Summary

En fotodynamisk tilnærming til å studere funksjonen av intracellulær vesikkelbrudd

Published: March 17, 2023
doi:

Summary

AlPcS2a-mediert kromoforassistert laserinaktivering (CALI) er et kraftig verktøy for å studere spatiotemporal skade av intracellulære vesikler (IV) i levende celler.

Abstract

Intracellulære vesikler (IV) dannes gjennom endocytose av vesikler til cytoplasma. IV-dannelse er involvert i aktivering av forskjellige signalveier gjennom permeabilisering av IV-membraner og dannelse av endosomer og lysosomer. En metode som kalles kromoforassistert laserinaktivering (CALI) brukes til å studere dannelsen av IV og materialene i å kontrollere IV-regulering. CALI er en bildebasert fotodynamisk metodikk for å studere signalveien indusert av membranpermeabilisering. Metoden tillater spatiotemporal manipulering av den valgte organellen som skal permeabiliseres i en celle. CALI-metoden har blitt brukt til å observere og overvåke spesifikke molekyler gjennom permeabilisering av endosomer og lysosomer. Membranbrudd av IVs er kjent for å selektivt rekruttere glykanbindende proteiner, slik som galektin-3. Her beskriver protokollen induksjon av IV-ruptur av AlPcS2a og bruk av galektin-3 som markør for å merke nedsatte lysosomer, noe som er nyttig for å studere nedstrømseffektene av IV-membranbrudd og deres nedstrømseffekter under ulike situasjoner.

Introduction

Endosomer, en type intracellulær vesikkel (IV), dannes ved endocytose og modnes deretter til lysosomer. Ulike intracellulære signalveier er involvert i dannelsen av IVer; I tillegg kan forskjellige indre og ytre stimuli skade IVs (f.eks. patogener kan unnslippe fra den begrensede membranen under infeksjon og gå inn i cytoplasma1). Dette er vanligvis ledsaget av brudd på endocytotiske vesikler2. Derfor kan teknikkene for å målrette og skade IVs brukes i relaterte studier3.

Fotodynamisk terapi (PDT) er en lysavhengig terapi for å bekjempe sykdommer ved å drepe svulster eller patogener4. I PDT er målrettede celler merket med ikke-giftige kromoforer, kalt fotosensibilisatorer, som kan aktiveres lokalt ved lysbelysning 5,6. Fotosensibilisatorer absorberer energi fra lys og forvandles til en opphisset singlettilstand, noe som fører til den langlivede eksiterte trillingtilstanden. Fotosensibilisatorer av tripletttilstanden kan gjennomgå elektron- eller energioverføring og danne reaktive oksygenarter (ROS) i nærvær av oksygen, og kan romlig ødelegge merkede celler i belysningsområdet7. Konsekvensen varierer avhengig av lysets kraft8. Ved å kontrollere konsentrasjonen av fotosensibilisatorer og intensiteten av lysbelysning, kan målrettede biomolekyler selektivt inaktiveres uten cellelyse, betegnet som kromoforassistert lysinaktivering (CALI)9. Med den betydelige utviklingen av fotosensibilisatorer som selektivt kan merke forskjellige subcellulære mål, har CALI blitt et verdifullt verktøy for å kontrollere lysmediert inaktivering av biomolekyler for små biomolekyler som nukleotider og proteiner, samt organeller som mitokondrier og endo-lysosomer 3,10,11,12,13.

Sammenlignet med CALI brukes kjemiske eller fysiske metoder også for å svekke membraner, for eksempel bakteriell toksin 14,15 og Leu-Leu-OMe 16-behandling for lysosomal skade. Imidlertid viser disse metodene bulk svekkelse av IVs i celler. Robuste fotosensibilisatorer (dvs. Al(III)ftalocyaninkloriddisulfonsyre (AlPcS2a)) brukes i CALI; AlPcS2a, rettet mot lysosomene gjennom endocytose, brukes til å bryte endosomer eller lysosomer i et kontrollert område17. AlPcS2a er en cellemembran-ugjennomtrengelig ftalocyaninbasert kromofor som binder seg til lipid på plasmamembran og internaliseres gjennom endocytose og til slutt akkumuleres i lysosomet gjennom endocytisk vei18. Den absorberer lys i et nær-infrarødt spektralområde og genererer singlet oksygen, en stor ROS generert av eksitert AlPcS2a18. Singlet oksygenhenfall begrenser raskt diffusjons- og reaksjonsavstanden innenfor et lite område i celler (ca. 10-20 nm)19. Ved å justerevarigheten av AlPcS 2a-inkubasjon og lysbelysning, er spatiotemporal kontroll av skaden av IV innenfor et subcellulært område tillatt. CALI blir derfor et kraftig verktøy for å undersøke konsekvensene av IV-skade, og dannelse og regulering av IV.

I denne studien adresseres en spesifikk protokoll for CALI ved bruk av AlPcS2a som fotosensibilisator. Denne protokollen kan brukes på ulike typer IV, inkludert endosomer og lysosomer, og brukes til å undersøke oppfølgingsresponsene etter membranbrudd. HeLa-celler som uttrykker fluoroforkonjugert galektin-316,20 avslørt etter lysosomruptur, brukes til å demonstrere denne protokollen.

Protocol

1. AlPcS2a lagerforberedelse Løs opp 10 mg AlPcS2a i 400 μL med 0,1 M NaOH. For å forbedre løseligheten, varm opp oppløsningen ved 50 °C og virvel. Bland oppløsningen med 4 ml fosfatbufret saltvann (PBS). Filtrer deretter løsningen med et 0,22 μm filter for å fjerne de uoppløselige utfellingene. Mål konsentrasjonen av oppløsningen gjennom et UV-Vis-spektrofotometer. Ekstinksjonskoeffisienten til AlPcS2a ved 672 nm er 4 x 104…

Representative Results

En skjematisk figur som representerer AlPcS 2a-indusert skade av IV, inkludert endosom og lysosom, er vist (figur 1). Kommersielt tilgjengelige markører kan brukes til å bestemme AlPcS2a-fargeforholdene . For eksempel AlPcS2a puncta og grønt fluorescerende fargestoff22 samlokalisering (figur 2). Fluoroformerket galektin-3 kan brukes som indikator f…

Discussion

AlPcS2a binder seg til plasmamembranen, blir deretter internalisert ved endocytose og akkumuleres til slutt i lysosomer. AlPcS2a kan dermed lokaliseres i de subcellulære rommene ved å justere inkubasjonsvarigheten. En begrensning av denne metoden er at bare en underpopulasjon av IV kan merkes av AlPcS2a gjennom endocytose fordi det er mange andre membrankilder til IV, som ER og Golgi-apparater. I tillegg vil den selektive merkingen av AlPcS2a i tidlige eller sene endosomer v?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Academia Sinica Inflammation Core Facility, IBMS for forskningsstøtte. Kjernefasiliteten er finansiert av Academia Sinica Core Facility and Innovative Instrument Project (AS-CFII-111-213). Forfatterne takker Common Equipment Core Facility ved Institute of Biomedical Sciences (IBMS), Academia Sinica (AS) for å hjelpe bildeoppkjøpet.

Materials

Reagent
Al(III) Phthalocyanine Chloride Disulfonic acid (AlPcS2a) Frontier Scientific P40632
Culture dish ibidi 812128-200
Culture Medium DMEM supplemented with 10% FBS and 100 U/mL penicillin G and 100 mg/mL Streptomycin
DMEM Gibco 11965092
FBS Thermo Fisher Scientific A4736301
Gal3-GFP plasmid addgene
Lipofectamine 3000 kit Thermo Fisher Scientific L3000008
LysoTracker Green DND-26 Thermo Fisher Scientific L7526 green fluorescent dye
Multiwall plate perkinelmer PK-6005550
NaOH Thermo Fisher Scientific Q15895
OptiMEM Thermo Fisher Scientific 31985070
Penicillin-streptomycin Gibco 15140163
Phosphate-Buffered Saline (PBS) Gibco 21600-069 137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 10mM Na2HPO4, 1.8 mM KH2PO4
Cell line
HeLa Cell Line ATCC CCL-2 The methods are applicable for most of the attached cell lines. Conditions must be determined individually.
Equipments
0.22 µm Filter Merck SLGV013SL
Collimated LED Light  (660nm) Thorlabs M660L3-C1 and DC2100 Near-infared light is ideal base on the excitation spectrum of AlPcS2a.
Confocal microscopy Carl Zeiss LSM 780 An incubation system is required for long-term imaging.
NanoDrop 2000/2000c Spectrophotometers Thermo Fisher Scientific
Red LED light Tholabs M660L4-C1

References

  1. Cossart, P., Helenius, A. Endocytosis of viruses and bacteria. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 6 (8), 016972 (2014).
  2. Daussy, C. F., Wodrich, H. 34;Repair me if you can": membrane damage, response, and control from the viral perspective. Cells. 9 (9), 2042 (2020).
  3. Hung, Y. H., Chen, L. M., Yang, J. Y., Yang, W. Y. Spatiotemporally controlled induction of autophagy-mediated lysosome turnover. Nature Communications. 4, 2111 (2013).
  4. Sharma, S. K., et al. Photodynamic therapy for cancer and for infections: what is the difference. Israel Journal of Chemistry. 52 (8-9), 691-705 (2012).
  5. Kübler, A. C. Photodynamic therapy. Medical Laser Application. 20 (1), 37-45 (2005).
  6. De Rosa, F. S., Bentley, M. V. Photodynamic therapy of skin cancers: sensitizers, clinical studies and future directives. Pharmaceutical Research. 17 (12), 1447-1455 (2000).
  7. Hamblin, M. R. New photosensitizers for photodynamic therapy. Biochemical Journal. 473 (4), 347-364 (2016).
  8. Lavie, G., et al. A photodynamic pathway to apoptosis and necrosis induced by dimethyl tetrahydroxyhelianthrone and hypericin in leukaemic cells: possible relevance to photodynamic therapy. British Journal of Cancer. 79 (3-4), 423-432 (1999).
  9. Jay, D. G. Selective destruction of protein function by chromophore-assisted laser inactivation. Proceedings of the National Academy of Sciences. 85 (15), 5454-5458 (1988).
  10. Grate, D., Wilson, C. Laser-mediated, site-specific inactivation of RNA transcripts. Proceedings of the National Academy of Sciences. 96 (11), 6131-6136 (1999).
  11. Lin, J. Y., et al. Optogenetic inhibition of synaptic release with chromophore-assisted light inactivation (CALI). Neuron. 79 (2), 241-253 (2013).
  12. Hsieh, C. W., Yang, W. Y. Triggering mitophagy with photosensitizers. Methods in Molecular Biology. 1880, 611-619 (2019).
  13. Yang, J. Y., Yang, W. Y. Spatiotemporally controlled initiation of Parkin-mediated mitophagy within single cells. Autophagy. 7 (10), 1230-1238 (2011).
  14. Molinari, M., et al. Vacuoles induced by Helicobacter pylori toxin contain both late endosomal and lysosomal markers. Journal of Biological Chemistry. 272 (40), 25339-25344 (1997).
  15. Prince, L. R., et al. Subversion of a lysosomal pathway regulating neutrophil apoptosis by a major bacterial toxin, pyocyanin. Journal of Immunology. 180 (5), 3502-3511 (2008).
  16. Aits, S., et al. Sensitive detection of lysosomal membrane permeabilization by lysosomal galectin puncta assay. Autophagy. 11 (8), 1408-1424 (2015).
  17. Prasmickaite, L., Hogset, A., Berg, K. Evaluation of different photosensitizers for use in photochemical gene transfection. Photochemistry and Photobiology. 73 (4), 388-395 (2001).
  18. Berg, K., et al. Photochemical internalization: a novel technology for delivery of macromolecules into cytosol. Cancer Research. 59 (6), 1180-1183 (1999).
  19. Moan, J., Berg, K. The photodegradation of porphyrins in cells can be used to estimate the lifetime of singlet oxygen. Photochemistry and Photobiology. 53 (4), 549-553 (1991).
  20. Thurston, T. L., Wandel, M. P., von Muhlinen, N., Foeglein, A., Randow, F. Galectin 8 targets damaged vesicles for autophagy to defend cells against bacterial invasion. Nature. 482 (7385), 414-418 (2012).
  21. Repnik, U., et al. L-leucyl-L-leucine methyl ester does not release cysteine cathepsins to the cytosol but inactivates them in transiently permeabilized lysosomes. Journal of Cell Science. 130 (18), 3124-3140 (2017).
  22. Griffiths, G., Hoflack, B., Simons, K., Mellman, I., Kornfeld, S. The mannose 6-phosphate receptor and the biogenesis of lysosomes. Cell. 52 (3), 329-341 (1988).
  23. Jia, J., et al. Galectin-3 Coordinates a cellular system for lysosomal repair and removal. Developmental Cell. 52 (1), 69-87 (2020).
  24. Chu, Y. P., Hung, Y. H., Chang, H. Y., Yang, W. Y. Assays to monitor lysophagy. Methods in Enzymology. 588, 231-244 (2017).
  25. Nguyen, L., Madsen, S. J., Berg, K., Hirschberg, H. An improved in vitro photochemical internalization protocol for 3D spheroid cultures. Lasers in Medical Science. 36 (8), 1567-1571 (2021).
  26. Daugelaviciene, N., et al. Lysosome-targeted photodynamic treatment induces primary keratinocyte differentiation. Journal of Photochemistry and Photobiology. B, Biology. 218, 112183 (2021).
  27. Hong, M. H., et al. Intracellular galectins control cellular responses commensurate with cell surface carbohydrate composition. Glycobiology. 30 (1), 49-57 (2019).
check_url/63962?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Hung, Y., Wang, H., Wang, J., Hsu, C., Chen, H. A Photodynamic Approach to Study Function of Intracellular Vesicle Rupture. J. Vis. Exp. (193), e63962, doi:10.3791/63962 (2023).

View Video