Summary

Quail Chorioallantoic Membrane - Et verktøy for fotodynamisk diagnose og terapi

Published: April 28, 2022
doi:

Summary

Den chorioallantoiske membranen (CAM) til fugleembryoet er et svært nyttig og anvendelig verktøy for ulike forskningsområder. En spesiell ex ovo-modell av japansk vaktel CAM er egnet for fotodynamisk behandlingsundersøkelse.

Abstract

Den chorioallantoiske membranen (CAM) til et aviært embryo er en tynn, ekstraembryonisk membran som fungerer som et primært respiratorisk organ. Egenskapene gjør den til en utmerket in vivo eksperimentell modell for å studere angiogenese, tumorvekst, legemiddelleveringssystemer eller fotodynamisk diagnose (PDD) og fotodynamisk terapi (PDT). Samtidig adresserer denne modellen kravet om erstatning av forsøksdyr med et egnet alternativ. Ex ovo dyrket embryo tillater enkel stoffpåføring, tilgang, overvåking og dokumentasjon. Den mest brukte er chick CAM; Denne artikkelen beskriver imidlertid fordelene med den japanske vaktelen CAM som en lavpris- og høykapasitetsmodell. En annen fordel er den kortere embryonale utviklingen, noe som gir høyere eksperimentell omsetning. Egnetheten av vaktel CAM for PDD og PDT av kreft og mikrobielle infeksjoner er utforsket her. Som et eksempel beskrives bruken av fotosensibilisatorhypericin i kombinasjon med lipoproteiner eller nanopartikler som et leveringssystem. Skadeskår fra bilder i hvitt lys og endringer i fluorescensintensitet i CAM-vevet under fiolett lys (405 nm) ble fastslått, sammen med analyse av histologiske snitt. Vaktelen CAM viste tydelig effekten av PDT på vaskulatur og vev. Videre kunne endringer som kapillærblødning, trombose, lysis av små kar og blødning av større kar observeres. Japansk vaktel CAM er en lovende in vivo modell for fotodynamisk diagnose og terapiforskning, med anvendelser i studier av tumorangiogenese, samt antivaskulær og antimikrobiell terapi.

Introduction

Kylling chorioallantoic membran (CAM) modellen er kjent og mye brukt i ulike forskningsområder. Det er et rikt vaskularisert ekstraembryonisk organ som gir gassutveksling og mineraltransport1. På grunn av gjennomsiktigheten og tilgjengeligheten til denne membranen, kan individuelle blodkar og deres strukturelle endringer observeres i sanntid2. Til tross for fordelene har kylling CAM også noen begrensninger (f.eks. Større avlsanlegg, eggproduksjon og fôrforbruk) som kan unngås ved å bruke andre fuglearter. I denne protokollen beskrives en alternativ ex ovo CAM-modell ved bruk av japansk vaktel (Coturnix japonica) embryo. På grunn av sin lille størrelse tillater det bruk av et mye større antall eksperimentelle individer enn kylling CAM. Videre er den kortere 16-dagers embryonale utviklingen av vaktelembryoer en annen fordel. De første større fartøyene på vaktel CAM vises på embryonal dag (ED) 7. Dette kan sammenlignes direkte med kyllingembryoutvikling (trinn 4-35); Imidlertid er de senere utviklingsstadiene ikke lenger sammenlignbare og krever mindre tid for vaktelembryoet3. Av interesse er den vanlige forekomsten av mikrovaskulær forgrening som ligner på kylling CAMs 4,5,6. Rask kjønnsmodning, høy eggproduksjon og lavprisavl er andre eksempler som favoriserer bruken av denne eksperimentelle modellen7.

En aviær CAM-modell brukes ofte i fotodynamisk terapi (PDT) studier8. PDT brukes til å behandle flere former for kreft (små lokaliserte svulster) og andre ikke-onkologiske sykdommer. Dens prinsipp er i levering av et fluorescerende stoff, en fotosensibilisator (PS), til det skadede vevet og dets aktivering med lys av riktig bølgelengde. En prospektiv PS som brukes i forskning er hypericin, opprinnelig isolert fra den medisinske planten St. John’s wort (Hypericum perforatum)9. De sterke fotosensibiliserende effektene av denne forbindelsen er basert på dens fotokjemiske og fotofysiske egenskaper. Disse er preget av flere fluorescenseksitasjonstopper i området 400-600 nm, noe som induserer utslipp av fluorescens ved ca. 600 nm. Absorpsjonsmaksimumet for hypericin i spektralbåndet er i området 540-590 nm, og fluorescensmaksima er i området 590-640 nm9. For å oppnå disse fotosensibiliserende effektene, blir hypericin begeistret av laserlys ved en bølgelengde på 405 nm etter lokal administrasjon10. I nærvær av lys kan hypericin utvise virucidale, antiproliferative og cytotoksiske effekter11, mens det ikke er systemisk toksisitet, og det frigjøres raskt fra organismen. Hypericin er et lipofilt stoff som danner vannuoppløselige, ikke-fluorescerende aggregater, og derfor brukes flere typer nanobærere, for eksempel polymere nanopartikler 12,13 eller lipoproteiner med høy og lav tetthet (HDL, LDL) 14,15, for å hjelpe levering og penetrasjon i cellene. Siden CAM er et naturlig immunsviktende system, kan tumorceller implanteres direkte på membranoverflaten. Modellen er også godt egnet til å registrere omfanget av PDT-indusert vaskulær skade i henhold til en definert skår16,17. Lys med lavere intensitet sammenlignet med PDT kan brukes til fotodynamisk diagnose (PDD). Overvåking av vevet under fiolett eksitasjon LED-lys fører også til fotoaktivering av fotosensibilisatorer18,19,20 som resulterer i utslipp av fluorescerende lys, men det gir ikke nok energi til å starte en PDT-reaksjon og skade cellene. Det gjør det til et godt verktøy for tumorvisualisering og diagnose eller overvåking av farmakokinetikken til brukt PSs14,15.

Denne artikkelen beskriver utarbeidelsen av vaktelen ex ovo CAM-analysen med overlevelsesrater over 80%. Denne ex ovo-kulturen ble vellykket brukt i et stort antall eksperimenter.

Protocol

Forskningen ble utført i samsvar med institusjonelle retningslinjer. Alt utstyr og reagenser må autoklaveres eller steriliseres med 70% etanol eller UV-lys. 1. Egg inkubasjon Oppbevar befruktede vaktelegg ved 10-15 °C i maksimalt 4-5 dager før inkubasjonen starter. Bruk bare rene og uskadede egg. Inkuber eggene i en tvungen trekkinkubator i ~ 53-54 timer. Legg eggene horisontalt med eggrotasjonen slått av, ved 50% -60% fuktighet og 37,5 ° C inkubasjon…

Representative Results

Lokaliseringen av svulsten på CAM-overflaten er vanskelig i hvitt lys. Fotosensibilisator (her, hypericin) som brukes i PDD forventes å bli tatt opp selektivt av svulsten og bidrar til å visualisere svulsten. Tillegg av hypericin og bruk av fluorescerende lys (f.eks. 405 nm) viste tumorens (plateepitelkarsinom TE1) posisjon svært godt (figur 6A). Histologisk analyse viste vitale tumorceller som invaderte sunt vev. Konsentriske strukturer av unormale plateepitelceller, ofte beskrevet i pl…

Discussion

For vellykket ex ovo-dyrking er det viktig å følge protokollen ovenfor. Videre, hvis eggene ikke åpnes forsiktig nok eller det ikke er tilstrekkelig fuktighet under dyrking, stikker eggeplommesekken til skallet og brister ofte. Starten på en ex ovo-dyrking på tidspunktet for ca. 60 timers egginkubasjon sikrer den høye overlevelsesgraden til embryoene, da de allerede er store nok til å overleve håndteringen. I de senere utviklingsstadiene blir CAM tynnere og fester seg til eggeskallet, noe som f?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Arbeidet ble støttet av VEGA 2/0042/21 og APVV 20-0129. Bidraget fra V. Huntošová er resultatet av prosjektgjennomføringen: Åpent vitenskapelig samfunn for moderne tverrfaglig forskning i medisin (Akronym: OPENMED), ITMS2014+: 313011V455 støttet av Operational Program Integrated Infrastructure, finansiert av ERDF.

Materials

6-Well Cell Culture Plate Sarstedt 83.392 Transparent polystyrene, sterile
CO2 Incubator ESCO CCL-0508 ESCO, Singapore CCL-050B-8 CO2 cell culture incubator
cryocut Leica CM 1800 Reichert-Jung, USA
digital camera Canon EOS 6D II Canon, Japan
diode laser 405 nm Ocean Optics, USA
DMSO Sigma-Aldrich 67-68-5 dimethyl sulfoxid
eosin Sigma-Aldrich 15086-94-9
ethanol Sigma-Aldrich 64-17-5
fine brush size 2 Faber-Castell 281802 brush for CAM separation and manipulation
glutaraldehyde Sigma-Aldrich 111-30-8
hematoxylin Sigma-Aldrich 517-28-2
hypericin Sigma-Aldrich 84082-80-4
incubator Bios Midi Bios SedlEquation 1any, Czech Republic Forced draught incubator for initial incubation
incubator Memmert IF160 Memmert, Germany Forced air circulation incubator for CAM incubation
Kaiser slimlite plano, LED light box Kaiser, Germany 2453 Transilluminator
LED light 405 nm custom made circular LED light
macro lens Canon MP- E 65 mm f/2.8 Canon, Japan
microscope Kapa 2000 Kvant, Slovakia optical microscope
microtome Auxilab 508 Auxilab, Spain manual rotary microtome
paraformaldehyde Sigma-Aldrich 30525-89-4
Paraplast Plus Sigma-Aldrich P3683 parafin medium for tissue embedding
PBS Sigma-Aldrich P4417 Phosphate saline buffer
scissors Castroviejo Orimed  OR66-108 micro scissors for CAM separation
software ImageJ 1.53 public domain image processing and analysis program
stock solution HDL Sigma-Aldrich 437641-10MG high density lipoproteins
stock solution LDL Sigma-Aldrich 437644-10MG low density lipoproteins
Tissue-Tek O.C.T. Compound Sakura Finetek 4583 Optimal Cutting Temperature Compound 118 mL squeeze bottles

References

  1. Nowak-Sliwinska, P., van Beijnum, J. R., van Berkel, M., vanden Bergh, H., Griffioen, A. W. Vascular regrowth following photodynamic therapy in the chicken embryo chorioallantoic membrane. Angiogenesis. 13 (4), 281-292 (2010).
  2. van Leengoed, H. L. L. M., vander Veen, N., Versteeg, A. A. C., Ouellet, R., van Lier, J. E., Star, W. M. In-vivo photodynamic effects of phthalocyanines in a skin-fold observation chamber model: role of central metal ion and degree of sulfonation. Photochemistry Photobiology. 58 (4), 575-580 (1993).
  3. Ainsworth, S. J., Stanley, R. L., Evans, D. J. R. Developmental stages of the Japanese quail. Journal of Anatomy. 216 (1), 3 (2010).
  4. De Fouw, D. O., Rizzo, V. J., Steinfeld, R., Feinberg, R. N. Mapping of the microcirculation in the chick chorioallantoic membrane during normal angiogenesis. Microvascular Research. 38 (2), 136-147 (1989).
  5. Sandau, K., Kurz, H. Modelling of vascular growth processes: a stochastic biophysical approach to embryonic angiogenesis. Journal of Microscopy. 175 (3), 205-213 (1994).
  6. Kurz, H., Ambrosy, S., Wilting, J., Marmé, D., Christ, B. Proliferation pattern of capillary endothelial cells in chorioallantoic membrane development indicates local growth control, which is counteracted by vascular endothelial growth factor application. Developmental Dynamics. 203 (2), 174-186 (1995).
  7. Huss, D., Poynter, G., Lansford, R. Japanese quail (Coturnix japonica) as laboratory animal model. Lab Animal. 37 (11), 513-519 (2008).
  8. Gottfried, V., Lindenbaum, E. S., Kimel, S. The chick chorioallantoic membrane (CAM) as an in-vivo model for photodynamic therapy. Journal of Photochemistry and Photobiology, B: Biology. 12 (2), 204-207 (1992).
  9. Miškovský, P. Hypericin – a new antiviral and antitumor photosensitizer: mechanism of action and interaction with biological molecules. Current Drug Targets. 3 (1), 55-84 (2002).
  10. Čavarga, I., et al. Photodynamic effect of hypericin after topical application in the ex ovo quail chorioallantoic membrane model. Planta Medica. 80 (1), 56-62 (2014).
  11. Martinez-Poveda, B., Quesada, A. R., Medina, M. A. Hypericin in the dark inhibits key steps of angiogenesis in vitro. Europan Journal of Pharmacology. 516 (2), 97-103 (2005).
  12. Datta, S., et al. Unravelling the excellent chemical stability and bioavailability of solvent responsive curcumin-loaded 2-ethyl-2-oxazoline-grad-2-(4-dodecyloxyphenyl)- 2-oxazoline copolymer nanoparticles for drug delivery. Biomacromolecules. 19 (7), 2459-2471 (2018).
  13. Huntošová, V., et al. Alkyl Chain length in poly(2-oxazoline)-based amphiphilic gradient copolymers regulates the delivery of hydrophobic molecules: a case of the biodistribution and the photodynamic activity of the photosensitizer hypericin. Biomacromolecules. 22 (10), 4199-4216 (2021).
  14. Buríková, M., et al. Hypericin fluorescence kinetics in the presence of low density lipoproteins: study on quail CAM assay for topical delivery. General Physiology and Biophysic. 35 (4), 459-468 (2016).
  15. Lenkavska, L., et al. Benefits of hypericin transport and delivery by low- and high-density lipoproteins to cancer cells: From in vitro to ex ovo. Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 25, 214-224 (2019).
  16. Rück, A., Böhmler, A., Steiner, R. PDT with TOOKAD studied in the chorioallantoic membrane of fertilized eggs. Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 2 (1), 79-90 (2005).
  17. Gottfried, V., Davidi, R., Averbuj, C., Kimel, S. In vivo damage to chorioallantoic membrane blood vessels by porphycene-induced photodynamic therapy. Journal of Photochemistry and Photobiology, B: Biology. 30 (2-3), 115-121 (1995).
  18. Buzzá, H. H., Silva, L. V., Moriyama, L. T., Bagnato, V. S., Kurachi, C. Evaluation of vascular effect of Photodynamic Therapy in chorioallantoic membrane using different photosensitizers. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. 138, 1-7 (2014).
  19. Dougherty, T. J., et al. Photodynamic therapy. Journal of the National Cancer Institute. 90, 889-905 (1998).
  20. Xiang, L., et al. Real-time optoacoustic monitoring of vascular damage during photodynamic therapy treatment of tumor. Journal of Biomedical Optics. 12 (1), 01400-01408 (2007).
  21. Foty, R. A simple hanging drop cell culture protocol for generation of 3D spheroids. Journal of Visualized Experiments. (51), 2720 (2011).
  22. Abramoff, M. D., Magelhaes, P. J., Ram, S. J. Image Processing with ImageJ. Biophotonics International. 11 (7), 36-42 (2004).
  23. Chomczynski, P., Sacchi, N. Single-step method of RNA isolation by acid guanidium thiocyanate-phenol-chloroform extraction. Analytical Biochemistry. 162 (1), 156-159 (1987).
  24. Máčajová, M., Čavarga, I., Sýkorová, M., Valachovič, M., Novotná, V., Bilčík, B. Modulation of angiogenesis by topical application of leptin and high and low molecular heparin using the Japanese quail chorioallantoic membrane model. Saudi Journal of Biological Sciences. 27 (6), 1488-1493 (2020).
  25. Mangir, N., Dikici, S., Claeyssens, F., MacNeil, S. Using Ex Ovo chick chorioallantoic membrane (CAM) assay to evaluate the biocompatibility and angiogenic response to biomaterials. ACS Biomaterials Science Engineering. 5 (7), 3190-3200 (2019).
  26. Marshall, K. M., Kanczler, J. M., Oreffo, R. O. C. Evolving applications of the egg: chorioallantoic membrane assay and ex vivo organotypic culture of materials for bone tissue engineering. Journal of Tissue Engineering. 11, 1-25 (2020).
  27. Merlos Rodrigo, M. A., et al. Extending the applicability of in ovo and ex ovo chicken chorioallantoic membrane assays to study cytostatic activity in neuroblastoma cells. Frontiers in Oncology. 11, 1-10 (2021).
  28. Meta, M., Kundeková, B., Bilčík, B., Máčajová, M. The effect of silicone ring application on CAM vasculature in Japanese Quail (Coturnix japonica). Proceedings of the Student Scientific Conference Faculty of Natural Sciences of Comenius University, Bratislava, Slovakia. , 385-390 (2019).
  29. Kohli, N., et al. Pre-screening the intrinsic angiogenic capacity of biomaterials in an optimised ex ovo chorioallantoic membrane model. Journal of Tissue Engineering. 11, 1-15 (2020).
  30. Kundeková, B., Máčajová, M., Meta, M., Čavarga, I., Bilčík, B. Chorioallantoic membrane models of various avian species differences and applications. Biology-Basel. 10 (4), 301 (2021).
  31. Parsons-Wingerter, P., Elliott, K. E., Clark, J. I., Farr, A. G. Fibroblast growth factor-2 selectively stimulates angiogenesis of small vessels in arterial tree. Arteriosclerosis, Thrombosis and Vascular Biology. 20 (5), 1250-1256 (2000).
  32. Buzzá, H. H., Zangirolami, A. C., Davis, A., Gómez-García, P. B., Kurachi, C. Fluorescence analysis of a tumor model in the chorioallantoic membrane used for the evaluation of different photosensitizers for photodynamic therapy. Photodiagnosis and Photodynamic Therapy. 19, 78-83 (2017).
check_url/63422?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Máčajová, M., Huntošová, V., Meta, M., Kundeková, B., Čavarga, I., Bilčík, B. Quail Chorioallantoic Membrane – A Tool for Photodynamic Diagnosis and Therapy. J. Vis. Exp. (182), e63422, doi:10.3791/63422 (2022).

View Video