Den chorioallantoiske membranen (CAM) til fugleembryoet er et svært nyttig og anvendelig verktøy for ulike forskningsområder. En spesiell ex ovo-modell av japansk vaktel CAM er egnet for fotodynamisk behandlingsundersøkelse.
Den chorioallantoiske membranen (CAM) til et aviært embryo er en tynn, ekstraembryonisk membran som fungerer som et primært respiratorisk organ. Egenskapene gjør den til en utmerket in vivo eksperimentell modell for å studere angiogenese, tumorvekst, legemiddelleveringssystemer eller fotodynamisk diagnose (PDD) og fotodynamisk terapi (PDT). Samtidig adresserer denne modellen kravet om erstatning av forsøksdyr med et egnet alternativ. Ex ovo dyrket embryo tillater enkel stoffpåføring, tilgang, overvåking og dokumentasjon. Den mest brukte er chick CAM; Denne artikkelen beskriver imidlertid fordelene med den japanske vaktelen CAM som en lavpris- og høykapasitetsmodell. En annen fordel er den kortere embryonale utviklingen, noe som gir høyere eksperimentell omsetning. Egnetheten av vaktel CAM for PDD og PDT av kreft og mikrobielle infeksjoner er utforsket her. Som et eksempel beskrives bruken av fotosensibilisatorhypericin i kombinasjon med lipoproteiner eller nanopartikler som et leveringssystem. Skadeskår fra bilder i hvitt lys og endringer i fluorescensintensitet i CAM-vevet under fiolett lys (405 nm) ble fastslått, sammen med analyse av histologiske snitt. Vaktelen CAM viste tydelig effekten av PDT på vaskulatur og vev. Videre kunne endringer som kapillærblødning, trombose, lysis av små kar og blødning av større kar observeres. Japansk vaktel CAM er en lovende in vivo modell for fotodynamisk diagnose og terapiforskning, med anvendelser i studier av tumorangiogenese, samt antivaskulær og antimikrobiell terapi.
Kylling chorioallantoic membran (CAM) modellen er kjent og mye brukt i ulike forskningsområder. Det er et rikt vaskularisert ekstraembryonisk organ som gir gassutveksling og mineraltransport1. På grunn av gjennomsiktigheten og tilgjengeligheten til denne membranen, kan individuelle blodkar og deres strukturelle endringer observeres i sanntid2. Til tross for fordelene har kylling CAM også noen begrensninger (f.eks. Større avlsanlegg, eggproduksjon og fôrforbruk) som kan unngås ved å bruke andre fuglearter. I denne protokollen beskrives en alternativ ex ovo CAM-modell ved bruk av japansk vaktel (Coturnix japonica) embryo. På grunn av sin lille størrelse tillater det bruk av et mye større antall eksperimentelle individer enn kylling CAM. Videre er den kortere 16-dagers embryonale utviklingen av vaktelembryoer en annen fordel. De første større fartøyene på vaktel CAM vises på embryonal dag (ED) 7. Dette kan sammenlignes direkte med kyllingembryoutvikling (trinn 4-35); Imidlertid er de senere utviklingsstadiene ikke lenger sammenlignbare og krever mindre tid for vaktelembryoet3. Av interesse er den vanlige forekomsten av mikrovaskulær forgrening som ligner på kylling CAMs 4,5,6. Rask kjønnsmodning, høy eggproduksjon og lavprisavl er andre eksempler som favoriserer bruken av denne eksperimentelle modellen7.
En aviær CAM-modell brukes ofte i fotodynamisk terapi (PDT) studier8. PDT brukes til å behandle flere former for kreft (små lokaliserte svulster) og andre ikke-onkologiske sykdommer. Dens prinsipp er i levering av et fluorescerende stoff, en fotosensibilisator (PS), til det skadede vevet og dets aktivering med lys av riktig bølgelengde. En prospektiv PS som brukes i forskning er hypericin, opprinnelig isolert fra den medisinske planten St. John’s wort (Hypericum perforatum)9. De sterke fotosensibiliserende effektene av denne forbindelsen er basert på dens fotokjemiske og fotofysiske egenskaper. Disse er preget av flere fluorescenseksitasjonstopper i området 400-600 nm, noe som induserer utslipp av fluorescens ved ca. 600 nm. Absorpsjonsmaksimumet for hypericin i spektralbåndet er i området 540-590 nm, og fluorescensmaksima er i området 590-640 nm9. For å oppnå disse fotosensibiliserende effektene, blir hypericin begeistret av laserlys ved en bølgelengde på 405 nm etter lokal administrasjon10. I nærvær av lys kan hypericin utvise virucidale, antiproliferative og cytotoksiske effekter11, mens det ikke er systemisk toksisitet, og det frigjøres raskt fra organismen. Hypericin er et lipofilt stoff som danner vannuoppløselige, ikke-fluorescerende aggregater, og derfor brukes flere typer nanobærere, for eksempel polymere nanopartikler 12,13 eller lipoproteiner med høy og lav tetthet (HDL, LDL) 14,15, for å hjelpe levering og penetrasjon i cellene. Siden CAM er et naturlig immunsviktende system, kan tumorceller implanteres direkte på membranoverflaten. Modellen er også godt egnet til å registrere omfanget av PDT-indusert vaskulær skade i henhold til en definert skår16,17. Lys med lavere intensitet sammenlignet med PDT kan brukes til fotodynamisk diagnose (PDD). Overvåking av vevet under fiolett eksitasjon LED-lys fører også til fotoaktivering av fotosensibilisatorer18,19,20 som resulterer i utslipp av fluorescerende lys, men det gir ikke nok energi til å starte en PDT-reaksjon og skade cellene. Det gjør det til et godt verktøy for tumorvisualisering og diagnose eller overvåking av farmakokinetikken til brukt PSs14,15.
Denne artikkelen beskriver utarbeidelsen av vaktelen ex ovo CAM-analysen med overlevelsesrater over 80%. Denne ex ovo-kulturen ble vellykket brukt i et stort antall eksperimenter.
For vellykket ex ovo-dyrking er det viktig å følge protokollen ovenfor. Videre, hvis eggene ikke åpnes forsiktig nok eller det ikke er tilstrekkelig fuktighet under dyrking, stikker eggeplommesekken til skallet og brister ofte. Starten på en ex ovo-dyrking på tidspunktet for ca. 60 timers egginkubasjon sikrer den høye overlevelsesgraden til embryoene, da de allerede er store nok til å overleve håndteringen. I de senere utviklingsstadiene blir CAM tynnere og fester seg til eggeskallet, noe som f?…
The authors have nothing to disclose.
Arbeidet ble støttet av VEGA 2/0042/21 og APVV 20-0129. Bidraget fra V. Huntošová er resultatet av prosjektgjennomføringen: Åpent vitenskapelig samfunn for moderne tverrfaglig forskning i medisin (Akronym: OPENMED), ITMS2014+: 313011V455 støttet av Operational Program Integrated Infrastructure, finansiert av ERDF.
6-Well Cell Culture Plate | Sarstedt | 83.392 | Transparent polystyrene, sterile |
CO2 Incubator ESCO CCL-0508 | ESCO, Singapore | CCL-050B-8 | CO2 cell culture incubator |
cryocut Leica CM 1800 | Reichert-Jung, USA | ||
digital camera Canon EOS 6D II | Canon, Japan | ||
diode laser 405 nm | Ocean Optics, USA | ||
DMSO | Sigma-Aldrich | 67-68-5 | dimethyl sulfoxid |
eosin | Sigma-Aldrich | 15086-94-9 | |
ethanol | Sigma-Aldrich | 64-17-5 | |
fine brush size 2 | Faber-Castell | 281802 | brush for CAM separation and manipulation |
glutaraldehyde | Sigma-Aldrich | 111-30-8 | |
hematoxylin | Sigma-Aldrich | 517-28-2 | |
hypericin | Sigma-Aldrich | 84082-80-4 | |
incubator Bios Midi | Bios Sedlany, Czech Republic | Forced draught incubator for initial incubation | |
incubator Memmert IF160 | Memmert, Germany | Forced air circulation incubator for CAM incubation | |
Kaiser slimlite plano, LED light box | Kaiser, Germany | 2453 | Transilluminator |
LED light 405 nm | custom made circular LED light | ||
macro lens Canon MP- E 65 mm f/2.8 | Canon, Japan | ||
microscope Kapa 2000 | Kvant, Slovakia | optical microscope | |
microtome Auxilab 508 | Auxilab, Spain | manual rotary microtome | |
paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | 30525-89-4 | |
Paraplast Plus | Sigma-Aldrich | P3683 | parafin medium for tissue embedding |
PBS | Sigma-Aldrich | P4417 | Phosphate saline buffer |
scissors Castroviejo | Orimed | OR66-108 | micro scissors for CAM separation |
software ImageJ 1.53 | public domain | image processing and analysis program | |
stock solution HDL | Sigma-Aldrich | 437641-10MG | high density lipoproteins |
stock solution LDL | Sigma-Aldrich | 437644-10MG | low density lipoproteins |
Tissue-Tek O.C.T. Compound | Sakura Finetek | 4583 | Optimal Cutting Temperature Compound 118 mL squeeze bottles |