier har involverat hemoglobin och ferritin i att orsaka ventrikulär förstoring efter IVH. Här utvecklar vi en enkel djurmodell som efterliknar den kliniska fenotypen av PHH med hjälp av intraventrikulära injektioner med liten volym av blodnedbrytningsprodukten hemoglobin. Förutom att på ett tillförlitligt sätt inducera ventrikulär förstoring och hydrocefalus, resulterar denna modell i skada på vit substans, inflammation och immuncellinfiltration i periventrikulära och vita substansregioner. Detta dokument beskriver denna kliniskt relevanta, enkla metod för modellering av IVH-PHH hos neonatala råttor med intraventrikulär injektion och presenterar metoder för att kvantifiera ventrikelstorlek efter injektion.

Introduction

Neonatal IVH härstammar från germinalmatrisen, en plats för snabb celldelning som ligger intill de laterala ventriklarna i den utvecklande hjärnan. Denna mycket vaskulära struktur är sårbar för hemodynamisk instabilitet relaterad till för tidig födsel. Blod släpps ut i laterala ventriklarna vid germinal matrisblödning (GMH) -IVH när bräckliga blodkärl i germinalmatrisbrottet. När det gäller grad IV IVH kan periventrikulär hemorragisk infarkt också bidra till frisättning av blodprodukter i hjärnan. 1 Kombinationen av GMH-IVH kan orsaka PHH, särskilt efter höggradig blödning (grad III och IV)1. PHH kan behandlas med placering av en ventriculoperitoneal shunt, men shuntplacering vänder inte hjärnskadan som kan uppstå från IVH. Även om modern neonatal intensivvård har sänkt frekvensen av IVH2, 3, finns det inga specifika behandlingar för hjärnskada eller hydrocefalus orsakad av IVH när det har inträffat. En betydande begränsning i utvecklingen av förebyggande behandlingar för IVH-inducerad hjärnskada och PHH är den ofullständiga förståelsen av IVH-patofysiologi.

Nyligen har tidiga CSF-nivåer av viktiga blodnedbrytningsprodukter hemoglobin visat sig vara associerade med den senare utvecklingen av PHH hos nyfödda med högkvalitativ IVH4. Dessutom är CSF-nivåer av järnhanteringsvägsproteiner-hemoglobin, ferritin och bilirubin-associerade med ventrikelstorlek vid neonatal IVH. Detta visades också i en multicenterkohort av spädbarn med prematur PHH, där högre ventrikulära CSF-nivåer av ferritin var associerade med större ventrikelstorlek5.

I denna studie utvecklade vi en kliniskt relevant modell av IVH-inducerad hjärnskada och hydrocefalus som använder hemoglobininjektion i hjärnventriklarna, vilket möjliggör kvantifiering av hjärnskada och PHH och testning av nya terapeutiska strategier (Figur 1)6, 7. Denna IVH-modell använder neonatala råttungar, som placeras under generell anestesi under procedurens varaktighet. Ett snitt i mittlinjen görs i hårbotten, och koordinater som härrör från skallens landmärken – bregma eller lambda – används för att rikta in sig på laterala ventriklarna för injektion. Långsam injektion med en infusionspump levererar hemoglobin i ventrikeln. Detta protokoll är lätt att använda, mångsidigt och kan modellera olika komponenter i IVH som resulterar i PHH.

Protocol

OBS: Alla djurprotokoll godkändes av institutionernas djurvårds- och användningskommitté. Se materialförteckningen för mer information om alla material, reagenser, utrustning och programvara som används i detta protokoll. 1. Beredning av hemoglobin- och CSF-lösningar Bered en steril konstgjord CSF-lösning (aCSF) genom att tillsätta 500 μL av aCSF-lösningen till ett 1,5 ml mikrorör och förvara på is. Bered en steril 150 mg / m…

Representative Results

Injektionsframgången bekräftades med radiologiska och immunohistokemiska medel. Djur som genomgick hemoglobininjektion utvecklade måttlig akut ventrikulomegali vid bedömning via MR (figur 2A), med signifikant större laterala ventriklar vid 24 timmar och 72 timmar efter hemoglobininjektion jämfört med aCSF-injicerade djur (figur 2B,C). Även om det inte fanns någon signifikant skillnad i lateral ventrikelvolym mellan hemoglobininjicerade …

Discussion

Denna IVH-modell som använder hemoglobininjektion möjliggör studier av patologin hos IVH specifikt medierad av hemoglobin. För kompletterande studier kan hemoglobin också enkelt levereras in vitro och förvirrar inte biokemiska analyser för proteiner gjorda av mikroglia / makrofager som finns i helblod.

De ledande teorierna om IVH-PHH inkluderar mekanisk obstruktion av CSF-cirkulationen, störningen av cilia som kantar ependymala väggar, inflammation, fibros och järntoxicitet<…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

JMS erhöll finansiering från NIH/NINDS R01 NS110793 och K12 (Neurosurgeon Research Career Development Program). BAM fick finansiering från NIH/NINDS K08 NS112580-01A1, University of Kentucky Neuroscience Research Priority Area Award och ett Hydrocephalus Association Innovator Award.

Materials

0.3 mL insulin syringe BD Microfine + Insulin Syringe 230-4533 0.3-0.5 mL synringes will work
1.5 mL microtube USA Scientific 1615-5500 Lot No. K194642H -3 511
4.7T MRI Agilent/Varian 4.7T/33 cm Agilent/Varian DirectDrive 4.7-T (200-MHz) MRI system
6-0 monofilament suture ETHICON 667G
9.4T MRI Bruker BioSpec 94/20 Used in this protocol without the cryoprobe
Analytical balance CCURIS Instruments W3200-320
Artificial CSF (aCSF) Tocris Bioscience 3525 Batch No: 72A
Betadine Purdue Products L.P. 301005-00 NDC 67618-150-09
Carprofen (injectable) Zoetis Inc.  PI 4019448 Rimadyl
Ethanol Decon Laboratories 2701
Heating pad Sunbeam E12107-819 UL 612A, Z-1228-001
Hemoglobin MP Biomedicals 100714 LOT NO. SR02321
Isoflurane Piramal Critical Care NDC 66794-017-25
Isoflurane vaporizer VETEQUIP 911103
Light for stereotactic insturment Dolan-Jenner industries Fiber-Lite MI-150
Microinjection syringe pump World Precision Instruments MICRO21 Serial 184034 T08K
MRI software Bruker BioSpin Paravision 360 3.2
Oxygen Airgas Healthcare UN1072 LOT NUMBER S1432080XA02
Sprague Dawley rats Charles River Laboratories Strain code: 001
Stereotactic instrument KOPF Instuments Model 900LS Lazy Susan
Sterile cotton tipped applicator Fischerbrand 23-400-118
Surgical blade covetrus #10
Topical triple antibiotic Triple Antibiotic Ointment NDC 51672-2120-1
Ventricle volume quantification software ITK-SNAP ITK-SNAP 4.0.0 beta

References

  1. Robinson, S. Neonatal posthemorrhagic hydrocephalus from prematurity: Pathophysiology and current treatment concepts: A review. Journal of Neurosurgery: Pediatrics. 9 (3), (2012).
  2. Hasselager, A. B., Børch, K., Pryds, O. A. Improvement in perinatal care for extremely premature infants in Denmark from. Danish Medical Journal. 63 (1), (1994).
  3. Johnston, P. G., Gillam-Krakauer, M., Fuller, M. P., Reese, J. Evidence-Based Use of Indomethacin and Ibuprofen in the Neonatal Intensive Care Unit. Clinics in Perinatology. 39 (1), (2012).
  4. Mahaney, K. B., Buddhala, C., Paturu, M., Morales, D., Limbrick, D. D., Strahle, J. M. Intraventricular Hemorrhage Clearance in Human Neonatal Cerebrospinal Fluid: Associations with Hydrocephalus. Stroke. , (2020).
  5. Strahle, J. M., et al. Longitudinal CSF Iron Pathway Proteins in Posthemorrhagic Hydrocephalus: Associations with Ventricle Size and Neurodevelopmental Outcomes. Annals of Neurology. 90 (2), (2021).
  6. Strahle, J. M., et al. Role of Hemoglobin and Iron in hydrocephalus after neonatal intraventricular hemorrhage. Neurosurgery. 75 (6), (2014).
  7. Garton, T. P., He, Y., Garton, H. J. L., Keep, R. F., Xi, G., Strahle, J. M. Hemoglobin-induced neuronal degeneration in the hippocampus after neonatal intraventricular hemorrhage. Brain Research. 1635, (2016).
  8. Goulding, D. S., Caleb Vogel, ., Gensel, R., Morganti, J. C., Stromberg, J. M., Miller, A. J., A, B. Acute brain inflammation, white matter oxidative stress, and myelin deficiency in a model of neonatal intraventricular hemorrhage. Journal of Neurosurgery: Pediatrics. 26 (6), (2020).
  9. Strahle, J., Garton, H. J. L., Maher, C. O., Muraszko, K. M., Keep, R. F., Xi, G. Mechanisms of Hydrocephalus After Neonatal and Adult Intraventricular Hemorrhage. Translational Stroke Research. 3, (2012).
  10. Jinnai, M., et al. A Model of Germinal Matrix Hemorrhage in Preterm Rat Pups. Frontiers in Cellular Neuroscience. 14, (2020).
  11. Georgiadis, P., et al. Characterization of acute brain injuries and neurobehavioral profiles in a rabbit model of germinal matrix hemorrhage. Stroke. 39 (12), (2008).
  12. Cherian, S. S., Love, S., Silver, I. A., Porter, H. J., Whitelaw, A. G. L., Thoresen, M. Posthemorrhagic ventricular dilation in the neonate: Development and characterization of a rat model. Journal of Neuropathology and Experimental Neurology. 62 (3), (2003).
  13. Balasubramaniam, J., Xue, M., Buist, R. J., Ivanco, T. L., Natuik, S., del Bigio, ., R, M. Persistent motor deficit following infusion of autologous blood into the periventricular region of neonatal rats. Experimental Neurology. (1), (2006).
  14. Volpe, J. J. Brain injury in premature infants: a complex amalgam of destructive and developmental disturbances. The Lancet Neurology. 8 (1), (2009).
  15. Dobbing, J., Sands, J. Comparative aspects of the brain growth spurt. Early Human Development. 3 (1), (1979).
  16. Craig, A., et al. Quantitative analysis of perinatal rodent oligodendrocyte lineage progression and its correlation with human. Experimental Neurology. 181 (2), (2003).
  17. Lodygensky, G. A., Vasung, L., Sv Sizonenko, ., Hüppi, P. S. Neuroimaging of cortical development and brain connectivity in human newborns and animal models. Journal of Anatomy. 217 (4), (2010).
  18. Dean, J. M., et al. Strain-specific differences in perinatal rodent oligodendrocyte lineage progression and its correlation with human. Developmental Neuroscience. 33 (34), (2011).
  19. Engelhardt, B. Development of the blood-brain barrier. Cell and Tissue Research. 314 (1), (2003).
  20. Daneman, R., Zhou, L., Kebede, A. A., Barres, B. A. Pericytes are required for bloodĝ€"brain barrier integrity during embryogenesis. Nature. 468 (7323), (2010).
  21. Alles, Y. C. J., Greggio, S., Alles, R. M., Azevedo, P. N., Xavier, L. L., DaCosta, J. C. A novel preclinical rodent model of collagenase-induced germinal matrix/intraventricular hemorrhage. Brain Research. 1356, (2010).
  22. Christian, E. A., et al. Trends in hospitalization of preterm infants with intraventricular hemorrhage and hydrocephalus in the United States. Journal of Neurosurgery: Pediatrics. 17 (3), 2000-2010 (2016).

Play Video

Cite This Article
Miller, B. A., Pan, S., Yang, P. H., Wang, C., Trout, A. L., DeFreitas, D., Ramagiri, S., Olson, S. D., Strahle, J. M. Modeling Neonatal Intraventricular Hemorrhage Through Intraventricular Injection of Hemoglobin. J. Vis. Exp. (186), e63345, doi:10.3791/63345 (2022).

View Video