Summary

Sammenhængende Anti-Stokes Raman Spectroscopy (CARS) ansøgning om billeddannelse myelinering i hjerneskiver

Published: July 22, 2022
doi:

Summary

Visualisering af myelinering er et vigtigt mål for mange forskere, der studerer nervesystemet. CARS er en teknik, der er kompatibel med immunfluorescens, der naturligt kan afbilde lipider i væv som hjernen, der belyser specialiserede strukturer såsom myelin.

Abstract

Sammenhængende anti-Stokes Raman-spektroskopi (CARS) er en teknik, der klassisk anvendes af kemikere og fysikere til at producere et sammenhængende signal om signaturvibrationer af molekyler. Imidlertid er disse vibrationssignaturer også karakteristiske for molekyler inden for anatomisk væv som hjernen, hvilket gør det stadig mere nyttigt og anvendeligt til neurovidenskabelige applikationer. For eksempel kan CARS måle lipider ved specifikt spændende kemiske bindinger inden for disse molekyler, hvilket muliggør kvantificering af forskellige aspekter af væv, såsom myelin involveret i neurotransmission. Derudover kan CARS sammenlignet med andre teknikker, der typisk bruges til at kvantificere myelin, også indstilles til at være kompatible med immunfluorescerende teknikker, hvilket giver mulighed for co-mærkning med andre markører såsom natriumkanaler eller andre komponenter i synaptisk transmission. Myelineringsændringer er en iboende vigtig mekanisme i demyeliniserende sygdomme som multipel sklerose eller andre neurologiske tilstande såsom fragilt X syndrom eller autismespektrumforstyrrelser er et voksende forskningsområde. Afslutningsvis kan CARS bruges på innovative måder til at besvare presserende spørgsmål inden for neurovidenskab og give bevis for underliggende mekanismer relateret til mange forskellige neurologiske tilstande.

Introduction

Handlingspotentialer er den grundlæggende informationsenhed i hjernen, og handlingspotentialeudbredelse gennem axoner udgør en søjle i informationsbehandling 1,2,3. Neuroner modtager typisk afferente input fra flere andre neuroner og integrerer disse input inden for et givet smalt tidsvindue 4,5. Derfor har mekanismerne for handlingspotentiale formering i axoner fået en betydelig mængde opmærksomhed fra efterforskere.

Ved formering gennem en axon regenereres et handlingspotentiale gentagne gange langs axonen for at sikre pålidelig udbredelse6. I de fleste neuroner af kæbede hvirveldyr (gnathostomer) er axoner omgivet af en kappe af myelin, som er et lipidrigt stof produceret af nærliggende oligodendrocytter eller Schwann-celler, som er typer af gliaceller (gennemgået i 7,8). Denne myelinkappe isolerer axonen elektrisk, reducerer dens kapacitans og muliggør handlingspotentialeudbredelse effektivt, hurtigt og med lavere energiforbrug. Myelin dækker ikke axonen ensartet, men den kapper axonen i segmenter, der har korte mellemrum imellem dem, kaldet Ranviers knudepunkter (gennemgået i 9,10). Både myelineringstykkelse, som styrer niveauet for elektrisk isolering af en axon, og afstanden mellem Ranviers knuder, som styrer hyppigheden, hvormed handlingspotentialer regenereres langs en axon, påvirker hastigheden af handlingspotentialeudbredelse (gennemgået i11).

Der er en stor mængde litteratur, der tyder på, at myelineringstykkelse påvirker hastigheden af aktionspotentialeudbredelse i axoner12,13,14. Desuden kan ændringer i axonmyelinering resultere i en række CNS-underskud 15,16,17,18,19,20,21. Det er derfor ikke overraskende, at fokus for mange forskningsindsatser involverer måling og karakterisering af axonmyelinering. Målinger af myelintykkelse er oftest udført med elektronmikroskopi, en teknik, der kræver en betydelig mængde vævsforberedelse og er udfordrende at bruge i kombination med immunhistokemi. Der er dog også en hurtigere og enklere teknik til at måle axonmyelinering, der er baseret på Coherent Anti-Stokes Raman Spectroscopy (CARS). En CARS-laser kan indstilles til forskellige frekvenser, og når den er indstillet til frekvenser, der er egnede til at ophidse lipider, kan myelin afbildes uden behov for yderligere etiketter22. Lipidbilleddannelsen kan kombineres med standard immunhistokemi, således at lipider kan afbildes sammen med flere fluorescerende kanaler23. Imaging myelinering med CARS er signifikant hurtigere end elektronmikroskopi og har en opløsning, der er, omend lavere end EM, tilstrækkelig til at detektere selv små forskelle i myelinering i samme type axoner.

Protocol

Alle eksperimenter overholdt alle gældende love, National Institutes of Health-retningslinjer og blev godkendt af University of Colorado Anschutz Institutional Animal Care and Use Committee. 1. Dyr Brug C57BL/6J (lager #000664) mus (Mus musculus ) opnået fra The Jackson Laboratory eller mongolske gerbils (Meriones unguiculatus) oprindeligt opnået fra Charles River. 2. Vævspræparation …

Representative Results

En af de største fordele ved CARS-mikroskopi i forhold til andre teknikker er kompatibiliteten med fluorescerende billeddannelse23. Figur 1 viser CARS-spektrene sammenlignet med Nissl mærket med immunfluorescerende markør, der viser ringe / ingen overlapning i spektre. Figur 2 illustrerer laseropsætningen til CARS i kombination med konfokal mikroskopi. Figur 3 viser to repræsentative billeder, et som en …

Discussion

En voksende mængde litteratur understreger myelins rolle i hjernefunktionen 13,16,21,28. Desuden ved vi, at myelineringstykkelse og myelineringsmønster kan ændre sig i flere neurologiske tilstande såsom multipel sklerose (gennemgået i29), aldring (gennemgået i 30), autisme20,31 og mange andre.<sup class="xr…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Understøttet af NIH R01 DC 17924, R01 DC 18401 (Klug) og NIH 1R15HD105231-01, T32DC012280 og FRAXA (McCullagh). CARS-billeddannelsen blev udført i Advanced Light Microscopy Core-delen af NeuroTechnology Center ved University of Colorado Anschutz Medical Campus, delvist understøttet af NIH P30 NS048154 og NIH P30 DK116073.

Materials

Anesthetic:
1 mL disposable syringe with needle 27 GA x 0.5" Exel int 260040
Fatal + Vortech
Surgery:
Spring Scissors – 8mm Cutting Edge Fine Science Tools 15024-10
Standard tweezers Fine Science Tools 11027-12
Perfusion:
4% Paraformaldehyde Fisher Chemical SF994 (CS)
Fine Scissors – Sharp Fine Science Tools 14063-11
Kelly hemostats Fine Science Tools 13019-14
Millipore H2O
Needle tip, 23 GA x 1" BD precision glide 305193
Phosphate buffered saline (PBS):
Potassium chloride Sigma P9333
Potassium phosphate monobase Sigma P5655
pump with variable flow or equivalent
Sodium chloride Fisher Chemical s271-1
Sodiumphosphate dibasic Sigma S7907
Dissection:
50 mL vial with 4% PFA
Bochem Chemical Spoon 180mm Bochem 230331000
Fine Scissors – Sharp Fine Science Tools 14063-11
Noyes Spring Scissors Fine Science Tools 15011-12
Pair of fine (Graefe) tweezers Fine Science Tools 11050-10
Shallow glass or plastic tray, approximately 10" x 10"
Standard tweezers Fine Science Tools 11027-12
Surgical Scissors – Blunt Fine Science Tools 14000-20
Slicing:
Agar, plant RPI 9002-18-0
Vibratome Leica VT1000s
well plate Alkali Sci. TPN1048-NT
Staining:
AB Media: 1n 1,000 mL of Millipore H2O
Phosphate buffered (PB):
Potassium Phosphate Monobase Sigma P5655
Sodium Phosohate Dibasic Sigma S7907
BSA (Bovine serum albumin) Sigma life science A2153-100g
Sodium Chloride Fisher Chemical s271-1
Triton X-100 Sigma – Aldrich x100-500ml
Nissl 435/455 Invitrogen N21479
CARS:
APE picoemerald laser Angewandte Physik & Elektronik GmbH
bandpass filter (420-520 nm) Chroma Technology HQ470/100m-2P
bandpass filter (500-530 nm) Chroma Technology HQ515/30m-2P
bandpass filters (640-680 nm) Chroma Technology HQ660/40m-2P
Confocal microscope Olympus FV1000
Cut Transfer pipet Fisher 13-711-7M
dichroic longpass 565 nm Chroma Technology 565dcxr
dichroic longpass 585 nm Chroma Technology 585dcxr
dichroic shortpass 750 nm Chroma Technology T750spxrxt
glass bottom culture dish MatTek P35G-0-10-C
glass weight (10 mm x 10 mm boro rod) Allen Scientific Glass Inc
multiphoton shortpass emission filter 680 nm Chroma Technology ET680sp-2p8
PBS

References

  1. Cole, K., Curtis, H. Electric impedance of the squid giant axon during activity. The Journal of General Physiology. 22 (5), 649-670 (1939).
  2. Cole, K. S., Curtis, H. J. Membrane potential of the squid giant axon during current flow. Journal of General Physiology. 24 (4), 551-563 (1941).
  3. Alcami, P., El Hady, A. Axonal computations. Frontiers in Cellular Neuroscience. 13, 413 (2019).
  4. Neumann, E., Nachmansohn, D. Nerve excitability-Toward an integrating concept. Aharon Katzir Memorial Volume. , 99-166 (1975).
  5. Waxman, S. G. Integrative properties and design principles of axons. International Review of Neurobiology. 18, 1-40 (1975).
  6. Fitzhugh, R. Computation of impulse initiation and saltatory conduction in a myelinated nerve fiber. Biophysical Journal. 2 (1), 11-21 (1962).
  7. Zalc, B. The acquisition of myelin: a success story. Novartis Foundation Symposium. 276, 275-281 (2006).
  8. Salzer, J. L., Zalc, B. Myelination. Current Biology. 26 (20), 971-975 (2016).
  9. Boullerne, A. I. The history of myelin. Experimental Neurology. 283, 431-445 (2016).
  10. Kuhn, S., Gritti, L., Crooks, D., Dombrowski, Y. Oligodendrocytes in development, myelin generation and beyond. Cells. 8 (11), 1424 (2019).
  11. Saab, A. S., Nave, K. -. A. Myelin dynamics: protecting and shaping neuronal functions. Current Opinion in Neurobiology. 47, 104-112 (2017).
  12. Chomiak, T., Hu, B. What is the optimal value of the g-Ratio for myelinated fibers in the rat CNS? A theoretical approach. PLOS ONE. 4 (11), 7754 (2009).
  13. Ford, M. C., et al. Tuning of Ranvier node and internode properties in myelinated axons to adjust action potential timing. Nature Communications. 6, 8073 (2015).
  14. Stange-Marten, A., et al. Input timing for spatial processing is precisely tuned via constant synaptic delays and myelination patterns in the auditory brainstem. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (24), 4851-4858 (2017).
  15. Bu, J., Banki, A., Wu, Q., Nishiyama, A. Increased NG2+ glial cell proliferation and oligodendrocyte generation in the hypomyelinating mutant shiverer. Glia. 48 (1), 51-63 (2004).
  16. Pacey, L. K. K., et al. Delayed myelination in a mouse model of fragile X syndrome. Human Molecular Genetics. 22 (19), 3920-3930 (2013).
  17. Green, A. J., et al. Clemastine fumarate as a remyelinating therapy for multiple sclerosis (ReBUILD): a randomised, controlled, double-blind, crossover trial. Lancet. 390 (10111), 2481-2489 (2017).
  18. Jeon, S. J., Ryu, J. H., Bahn, G. H. Altered translational control of fragile X mental retardation protein on myelin proteins in neuropsychiatric disorders. Biomolecules & Therapeutics. 25 (3), 231-238 (2017).
  19. Barak, B., et al. Neuronal deletion of Gtf2i, associated with Williams syndrome, causes behavioral and myelin alterations rescuable by a remyelinating drug. Nature Neuroscience. 22 (5), 700-708 (2019).
  20. Phan, B. N., et al. A myelin-related transcriptomic profile is shared by Pitt-Hopkins syndrome models and human autism spectrum disorder. Nature Neuroscience. 23 (3), 375-385 (2020).
  21. Lucas, A., Poleg, S., Klug, A., McCullagh, E. A. Myelination deficits in the auditory brainstem of a mouse model of fragile X syndrome. Frontiers in Neuroscience. 15, 1536 (2021).
  22. Wang, H., Fu, Y., Zickmund, P., Shi, R., Cheng, J. -. X. Coherent anti-stokes raman scattering imaging of axonal myelin in live spinal ttissues. Biophysical Journal. 89 (1), 581-591 (2005).
  23. Kim, S. -. H., et al. Multiplex coherent anti-stokes raman spectroscopy images intact atheromatous lesions and concomitantly identifies distinct chemical profiles of atherosclerotic lipids. Circulation Research. 106 (8), 1332-1341 (2010).
  24. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. Journal of Visualized Experiments. (65), e3564 (2012).
  25. Tu, L., et al. Free-floating Immunostaining of Mouse Brains. Journal of Visualized Experiments. (176), e62876 (2021).
  26. . Fluorescence SpectraViewer Available from: https://www.thermofisher.com/order/fluorescence-spectraviewer (2022)
  27. Held, H. Die centrale gehörleitung. Arch Anat Physiol Anat Abt. 17, 201-248 (1893).
  28. Sherman, D. L., Brophy, P. J. Mechanisms of axon ensheathment and myelin growth. Nature Reviews Neuroscience. 6 (9), 683-690 (2005).
  29. Gruchot, J., et al. The molecular basis for remyelination failure in multiple sclerosis. Cells. 8 (8), 825 (2019).
  30. Rivera, A. D., et al. Epidermal growth factor pathway in the age-related decline of oligodendrocyte regeneration. Frontiers in Cellular Neuroscience. 16, 838007 (2022).
  31. Kútna, V., O’Leary, V. B., Hoschl, C., Ovsepian, S. V. Cerebellar demyelination and neurodegeneration associated with mTORC1 hyperactivity may contribute to the developmental onset of autism-like neurobehavioral phenotype in a rat model. Autism Research: Official Journal of the International Society for Autism Research. 15 (5), 791-805 (2022).
  32. Ozsvár, A., et al. Quantitative analysis of lipid debris accumulation caused by cuprizone induced myelin degradation in different CNS areas. Brain Research Bulletin. 137, 277-284 (2018).
  33. Prineas, J. W., Graham, J. S. Multiple sclerosis: capping of surface immunoglobulin G on macrophages engaged in myelin breakdown. Annals of Neurology. 10 (2), 149-158 (1981).
  34. Bégin, S., et al. Automated method for the segmentation and morphometry of nerve fibers in large-scale CARS images of spinal cord tissue. Biomedical Optics Express. 5 (12), 4145-4161 (2014).

Play Video

Cite This Article
McCullagh, E. A., Poleg, S., Stich, D., Moldovan, R., Klug, A. Coherent Anti-Stokes Raman Spectroscopy (CARS) Application for Imaging Myelination in Brain Slices. J. Vis. Exp. (185), e64013, doi:10.3791/64013 (2022).

View Video