Summary

Tillverkning av mikromönstrat chip med kontrollerad tjocklek för kryogen elektronmikroskopi med hög genomströmning

Published: April 21, 2022
doi:

Summary

Ett nyutvecklat mikromönstrat chip med grafenoxidfönster tillverkas genom att tillämpa mikroelektromekaniska systemtekniker, vilket möjliggör effektiv och högkapacitet kryogen elektronmikroskopiavbildning av olika biomolekyler och nanomaterial.

Abstract

En viktig begränsning för effektiv strukturanalys med hög genomströmning av biomolekyler med kryogen elektronmikroskopi (kryo-EM) är svårigheten att förbereda kryo-EM-prover med kontrollerad istjocklek på nanoskalan. Det kisel (Si)-baserade chipet, som har en vanlig uppsättning mikrohål med grafenoxidfönster (GO) mönstrat på en tjocklekskontrollerad kiselnitridfilm (SixNy), har utvecklats genom att tillämpa mikroelektromekaniska system (MEMS) tekniker. UV-fotolitografi, kemisk ångavsättning, våt och torr etsning av den tunna filmen och droppgjutning av 2D-nanoarkmaterial användes för massproduktion av de mikromönstrade chipsen med GO-fönster. Mikrohålens djup regleras för att kontrollera istjockleken på begäran, beroende på provets storlek för kryo-EM-analys. Den gynnsamma affiniteten hos GO mot biomolekyler koncentrerar biomolekylerna av intresse i mikrohålet under kryo-EM-provberedning. Det mikromönstrade chipet med GO-fönster möjliggör kryo-EM-avbildning med hög genomströmning av olika biologiska molekyler, såväl som oorganiska nanomaterial.

Introduction

Kryogen elektronmikroskopi (kryo-EM) har utvecklats för att lösa den tredimensionella (3D) strukturen hos proteiner i deras ursprungliga tillstånd 1,2,3,4. Tekniken innebär att proteiner fixeras i ett tunt skikt (10-100 nm) glasartad is och att man får projektionsbilder av slumpmässigt orienterade proteiner med hjälp av ett transmissionselektronmikroskop (TEM), med provet bibehållet vid flytande kvävetemperatur. Tusentals till miljoner projektionsbilder förvärvas och används för att rekonstruera en 3D-struktur av proteinet med hjälp av beräkningsalgoritmer 5,6. För framgångsrik analys med cryo-EM har kryoprovberedning automatiserats genom att doppa och frysa utrustningen som styr blottingförhållandena, fuktigheten och temperaturen. Provlösningen laddas på ett TEM-rutnät med ett håligt kolmembran, blottas successivt för att avlägsna överskottslösningen och störtfryses sedan med flytande etan för att producera tunn, glasaktig is 1,5,6. Med framstegen inom kryo-EM och automatiseringen av provberedning7 har kryo-EM alltmer använts för att lösa proteinernas struktur, inklusive kuvertproteiner för virus och jonkanalproteiner i cellmembranet 8,9,10. Strukturen hos kuvertproteiner av patogena viruspartiklar är viktig för att förstå virusinfektionspatologi, liksom för att utveckla diagnossystemet och vaccinerna, t.ex. SARS-CoV-211, som orsakade COVID-19-pandemin. Dessutom har kryo-EM-tekniker nyligen tillämpats på materialvetenskap, såsom för avbildning av strålkänsliga material som används i batteri 12,13,14 och katalytiska system 14,15 och analys av strukturen hos oorganiska material i lösningstillstånd16.

Trots märkbar utveckling inom kryo-EM och relevanta tekniker finns det begränsningar i kryoprovberedning, vilket hindrar 3D-strukturanalys med hög genomströmning. Att förbereda en glasartad isfilm med optimal tjocklek är särskilt viktigt för att erhålla 3D-strukturen hos biologiska material med atomär upplösning. Isen måste vara tillräckligt tunn för att minimera bakgrundsbrus från elektroner som sprids av isen och för att förhindra överlappningar av biomolekyler längs elektronstrålens väg 1,17. Men om isen är för tunn kan det få proteinmolekyler att anpassa sig i föredragna riktningar eller denaturera 18,19,20. Därför bör tjockleken på glasis optimeras beroende på storleken på materialet av intresse. Dessutom krävs vanligtvis omfattande ansträngningar för provberedning och manuell screening av is- och proteinintegritet på de beredda TEM-gallren. Denna process är extremt tidskrävande, vilket hindrar dess effektivitet för 3D-strukturanalys med hög genomströmning. Därför skulle förbättringar av tillförlitligheten och reproducerbarheten av kryo-EM-provberedning förbättra användningen av kryo-EM i strukturbiologi och kommersiell läkemedelsupptäckt, liksom för materialvetenskap.

Här introducerar vi mikrofabrikationsprocesser för att göra ett mikromönstrat chip med grafenoxidfönster (GO) utformade för kryo-EM med hög genomströmning med kontrollerad istjocklek21. Det mikromönstrade chipet tillverkades med hjälp av mikroelektromekaniska systemtekniker (MEMS), som kan manipulera chipets struktur och dimensioner beroende på avbildningsändamålen. Det mikromönstrade chipet med GO-fönster har en mikrowellstruktur som kan fyllas med provlösningen, och mikrobrunnens djup kan regleras för att kontrollera tjockleken på glasisen. Gos starka affinitet för biomolekyler ökar koncentrationen av biomolekyler för visualisering, vilket förbättrar effektiviteten i strukturanalysen. Dessutom består det mikromönstrade chipet av en Si-ram, vilket ger hög mekanisk stabilitet för gallret19, vilket gör det idealiskt för hantering av chipet under provberedningsförfaranden och kryo-EM-avbildning. Därför ger ett mikromönstrat chip med GO-fönster tillverkade av MEMS-tekniker tillförlitlighet och reproducerbarhet för kryo-EM-provberedning, vilket kan möjliggöra effektiv strukturanalys med hög genomströmning baserad på kryo-EM.

Protocol

1. Tillverkning av mikromönstrat chip med GO-fönster (figur 1) Sätt av kiselnitriden.Deponera kiselnitrid med låg spänning (SixNy) på båda sidor av Si-skivan (4 tum diameter och 100 μm tjocklek) med användning av kemisk ångavsättning med lågt tryck (LPCVD) vid 830 °C och ett tryck på 150 mTorr, under ett flöde av 170 sccm diklorsilan (SiH2Cl2, DCS) och 38 sccm ammoniak (NH3</su…

Representative Results

Ett mikromönstrat chip med GO-fönster tillverkades genom MEMS-tillverkning och 2D GO nanoarköverföring. Chips för mikromönster massproducerades, med cirka 500 chips producerade från en 4 i skiva (figur 1B och figur 2A, B). Designen av de mikromönstrade chipsen kan manipuleras med olika mönster av krommasken (figur 2) under fotolitografiproceduren. De tillverkade mikromönstrade chipsen hade kontrollerade an…

Discussion

Mikrofabrikationsprocesserna för att producera mikromönstrade chips med GO-fönster introduceras här. Det tillverkade mikromönstrade chipet är utformat för att reglera tjockleken på glasartsskiktet genom att kontrollera mikrohålets djup med GO-fönster beroende på storleken på materialet som ska analyseras. Ett mikromönstrat chip med GO-fönster tillverkades med hjälp av en serie MEMS-tekniker och en 2D-nanoarköverföringsmetod (figur 1). Den största fördelen med att använda …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

M.-H.K., S.K., M.L. och J.P. erkänner det ekonomiska stödet från Institute for Basic Science (Grant No. IBS-R006-D1). S.K., M.L. och J.P. erkänner det ekonomiska stödet från Creative-Pioneering Researchers Program genom Seoul National University (2021) och NRF-bidraget finansierat av den koreanska regeringen (MSIT; Bidrag nr. NRF-2020R1A2C2101871 och NRF-2021M3A9I4022936). M.L. och J.P. erkänner det ekonomiska stödet från POSCO Science Fellowship of POSCO TJ Park Foundation och NRF-bidraget som finansieras av den koreanska regeringen (MSIT; Bidrag nr. NRF-2017R1A5A1015365). J.P. erkänner det ekonomiska stödet från det nrf-bidrag som finansieras av den koreanska regeringen (MSIT; Bidrag nr. NRF-2020R1A6C101A183) och de tvärvetenskapliga forskningsinitiativprogrammen från College of Engineering och College of Medicine, Seoul National University (2021). M.-H.K. erkänner det ekonomiska stödet från det nrf-bidrag som finansieras av den koreanska regeringen (MSIT; Bidrag nr. NRF-2020R1I1A1A0107416612). Författarna tackar personalen och besättningen på Seoul National University Center for Macromolecular and Cell Imaging (SNU CMCI) för deras outtröttliga ansträngningar och uthållighet med kryo-EM-experimenten. Författarna tackar SJ Kim från National Center for Inter-university Research Facilities för hjälp med FIB-SEM-experimenten.

Materials

1-methyl-2-pyrrolidinone (NMP) Sigma Aldrich, USA 443778
Acetone
AFM Park Systems, South Korea NX-10
Aligner Midas System, South Korea MDA-600S
AZ 300 MIF developer AZ Electronic Materials USA Corp., USA 184411
Cryo-EM holder Gatan, USA 626 single tilt cryo-EM holder
Cryo-plunging machine Thermo Fisher SCIENTIFIC, USA Vitrobot Mark IV
Focused ion beam-scanning electron microscopy (FIB-SEM) FEI Company, USA Helios NanoLab 650
Glow discharger Ted Pella Inc., USA PELCO easiGlow
Graphene oxide (GO) solution Sigma Aldrich, USA 763705
Hexamethyldisizazne (HMDS), 98+% Alfa Aesar, USA 10226590
Low pressure chemical vapor deposition (LPCVD) Centrotherm, Germany LPCVD E1200
maP1205 positive PR Micro resist technology, Germany A15139
Potassium hydroxide (KOH), flake DAEJUNG CHEMICALS & METALS Co. LTD., South Korea 6597-4400
Raman Spectrometer NOST, South Korea Confocal Micro Raman System HEDA
Reactive ion etcher (RIE) Scientific Engineering, South Korea Lab-built
SEM Carl Zeiss, Germany SUPRA 55VP
Si wafer JP COMMERCE, South Korea 4" Silicon wafer, P(B)type, (100), 1-30ohm.c m, DSP, T:100um
Spin coater Dong Ah Trade Corp., South Korea ACE-200
TEM JEOL, Japan JEM-2100F

References

  1. Dillard, R. S., et al. Biological applications at the cutting edge of cryo-electron microscopy. Microscopy and Microanalysis. 24 (4), 406-419 (2018).
  2. Meyerson, J. R., et al. Self-assembled monolayers improve protein distribution on holey carbon cryo-EM supports. Scientific Reports. 4, (2014).
  3. Palovcak, E., et al. A simple and robust procedure for preparing graphene-oxide cryo-EM grids. Journal of Structural Biology. 204 (1), 80-84 (2018).
  4. Xu, B. J., Developments Liu, L. applications, and prospects of cryo-electron microscopy. Protein Science. 29 (4), 872-882 (2020).
  5. Stewart, P. L. Cryo-electron microscopy and cryo-electron tomography of nanoparticles. Wiley Interdisciplinary Reviews-Nanomedicine and Nanobiotechnology. 9 (2), (2017).
  6. Murata, K., Wolf, M. Cryo-electron microscopy for structural analysis of dynamic biological macromolecules. Biochimica Et Biophysica Acta-General Subjects. 1862 (2), 324-334 (2018).
  7. Darrow, M. C., et al. Chameleon: next generation sample preparation for cryoEM based on spotiton. Acta Crystallographica a-Foundation and Advances. 75, 424 (2019).
  8. Hite, R. K., Tao, X., MacKinnon, R. Structural basis for gating the high-conductance Ca2+-activated K+ channel. Nature. 541 (7635), 52-57 (2017).
  9. Zhang, Y., et al. Cryo-EM structure of the activated GLP-1 receptor in complex with a G protein. Nature. 546 (7657), 248-253 (2017).
  10. Shaik, M. M., et al. Structural basis of coreceptor recognition by HIV-1 envelope spike. Nature. 565 (7739), 318-323 (2019).
  11. Liu, C., et al. The architecture of inactivated SARS-CoV-2 with postfusion spikes revealed by cryo-EM and cryo-ET. Structure. 28 (11), 1218-1224 (2020).
  12. Ren, X. C., Zhang, X. Q., Xu, R., Huang, J. Q., Zhang, Q. Analyzing energy materials by cryogenic electron microscopy. Advanced Materials. 32 (24), 1908293 (2020).
  13. Li, Y. Z., et al. Atomic structure of sensitive battery materials and Interfaces revealed by cryo-electron microscopy. Science. 358 (6362), 506-510 (2017).
  14. Li, Y. B., Huang, W., Li, Y. Z., Chiu, W., Cui, Y. Opportunities for cryogenic electron microscopy in materials science and nanoscience. Acs Nano. 14 (8), 9263-9276 (2020).
  15. Kim, Y., et al. Uniform synthesis of palladium species confined in a small-pore zeolite via full ion-exchange investigated by cryogenic electron microscopy. Journal of Materials Chemistry A. 9 (35), 19796-19806 (2021).
  16. Baumgartner, J., et al. Nucleation and growth of magnetite from solution. Nature Materials. 12 (4), 310-314 (2013).
  17. Rice, W. J., et al. Routine determination of ice thickness for cryo-EM grids. Journal of Structural Biology. 204 (1), 38-44 (2018).
  18. D’Imprima, E., et al. Protein denaturation at the air-water interface and how to prevent it. Elife. 8, 42747 (2019).
  19. Alden, N. A., et al. Cryo-EM-on-a-chip: custom-designed substrates for the 3D analysis of macromolecules. Small. 15 (21), 1900918 (2019).
  20. Naydenova, K., Peet, M. J., Russo, C. J. Multifunctional graphene supports for electron cryomicroscopy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 116 (24), 11718-11724 (2019).
  21. Kang, M. H., et al. Graphene oxide-supported microwell grids for preparing cryo-EM samples with controlled ice thickness. Advanced Materials. 33 (43), 2102991 (2021).
  22. Johra, F. T., Lee, J. W., Jung, W. G. Facile and safe graphene preparation on solution based platform. Journal of Industrial and Engineering Chemistry. 20 (5), 2883-2887 (2014).
  23. Yang, C., Pham, J. Characteristic study of silicon nitride films deposited by LPCVD and PECVD. Silicon. 10 (6), 2561-2567 (2018).
  24. Olson, J. M. Analysis of LPCVD process conditions for the deposition of low stress silicon nitride. Part I: preliminary LPCVD experiments. Materials Science in Semiconductor Processing. 5 (1), 51-60 (2002).
  25. Zheng, B. R., Zhou, C., Wang, Q., Chen, Y. F., Xue, W. Deposition of low stress silicon nitride thin film and its application in surface micromachining device structures. Advances in Materials Science and Engineering. 2013, 835942 (2013).
  26. Chuang, W. H., Fettig, R. K., Ghodssi, R. An electrostatic actuator for fatigue testing of low-stress LPCVD silicon nitride thin films. Sensors and Actuators a-Physical. 121 (2), 557-565 (2005).
  27. Shafikov, A., et al. Strengthening ultrathin Si3N4 membranes by compressive surface stress. Sensors and Actuators a-Physical. 317, 112456 (2021).
  28. Ng, W. H., et al. Controlling and modelling the wetting properties of III-V semiconductor surfaces using re-entrant nanostructures. Scientific Reports. 8, 3544 (2018).
  29. Han, D., et al. Nanopore-templated silver nanoparticle arrays photopolymerized in zero-mode waveguides. Frontiers in Chemistry. 7, 216 (2019).
  30. Escobedo, C. On-chip nanohole array based sensing: a review. Lab Chip. 13, 2445-2463 (2013).
check_url/63739?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Kang, M., Lee, M., Kang, S., Park, J. Fabrication of Micro-Patterned Chip with Controlled Thickness for High-Throughput Cryogenic Electron Microscopy. J. Vis. Exp. (182), e63739, doi:10.3791/63739 (2022).

View Video